猪瘟、猪繁殖与呼吸综合征、猪伪狂犬病、圆环病毒病等主要疫病的调查分析

为了解广西贺州市猪瘟病毒（CSFV）、猪繁殖与呼吸综合征病毒（PRRSV）、猪伪狂犬病毒（PRV）以及猪圆环病毒（PCV）等病毒性传染病的流行情况,2018—2019年在该市无害化处理场进行采样监测,采用实时荧光定量PCR方法进行病毒核酸检测,分别对猪圆环病毒1型、2型、3型进行检测。结果表明,在检测的病毒核酸中,猪圆环病毒核酸阳性率最高,为58.52%。其中,又以猪圆环病毒2型病毒核酸阳性率最高,达53.98%。此外,样品中同时检出猪繁殖与呼吸综合征病毒和猪圆环病毒混合感染的阳性率最高达14.20%。猪圆环病毒不同基因型的混合感染中,2型、3型混合感染的感染率最高,为4.26%。说明该市存在CSFV、PRRSV、PRV、PCV 4种病毒的散发性流行及混合感染,应加以重视。     

猪圆环病毒Ⅱ型病鉴别诊断技术的研究进展

猪圆环病毒（PCV）属于圆环病毒科,圆环病毒属,是一种无囊膜的二十面体的单链环状DNA病毒,该病毒有两个血清型：猪圆环病毒I型（PCV1）和猪圆环病毒II型（PCV2）。猪圆环病主要是由PCV2引起。本文旨在通过讨论PCV2的临床症状及鉴别诊断方法,为PCV2的现场及实验室鉴定提供理论依据。     

PCV2和PCV3双重纳米PCR方法的建立及初步应用

本研究旨在建立一种同时检测猪圆环病毒2型（PCV2）和猪圆环病毒3型（PCV3）的双重纳米PCR（nano-dPCR）方法,同时应用该方法对PCV2和PCV3进行检测。参考GenBank中登录的PCV2和PCV3型基因序列分别设计特异性引物,对nano-dPCR的反应条件进行优化;同时考察所建立的nano-dPCR检测方法的特异性和敏感性。结果显示,所建方法的特异性和敏感性良好,对PCV2和PCV3两种病毒的最低核酸检测量分别为93.2和91.6拷贝/μL,其敏感性比普通PCR高100倍。应用该方法对送检的265份临床样本进行检测,结果显示,PCV2和PCV3在猪群中存在普遍感染,PCV3和PCV2的阳性率分别为16.6%和14.7%,混合感染阳性率为6.8%。临床样品的检测结果表明,本试验建立的nano-dPCR方法为PCV2和PCV3早期感染进行快速、敏感鉴别诊断提供了新方法。     

猪圆环病毒2型检测技术研究进展

猪圆环病毒（Porcine circovirus,PCV）属圆环病毒科、圆环病毒属,病毒基因组为单股负链环状DNA,病毒呈二十面体对称,无囊膜结构,是迄今为止发现的一种最小的动物病毒。猪圆环病毒依据其致病性和基因组差异分为无致病性的猪圆环病毒1型（Porcine Circovirus 1,PCV1）和有致病性的猪圆环病毒2型（Porcine Circovirus 2,PCV2）,猪圆环病毒3型（Porcine Circovirus3,PCV3）,猪圆环病毒4型（PorcineCircovirus 4,PCV4）。PCV2主要侵害机体的免疫系统,引起机体继发感染断乳仔猪多系统衰竭综合征（post-weaning multisystemwasting syn-drome,PMWS）、猪皮炎和肾病综合征（porcine dermatitisandnephropathy syndrome,PDNS）、猪呼吸道病综合征（porcine respiratory disease complex,PRDC）、母猪繁殖障碍、肉芽肿性肠炎、仔猪先天性震颤等疾病。2000年,我国首次报道了PCV2感染。目前,PCV2感染在我国猪群中广泛流行,种猪有很高感染率,与其他疾病混合感染现象严重。PCV2现已被世界各国的兽医与养猪业者公认为是继猪繁殖与呼吸综合征（Porcine reproductive and respiratorysyndrome,PRRS）之后新发现的引起猪免疫障碍的重要传染病病原,因此建立即时有效的检测PCV2的技术方法尤为重要,文章综述了多种PCV2检测技术,旨在为养殖场PCV2有关疾病的检测防控提供技术支持。     

