文心兰茎尖诱导丛生芽高频率植株再生

以文心兰茎尖为外植体,通过基本培养基(MS、1/2MS、1/2 N6)、植物激素(6BA、NAA)、培养条件(有机添加物、糖、培养物状态)等关键因子对文心兰丛生芽诱导、增殖、生根各培养阶段影响的试验,探讨了文心兰以丛生芽途径再生植株的关键技术.结果表明:茎尖诱导丛生芽较适培养基配方为1/2 MS+6BA 2.0 mg·L-1 +NAA 0.1 mg·L-1,诱导率为84.6%;丛生芽在MS+6BA 2.0 mg·L-1 +NAA 0.1 mg·L-1 +蔗糖30 g·L-1培养基中增殖效果较好,增殖系数为5.5;株高2.0～3.0 cm的试管苗是丛生芽增殖的最佳培养材料;生根培养基适宜配方为1/2MS+IBA0.5 mg·L-1 +苹果汁100 g·L-1 +活性碳0.5 g·L-1 +蔗糖20 g·L-1,生根率为100%.     

蜜蜂兰组培快繁技术体系的建立

为了筛选蜜蜂兰组培快繁的最佳外植体以及蜜蜂兰种子诱导增殖、生根的最佳培养基配方。以未成熟蒴果果荚、成熟略黄蒴果果荚(未裂开)、成熟至裂开蒴果果荚3种不同成熟度的蜜蜂兰蒴果果荚作为外植体,研究不同成熟度果荚对蜜蜂兰诱导培养的影响;以MS为基本培养基及附加卡拉胶,采用四因素三水平正交试验方法研究添加不同浓度6-BA、NAA、IBA、活性炭、香蕉泥对蜜蜂兰丛生芽诱导增殖的影响;以1/2MS为基本培养基及附加白糖、卡拉胶、香蕉泥,研究添加IBA、NAA、活性炭对蜜蜂兰丛生芽生根培养的影响。结果表明:蜜蜂兰以成熟且未开裂蒴果果荚作为外植体进行组培快繁表现最优,其诱导时间短、诱导率高、感染率低,且生长情况良好。蜜蜂兰丛生芽诱导增殖最佳培养基为MS+6-BA 2.0mg·L-1+NAA 0.15mg·L-1+香蕉泥120g·L-1+蔗糖35g·L-1+卡拉胶7.0g·L-1,增殖系数可达到3.1;生根壮苗最佳培养基为1/2MS基本培养基+NAA 0.9mg·L-1+IBA 0.9mg·L-1+香蕉泥120g·L-1+蔗糖20g·L-1+卡拉胶7.0g·L-1,此培养条件下蜜蜂兰根系粗壮整齐,其生根率可达100%。     

蝴蝶兰“V31"品种花梗腋芽快繁体系的建立

以蝴蝶兰"V31"品种花梗腋芽为试验材料,通过筛选丛生芽诱导、增殖、生根及移栽各阶段最适培养基,建立其快繁体系。结果表明,最佳腋芽诱导丛生芽培养基MS+8.0 mg·L-1 6-BA+2.0 mg·L-1 NAA+15 g·L-1椰子粉,诱导率84.57%;最佳丛生芽增殖培养基MS+10 mg·L-1 KT+0.6 mg·L-1 NAA+0.2 mg·L-1 2,4-D,增殖倍率7.94;最佳生根壮苗培养基1/2 MS+0.1 mg·L-1 NAA+1 mg·L-1 6-BA+20 g·L-1蔗糖+10 g·L-1香蕉粉,平均生根数9.47;最佳栽培基质为经过0.1%高锰酸钾浸泡0.5 h的水苔+玉米棒(比例为1:1)。     

蜂斗叶组培快繁体系的建立

对蜂斗叶的组培条件进行了较系统的研究.结果表明,以蜂斗叶的叶柄切段为外植体,在MS+6-BA 2mg/L培养基上可诱导出胚性愈伤组织并分化出丛生芽;芽丛在MS+6-BA1 mg/L的继代培养基上,月繁殖系数可达3倍以上;健壮芽在1/2 MS+NAA 0.1 mg/L+活性炭1 mg/L的生根培养基上生根率为100%.     

