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1.
以绿巨人的幼嫩叶为外植体,Ms为基本培养基,添加2,4 ̄D、6 ̄BA、NAA等不同激素,通过愈伤组织途径诱导出完整植株,并进行了试管苗的移栽。  相似文献   
2.
3种牛大力种质资源的光合特性的比较   总被引:1,自引:0,他引:1  
为了探讨自然条件下不同种源牛大力光合特性的差异,本研究对3种不同来源的牛大力种质资源进行了光合特性观测,结果表明:广东信宜牛大力(GDXY)和广西钦州牛大力(GXQZ)的净光合速率日变化曲线呈双峰型,具有明显的午休现象,峰值出现在上午11:30和下午15:30;海南保亭牛大力(HNBT)不具有明显的午休现象。光响应曲线数据分析表明,GDXY具有较高的光饱和点(LSP)和表观量子效率(AQY),有利于碳水化合物的制造,在弱光阶段对光能的转化利用效率最高。GXQZ有较低补偿点(LCP)有利于碳水化合物的积累。HNBT暗呼吸速率(Rd)最高,说明该种源暗呼吸速率较大,不利于碳水化合物的积累。不同种源之间的光合特性有一定差异。  相似文献   
3.
以灯笼草的茎尖为外植体,研究了影响其初代、继代及生根培养的主要因素。试验结果表明:最适初代培养基为MS+6-BA 2.0 mg/L+NAA 0.2 mg/L;最适增殖培养基为MS+6-BA 1.5 mg/L+NAA 0.1 mg/L;最适生根培养基为1/2MS+NAA 0.5 mg/L。  相似文献   
4.
以蜻蜓凤梨试管苗叶片为外植体进行离体再生研究。结果表明,叶片诱导直接分化不定芽的最佳培养基是MS+BA 5.0 mg/L+IBA 1.5 mg/L,分化率高达80%。增殖培养基为MS+BA 0.5 mg/L+NAA 0.2 mg/L。壮苗培养基为MS+NAA 2.0 mg/L。生根培养基为MS+NAA 2.0 mg/L+AC 0.5 g/L,生根率达100%。  相似文献   
5.
植物种质资源超低温保存技术研究进展   总被引:7,自引:0,他引:7  
超低温保存技术是目前长期有效保存植物种质资源的唯一方法。综述了国内外超低温保存植物种质资源方面的研究进展,介绍了超低温保存的原理,材料的选择和预处理过程,以及不同的冷冻方法和冷冻后的化冻和洗涤过程。展望了超低温保存技术在植物种质资源保存中的应用前景。  相似文献   
6.
海南龙血树的组织培养与快速繁殖   总被引:4,自引:0,他引:4  
用种子作外植体,建立了海南龙血树(DracaenacambodianaPierreexGagnepain)的组织培养和再生体系。结果表明:海南龙血树种子诱导愈伤组织的最佳培养基为MS 6-BA3mg/L NAA0.3mg/L,诱导率达80%;附加6-BA2mg/L NAA0.2mg/L的MS培养基有利于芽的分化和增殖,培养60d左右,每个外植体分化形成的再生小植株数达8~20个;在1/2MS NAA0.5mg/L的培养基中诱导生根效果最好。  相似文献   
7.
选用鸦胆子健壮幼嫩茎尖作为组培试验材料,进行组培快繁的研究。结果表明:诱导愈伤组织形成的培养基组合为MS+6-BA2mg/L+NAA0.2mg/L,有利于愈伤组织生长;不定芽分化的培养基为MS+6-BA0.5mg/L+NAA0.05mg/L,有利于不定芽的分化;1/2MS+NAA1mg/L有利于组培苗不定根的形成。  相似文献   
8.
走马胎离体培养及植株再生   总被引:1,自引:0,他引:1  
以走马胎幼嫩叶片为外植体,研究不同培养基对走马胎叶片愈伤组织诱导、不定芽分化、增殖及生根培养的影响。结果表明:叶片在MS+6-BA 1.0mg·L~(-1)+NAA 1.0mg·L~(-1)培养基上诱导产生的愈伤组织最适合用于进行分化和增殖;愈伤组织分化不定芽的最适培养基为MS+6-BA 2.0mg·L~(-1)+NAA 0.1mg·L~(-1),分化率高达88.9%;壮苗培养基为MS+6-BA0.5mg·L~(-1)+NAA 0.1mg·L~(-1)+10%椰子水(CW);最适的生根培养基为MS+NAA0.1mg·L~(-1)+IBA 1.0mg·L~(-1),生根率达100%,根系发达,植株生长健壮。经生根培养及练苗,走马胎的假植成活率达85%。  相似文献   
9.
选用鸦胆子健壮幼嫩茎尖作为组培试验材料,进行组培快繁的研究。结果表明:诱导愈伤组织形成的培养基组合为MS+6-BA 2 mg/L+NAA0.2 mg/L,有利于愈伤组织生长;不定芽分化的培养基为MS+6-BA 0.5 mg/L+ NAA 0.05 mg/L,有利于不定芽的分化;1/2MS+NAA 1 mg/L有利于组培苗不定根的形成  相似文献   
10.
利用春羽的茎段和茎尖在MS BA1.5mg/L NAA 0.5mg/L KT 0.5mg/L培养基上先诱导出芽。再通过增殖培养基MS 6-BA 3mg/L NAA 0.2mg/L不断继代增殖,最后在培养基1/2MS NAA 0.5mg/L诱导生根形成完整植株。  相似文献   
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