应用PCR方法对一起疑似感染猪瘟病毒的检测

采用猪繁殖障碍性病毒性疫病六重PCR检测方法对贵州省某猪场送检的疑似感染猪瘟病毒（CFSV）病料进行了猪伪狂犬病毒（PRV）、猪细小病毒（PPV）、猪圆环病毒2型（PCV2）、猪繁殖与呼吸综合征病毒（PRRSV）,CFSV和猪流行性乙型脑炎病毒（JEV）的快速检测,结果表明该猪场送检的仔猪同时感染PCV2和PRRSV两种病毒,CFSV检测呈阴性。     

猪圆环病毒2型SYBR Green I荧光定量PCR检测方法的建立

为了建立猪圆环病毒2型（PCV2）SYBR Green I荧光定量PCR检测方法,采用PCR扩增PCV2 ORF2基因242 bp片段,并克隆入pMD18-T载体中,以纯化的重组质粒为模板作荧光定量PCR扩增,建立了PCV2荧光定量PCR检测方法,该方法检测灵敏度可达1.2×101拷贝/μL,与猪圆环病毒1型（PCV1）、猪瘟病毒（CSFV）、猪蓝耳病病毒（PRRSV）、猪细小病毒（PPV）、猪伪狂犬病病毒（PRV）、乙型脑炎病毒（JEV）核酸均不发生扩增反应,具有很好的特异性和重复性。结果表明：建立的PCV2实时荧光定量PCR检测方法具有特异、敏感、快速、定量、重复性好等优点,可用于临床PCV2的检测。     

多重PCR快速检测猪伪狂犬病病毒、猪圆环病毒2型方法的建立

根据GenBank上猪伪狂犬病病毒（PRV）、猪圆环病毒2型（PCV2）的已知序列,利用Primer Premier 5.0及DNAstar软件对上述病毒基因保守区进行引物设计,选出扩增序列为PRV gB基因373 bp、PCV2 ORF2基因430 bp两对引物。在优化单项PCR反应条件基础上,建立了PRV-PCV2两重PCR检测方法。敏感性及特异性试验结果显示,该mPCR对2种病毒的核酸检测可至1.47×10-6~1.62×10-6 ng,而对灭菌双蒸水、猪细小病毒（PPV）猪繁殖与呼吸障碍综合征病毒（PRRSV）、猪瘟病毒（CSFV）多重PCR的扩增结果均为阴性,作为临床上猪伪狂犬病和猪圆环病毒2型感染的病原学快速诊断方法具有可行性。     

吉林省猪圆环病毒Ⅱ型血清流行病调查分析

猪圆环病毒（porcine circovirus，PCV）为圆环病毒科（Circoviridae）圆环病毒属成员，是单股环状DNA病毒，是迄今发现的最小的动物病毒。PCV存在2种基因型，即PCV-1和PCV-2。PCV-1未发现有致病性；PCV-2主要引起仔猪免疫缺陷的断奶仔猪多系统消耗综合症（Posl-weaning muhisystemic wasting syndrome，PMWS）的病原之一。猪是PCV的易感动物，主要是经口腔及呼吸道途径感染，少数怀孕母猪可经胎盘将PCV直接感染给仔猪。感染猪可从鼻液、粪、尿中排出病毒，并于2—15周龄时发生PMWS。     

福州地区猪圆环病毒2型感染的血清学调查

猪圆环病毒（Porcine circovirus,PCV）为圆环病毒科圆环病毒属成员,根据抗原性及基因组组成,PCV分成两个血清型,即猪圆环病毒1型（PCV-1）和2型（PCV-2）。PCV-1无致病性,PCV-2有致病性。白1991年在加拿大首次报道猪群中存在PMWS以来,相继在美国、法国、西班牙、北爱尔兰、日本和我国台湾等地发现猪群中有PMWS存在,并分离鉴定为PCV-2。     

曲靖市猪圆环病毒病的监测及防制

猪圆环病毒病（PCVD）主要是由猪圆环病毒2型（PCV2）引起的猪传染性疫病,是继猪繁殖与呼吸综合征（PRRS）之后新发现的又一重要疫病,严重影响着生猪产业的发展。我国自2000年报道和明确猪群中存在PCV2感染以来,随着引种、生猪调运等原因,流行范围迅速波及全国。     