‘阿里山’蝴蝶兰组织培养及其驯化移栽技术

以蝴蝶兰新品种‘阿里山’为试材进行组培快繁研究,包括花梗腋芽不定芽的诱导、丛生芽增殖、生根培养以及组培苗炼苗移栽技术。结果表明,1/4MS+4 mg·L-1BA+0.3 mg·L-1NAA最适合不定芽诱导,诱导率可达82.5%;利用1/2MS+7 mg·L-1BA+0.8 mg·L-1NAA培养基进行培养时,丛生芽增殖系数达到3;利用改良1/2KC+1 mg·L-1NAA+100 g·L-1香蕉泥培养基培养时,生根率高达100%;组培苗驯化28 d,移栽成活率达93.3%。     

国外引进优良绣球种的组培快繁技术

以绣球品种Snow Giant的带腋芽茎段为外植体.研究了不同浓度6-BA和NAA对绣球芽诱导增殖及生根的影响,结果表明.采用诱导培养基MS+6-BA0.5 mg·L-1+NAA 0.2mg·L-1有利于绣球芽的诱导;增殖培养基MS+6-BA2Dmg·L-1+NAA 0.1 mg·L-1有利于芽的增殖;生根培养基1/2 MS+NAA 0.2 mg·L-1有利于无菌苗的生根.     

不同培养因素对黑玫瑰石竹丛生芽增殖的影响

研究多种因素对黑玫瑰石竹组培快繁中丛生芽分化增殖培养的影响,结果表明:丛生芽增殖培养以MS为基本培养基时,增加或减少大量矿质元素不利于丛生芽的诱导;NAA/6-BA为0.1 mg·L-1/1.0 mg·L-1的激素配比有利于丛生芽的增殖,在此基础上添加谷氨酰胺100 mg·L-1,可提高增殖数达9.4;选用蔗糖15 g·L-1为增殖培养的碳源,在提高增殖效果的同时可有效降低成本。     

苹果菠萝的组织培养与快速繁殖

以苹果菠萝的顶芽和吸芽为外植体,接种于MS+6-BA 3 mg·L-1+蔗糖30 g·L-1的培养基上,30 d后腋芽萌发;再将新芽切割,接种于MS+6-BA 2 mg·L-1+NAA 0.05 mg·L-1+蔗糖30 g·L-1的培养基上,30~40 d后形成丛生芽,每30~40 d继代1次,可增殖3~5倍;把丛生芽分割成单株并接种于MS+6-BA 1 mg·L-1+AD 3 mg·L-1+蔗糖30 g·L-1培养基上,进行壮苗培养,25~30 d后再转接种于1/2MS+NAA 0.5 mg·L-1+香蕉汁30 g·L-1+蔗糖30 g·L-1培养基上,30 d后可形成完整的根系;小植株移栽成活率可达95%。     

一种高效的蝴蝶兰花梗诱导丛生芽体系

为提高蝴蝶兰组织培养效率,分别以幼嫩花梗和已开花蝴蝶兰花梗腋芽为外植体,采用两种消毒剂HgCl2、NaClO,3种消毒方式0.1%HgCl2,10min;10%NaClO,10min;5%NaClO,10min为处理,以VW(大量)+MS(微量、铁盐、有机)+100g·L-1马铃薯+0.1g·L-1 Ga3(PO4)2+6mg·L-16-BA+0.2mg·L-1 NAA为诱导基本培养基;VW(大量)+MS(铁盐、有机、微量)+100g·L-1马铃薯+3mg·L-16-BA+0.2mg·L-1 NAA为增殖分化培养基;1/2MS+0.1mg·L-1 NAA为生根培养基诱导丛生芽,拟建立以蝴蝶兰花梗腋芽为外植体的高效丛生芽诱导体系。结果表明:在0.1%HgCl2,10min消毒方式下,幼嫩花梗腋芽的污染率为0,丛生芽诱导率为95.6%;增殖率为216%;在生根培养基1/2MS+0.1mg·L-1 NAA上生根率为95.6%,建立了高效的蝴蝶兰幼嫩花梗腋芽诱导丛生芽。     