ORF9基因缺失突变PCV2的构建与部分生物学特性

设计1对针对猪圆环病毒2型（PCV2）全基因组的特异性引物,从疑似断乳仔猪多系统衰竭综合征（PMWS）的病料中经PCR直接扩增出PCV2全基因组,再与载体pMD18-T Simple连接后构建重组质粒pMD18-T Simple-PCV2（命名为P-S-PCV2）。用ORF9特异的限制性内切酶Bpu10Ⅰ对P-S-PCV2进行酶切、补平连接反应,构建了ORF9基因缺失突变的重组质粒（命名为P-S-PCV2-J）。用SacⅡ对基因缺失突变的重组质粒进行酶切,获得的线性化基因突变PCV2基因组在体外进行自身环化,形成了相应缺失基因DNA（命名为PCV2-J）。用PCV2-J缺失突变株进行细胞转染、动物致病性和免疫原性、T淋巴细胞亚群的动态变化等部分生物学特性的研究。结果显示：PCV2-J转染IBRS-2细胞后,电镜观察可见病毒颗粒,PCR-RFLP检测有突变株生长;PCV2-J接种仔猪后无临床典型大体病变,PCR-RFLP检测淋巴结中有PCV2-J突变病毒的感染;PCV2-J免疫仔猪后的抗体水平在第2周开始上升,与对照组相比差异显著,CD3＋下降,与对照组无差异,CD4＋下降,第1周与对照组差异显著,CD8＋与对照组差异不显著。结果表明,ORF9基因缺失突变的PCV2仍具有复制感染能力,但免疫原性减弱。     

2010年国内部分省份猪场常见病毒性疾病的病原学调查

随着规模化养猪业的发展,传染性疾病越来越多,混合感染或多重感染十分普遍,给疾病的诊断和预防带来很大困难。本文将我们实验室2010年分别采自福建、广西、河南、上海、内蒙、浙江、江苏和山西等地发病猪场的185份病料,通过RT-PCR和PCR方法对其进行猪繁殖与呼吸综合征病毒（Porcine reproductive and respiratory syndrome virus,PRRSV）、猪繁殖障碍的猪瘟病毒（Classical swine fever virus,CSFV）、猪圆环病毒2（Porcine circovirus type 2,PCV2）、猪细小病毒（Porcine parvovirus,PPV）、猪伪狂犬病毒（Pseudorabies virus,PRV）、细环病毒2（Torque teno virus 2,TTV2）等病毒检测。结果表明在所检的病料中PRRSV、PCV2和TTV2的阳性率比较高,分别为49.2%、62.2%和95.1%。有些地方TTV2的阳性率高达100%;同时,还存在很普遍的PRRSV与PCV2、PRRSV与TTV2、PCV2与TTV2等混合感染,混合感染率分别为27.6%、45.4%、58.4%;以及PRRSV、PCV2与TTV2的三重感染率为24.9%。同时对部分PRRSV阳性病料的PRRSV GP5和nsp2基因分别进行测序,分析测序结果表明病料中的PRRSV的GP5和nsp2序列与PRRSV HuN4株的相应序列的亲缘关系分别在98.2%和96.2%以上,且在nsp2区域都存在30个不连续氨基酸的缺失,说明现在临床中所流行的PRRSV可能仍是与高致病性PRRSV基因型相似的病毒。通过本文可以及时了解当前养猪场的病毒性疾病的流行情况,为猪场病毒性疾病的防控提供依据。     

Porcine circovirus type 2 in muscle and bone marrow is infectious and transmissible to naïve pigs by oral consumption

Pork products are a possible source of introduction of PCV2 isolates into a pig population. However, limited work has been done on the transmission through meat of porcine circovirus type 2 (PCV2), a virus associated with several disease syndromes in pigs. The objectives of this study were to determine if pork products from PCV2-infected pigs contain PCV2 DNA/antigen and to determine if the PCV2 present in the tissues is infectious by performing in vitro and in vivo studies. Skeletal muscle, bone marrow, and lymphoid tissues from pigs experimentally inoculated with PCV2 were collected 14 days post-inoculation (DPI). The tissues were tested for presence of PCV2 DNA by quantitative real-time PCR, for PCV2 antigen by immunohistochemistry (IHC), and for presence of infectious PCV2 by virus isolation and inoculation of PCV2 naïve pigs. Lymphoid tissues contained the highest amount of PCV2 (positive by PCR, IHC, and virus isolation), bone marrow contained a lower amount of PCV2 (positive by PCR and IHC but negative by virus isolation), and skeletal muscle contained the lowest amount of PCV2 (positive by PCR but negative by IHC and virus isolation). Naïve pigs fed for three consecutive days with either skeletal muscle, bone marrow, or lymphoid tissues all became PCV2 viremic as determined by quantitative real-time PCR on serum starting at 7 DPI. The pigs also seroconverted to PCV2 as determined by PCV2 IgM and IgG ELISA. In addition, PCV2 antigen was detected by IHC stains in lymphoid tissues and intestines collected from the majority of these pigs. Results from this study indicate that uncooked PCV2 DNA positive lymphoid tissues, bone marrow, and skeletal muscle from PCV2 viremic pigs contain sufficient amount of infectious PCV2 to infect naïve pigs by the oral route.     

多重PCR方法用于检测猪圆环病毒2型、猪细小病毒、猪伪狂犬病病毒、猪繁殖与呼吸综合征病毒诊断方法的建立

本文建立了一种能够同时检测猪圆环病毒2型（PCV2）、猪细小病毒（PPV）、猪伪狂犬病病毒（PRV）、猪繁殖与呼吸综合征病毒（PRRSV）的多重PCR方法（mPCR）。借助于Oligo6.0引物设计软件,设计了4对引物分别用于扩增PCV2ORF2基因353bp片段、PPVNS-1基因271bp片段、PRRSVMN基因美洲型434bp片段、PRVgB基因194bp片段。通过人为混合以上4种病毒进行特异性及敏感性试验,结果表明,该方法具有很好的特异性和敏感性。对猪瘟病毒、大肠杆菌和双蒸水的PCR扩增结果均为阴性;该mPCR方法对PPV的最低检测量为8.64×10-3μg,PRV的最低检测量为2.36×10-3μg,PRRSV的最低检测量为3.68×10-3μg,PCV2的最低检测量为2.90×10-4μg。该方法的建立对临床上PCV2、PPV、PRV、PRRSV的鉴别诊断以及以上这4种病毒的流行病学调查具有十分重要的意义。     

PCV2、PRV和PRRSV多重PCR方法的建立及其应用

根据GenBank登录的猪伪狂犬病毒（PRV）、猪圆环病毒2型（PCV2）和猪繁殖与呼吸综合征病毒（PRRSV）的参考基因序列,设计3对引物分别用于扩增PCV2的ORF2基因、PRV的gE基因、PRRSV的N基因的目的片段,通过优化反应中各个影响因素,建立了PRV、PCV2、PRRSV的多重PCR（mPCR）检测方法。敏感性和特异性的结果表明,该方法对这3种病毒的最低核酸检出量分别为32.5（PRV）、25.2（PCV2）、35.9pg（PRRSV）。该方法对猪流感病毒（SIV）、猪圆环病毒1型（PCV1）、大肠杆菌、猪瘟病毒（CSFV）、猪流行性腹泻病毒（TGE）等病毒的检测结果均为阴性。200份临床样品的多重PCR结果表明,PCV2感染率为80%（160/200）,PRV感染率为21%（42/200）,PRRSV的感染率为78%（156/200）。200份临床样品主要为PCV2和PRRSV混合感染,阳性率达56.0%（112/200）。该方法的建立对这3种病毒病的早期快速检测和指导临床实践具有十分重要的意义。     

5种猪病多重PCR检测方法的建立

To establish a method for simultaneous detection of classical swine fever virus (CSFV), porcine reproductive and respiratory syndrome virus (PRRSV), pseudorabies virus (PRV), porcine circovirus type 2 (PCV2) and porcine parvovirus (PPV), a multiplex PCR was developed with a set of specific primers designed based on the conserved sequences of CSFV, PRRSV, PRV, PCV2 and PPV. Under the optimized conditions of multiplex PCR,five special fragments of 167 (CSFV),433 (PRRSV),305 (PRV), 559 (PCV2) and 882 bp (PPV) were amplified with a detection limit of 220, 1.6, 72, 400 and 370 pg, respectively. But the multiplex PCR amplification results of swine influenza virus （SIV）, Japanese encephalitis virus （JEV）, Streptococcus suis （SS） and porcine epidemic diarrhea virus （PEDV） were negative．The results showed that the multiplex PCR method was capable of CSFV, PRV, PRRSV, PCV2, PPV infection of single or mixed clinical samples for rapid diagnosis.     