蝴蝶兰新品种“郑农火凤凰”的组培快繁技术研究

以蝴蝶兰新品种"郑农火凤凰"的花梗腋芽为外植体进行启动诱导,基本培养基为1/3MS,6-BA、腺嘌呤和NAA,分别设为3个处理,进行方差分析,结果表明:腋芽在1/3MS+6-BA4mg·L-1+腺嘌呤4 mg·L-1+NAA0.7 mg·L-1的培养基上诱导效果较好。丛生芽增殖和壮苗生根也分别进行正交实验,结果显示:去茎尖茎段在1/3MS+6-BA 2 mg·L-1+腺嘌呤3 mg·L-1+NAA0.2 mg·L-1+CM(椰汁)100 m L·L-1的培养基上可取得理想的增殖倍数;增殖无根苗在1/2MS+NAA 2 mg·L-1+IBA1 mg·L-1+蛋白胨1 g·L-1+香蕉泥100 g·L-1+活性炭1 g·L-1的培养基上生根效果最佳。     

杉木不同器官愈伤组织和再生芽的诱导效率

以杉木未成熟胚、种子发芽的下胚轴、子叶以及组培苗茎段为外植体,研究基本培养基、不同激素组合及浓度对杉木愈伤组织的诱导及再生芽发生的影响。结果表明:不同激素组合及浓度对不同外植体的愈伤组织诱导率有显著影响,对未成熟胚愈伤组织诱导最佳的培养基为MS+2,4-D 2 mg·L~(-1)+6-BA 1 mg·L~(-1)+KT 1 mg·L~(-1),诱导率为92.7%;对子叶、下胚轴愈伤组织诱导最佳的培养基为MS+6-BA 2 mg·L~(-1)+NAA 2 mg·L~(-1)+TDZ 0.01 mg·L~(-1),诱导率分别为97.4%和95.2%;对组培苗茎段愈伤组织诱导最佳的培养基为MS+2,4-D 1 mg·L~(-1)+NAA 2 mg·L~(-1)+TDZ 0.01 mg·L~(-1),诱导率为86.7%;MS+6-BA 0.5 mg·L~(-1)+KT 1.5 mg·L~(-1)是愈伤组织诱导再生芽的最佳培养基,诱导率为80%。质地疏松的愈伤组织其再生芽率最高(65%),单个质地均匀的愈伤组织其再生芽数可达6个;基本培养基对愈伤组织质地形态有较大影响,1/2MS培养基诱导出愈伤组织质地较疏松,MS培养基诱导出的愈伤组织质地均匀且表面可见颗粒状细胞团,DCR培养基诱导出的愈伤组织质地较密。     

矮牵牛(Petunia hybrida Vilm)组织培养技术研究

实验以矮牵牛(Petunia hybrida Vilm)的花瓣为培养材料,在MS培养基中附加不同浓度的细胞分裂素(6-BA)和生长素(NAA),进行矮牵牛快速繁殖技术研究。结果表明,MS+6-BA(2.0 mg.L-1)+NAA(0.1mg.L-1)培养基愈伤组织发生的较早,数量多,培养基为最佳分化培养基,不定芽发生早,粗壮,数量多,玻璃化程度很小;诱导不定根时,1/2 MS+NAA(0.5 mg.L-1)培养基诱导生根的时间较早,不定根发生率达100%。     

皱叶酸模的试管苗培养研究

为了对野生资源进行保护,同时满足人们的需求,以具生长点的皱叶酸模茎段为材料,采用植物组织培养方法,对生长点的分化培养、分化芽生根培养、试管苗移栽、定植进行了研究。结果表明:MS+NAA0.05mg·L-1+6-BA2.0mg·L-1+蔗糖30g·L-1是皱叶酸模生长点分化培养的理想培养基;诱导分化芽生根的理想培养基是MS+IAA0.2mg·L-1+蔗糖30g·L-1;最佳的分化模式是先生根,再加入液体形式的最适分化培养基;试管苗移栽成活率高达100%,定植的试管苗保持了野生植株的生物学性状。     

微毛樱离体快繁初步研究

以微毛樱茎段为外植体,探讨了不同生长调节物质对其不定芽诱导、增殖和生根的影响.结果表明,MS+1.0 mg·L-1 6-BA +0.05 mg·L-1 NAA为不定芽诱导的最适培养基,诱导率达87.5％;单芽在MS+ 0.5 mg·L -1 6-BA+0.05mg·L-1 NAA培养基中增殖系数为2.5,丛芽在MS +...     