Evaluation of a porcine circovirus type 2-specific antigen-capture enzyme-linked immunosorbent assay for the diagnosis of postweaning multisystemic wasting syndrome in pigs: comparison with virus isolation, immunohistochemistry, and the polymerase chain reaction.

Quantitative virus isolation, immunohistochemistry, polymerase chain reaction (PCR) assay, and a porcine circovirus 2 (PCV2)-specific antigen-capture enzyme-linked immunosorbent assay (ELISA) were used for differentiation between clinical and subclinical PCV2 infections of swine. Tissue samples from pigs experimentally infected with PCV2 and field cases of postweaning multisystemic wasting syndrome and PCV2-associated reproductive disorders were used in this evaluation. In initial studies on 6 PCV2 pools using 3 previously published PCR protocols for PCV2 detection, quantitative virus isolation, and antigen-capture ELISA, substantial differences in sensitivity were identified among these procedures. Examination of tissue samples from diseased and clinically normal pigs indicated that immunohistochemistry, quantitative virus isolation, and antigen-capture ELISA could be used to differentiate between clinical and subclinical PCV2 infections, but the PCR assay could not. Because subclinical infections of pigs with PCV2 are common, the use of nonquantitative PCR as a diagnostic tool for PCV2-related diseases should be discouraged and the PCV2-specific antigen-capture ELISA evaluated further.     

猪细小病毒、猪伪狂犬病病毒和猪圆环病毒2型多重PCR检测方法的建立与应用

根据GenBank中已发表的猪细小病毒(porcine parvovirus,PPV)、猪伪狂犬病病毒(pseudorabies virus,PRV)和猪圆环病毒2型 (porcine circovirus type 2,PCV2)基因序列,对各病毒基因区进行同源性分析,确定PPV 的VP2、PRV的 gD、和PCV2的ORF2基因为各病毒的诊断靶序列,设计特异性引物,在建立各病毒单项PCR技术的基础上,优化多重PCR反应条件,建立了3种病毒的多重PCR技术,可同时扩增PPV 313 bp、 PRV 217 bp和PCV2 447 bp的特异性片段。用多重PCR技术与单项PCR技术对比检测试验证明两者的符合率为100％,表明建立的多重PCR检测方法,具有特异、快速、准确的特点,可同时鉴别诊断这3种病毒。从10个发病猪场和门诊病例的病猪采集的211份样品,用建立的多重PCR检测方法,检出PPV阳性42份,阳性率为19.91%;PRV阳性26份,阳性率为12.32%;PCV2阳性56份,阳性率为26.54%;2种以上病毒混合感染25份,混合感染阳性率为11.85%。检测结果表明,山西省猪群已感染这3种疫病。     

鉴别猪伪狂犬病病毒强弱毒的高效纳米PCR 检测试剂盒及初步应用

试验建立了鉴别猪伪狂犬病病毒（PRV）强弱毒高效纳米PCR检测方法,并对相关条件进行优化,组装了试剂盒。根据PRV保守序列设计3对引物分别扩增PRV基因组的gB（431 bp）、gE（316 bp）和gG（202 bp）3个基因,用于区分PRV强毒与基因缺失毒株,优化反应条件后建立了纳米PCR检测PRV强弱毒的方法并组装试剂盒,对试剂盒进行了特异性、敏感性、批内批间可重复性及保存期评估试验,并对临床样品进行检测。特异性试验表明,此试剂盒对于PRV能够扩增出431（gB）、316（gE）和202 bp（gG）的目的片段,对于PRV-Bartha-K61能够扩增出431和202 bp的目的片段,对于猪捷申病毒、非洲猪瘟病毒、猪圆环病毒2型、猪繁殖与呼吸综合征病毒、猪细小病毒及大肠杆菌等DNA或cDNA均未扩增出条带。敏感性试验表明,此试剂盒的方法比常规PCR方法敏感100-1000倍,最低核酸拷贝数检出量可以达到101 copy/μL数量级。试剂盒的批内、批间检测结果无明显差异,稳定性良好。-20℃至少可保存12个月。在对中国黑龙江、吉林等7个省市的临床送检的117份样品进行检测,结果显示,PRV强毒阳性率为51%,阴性率为49%,未发现有弱毒感染。鉴别PRV强弱毒纳米PCR试剂盒的研制,对PRV感染的早期检测、野毒株和疫苗株的鉴别、疾病控制等都有重要意义,而且也可以用于其他动物PRV感染的检测和早期诊断。