不同培养条件对菜用大黄组培苗玻璃化的影响

为预防菜用大黄玻璃化苗的产生、提高组培苗的培养质量,以菜用大黄丛生芽为外植体,以1/2 MS为基本培养基,研究了蔗糖、琼脂、6-BA对菜用大黄组培苗玻璃化现象的影响,同时测定了玻璃化苗与正常苗的生理指标差异。结果表明:适于菜用大黄组培苗最大增殖及玻璃化率最小的培养基组合是添加30g·L~(-1)蔗糖+6g·L~(-1)琼脂+1.0mg·L~(-1) 6-BA+1.0mg·L~(-1) NAA的1/2 MS培养基;正常苗的可溶性糖和可溶性蛋白含量明显高于玻璃化苗,而玻璃化苗的组织含水量比正常苗的略高。     

大花萱草组织培养研究

采取大花萱草茎尖为外植体接种在不同培养基上,研究了不同浓度的NAA和6-BA对于外植体生长的影响,并探索了最适于产生愈伤组织和生根的培养基配方。结果表明,有利于外植体产生愈伤组织的培养基配方是MS+6-BA1.0mg·L-1+NAA0.05mg·L-1+30g糖+8g琼脂;适合愈伤组织诱导生芽培养基配方是MS+6-BA1.0mg·L-1+30g糖+8g琼脂;适合幼苗生根的培养基配方是1/2MS+NAA0.5mg·L-1+30g糖+8g琼脂。     

五彩椒(Capsicum annuum L.)的组织培养研究

以抗寒性较强的五彩樱桃椒为试验材料,对观赏椒的组织培养进行了研究。试验表明,最佳外植体为茎尖,茎尖的最佳消毒时间为3min;最佳诱导培养基为MS+6-BA5mg·L-1+NAA1mg·L-1;最佳分化培养基为MS+6-BA5mg·L-1+NAA0.1mg·L-1,最佳生根培养基为1/2MS+IBA0.25mg·L-1。     

展毛野牡丹组培快繁技术的研究

利用药用植物展毛野牡丹幼嫩茎段为外植体,进行组织培养,得出展毛野牡丹诱导、增殖和生根培养基的最佳配方。试验结果表明,外植体诱导的最佳培养基为MS+6-BA 0.5 mg.L-1+NAA 0.05 mg.L-1,分生芽继代增殖培养的最佳培养基为MS+6-BA 0.3 mg.L-1+NAA 0.05 mg.L-1,最佳生根培养基为1/2MS中附加IBA0.5 mg.L-1,生根率为100%。     

红叶石楠组织培养工厂化扩繁技术研究

以红叶石楠的侧芽和顶芽为材料进行组织培养试验。结果表明：外植体用0．1%HgCl_2消毒10～12 min,诱导培养基以MS+0．05 mg．L~1 NAA+2．0 mg·L~1 6-BA为佳,芽增殖培养基以MS+1．0 mg·L~1BA+0．1 mg’L~1 6-BA为佳,壮苗培养基以MS+0．5 mg·L~1 NAA+0．5 mg·L~1 6-BA为佳,生根培养基以1/2MS+1．0 mg·L~1 IBA为佳,将生根苗移入温室的穴盘中,基质以蛭石：珍珠岩：泥炭土=5：3：2较好,控制好室内的温度、光照和湿度,成活率可达90%以上。     

三尖杉无菌增殖培养技术的研究

对同一时期三尖杉(Cephalotaxus fortunei)取材以及不同时期取材的灭菌效果进行对比试验,结果表明带芽茎段取材时期以3月中旬为最佳,此时萌发的新梢污染率较低、存活率较高,以75%酒精浸泡1 min,0.1%HgCl2灭菌12 min处理,存活率最高为63.3%,达到较好的灭菌效果。不同培养基与激素组合对三尖杉茎段腋芽诱导及增殖培养效果的试验,结果表明:6-BA质量浓度对带芽茎段启动速度、芽体诱导率影响极显著,改良MS+6-BA3.0 mg.L-1+IBA0.5 mg.L-1为三尖杉带芽茎段启动培养芽体分化的最佳培养基组合,芽体诱导率为82.8%;改良MS+6-BA2.0 mg.L-1+IBA0.2 mg.L-1为增殖培养最佳培养基组合,增殖系数为3.9。