西伯利亚百合花托的组织培养与离体快繁

以西伯利亚百合花托为外植体进行组织培养,适合愈伤组织诱导和分化的培养基为MS＋6-BA 1．0mg／L＋NAA 2．0mg／L,最佳增殖培养基为MS＋6-BA 1．0mg／L＋NAA 0．2mg／L,最佳生根培养基为1／2MS0＋NAA 0．2mg／L,最佳移栽营养土配方为园土：沙子=2：1。     

晚香玉组培技术研究

以单瓣、重瓣两个晚香玉品种叶片为材料,选用4种升汞消毒时间、6种愈伤组织诱导培养基、6种分化培养基和9种生根培养基,研究不同基因型和激素组合对再生体系建立的影响。结果表明：（1）叶片的消毒时间为0．1％HgCl2浸泡2min;（2）诱导单瓣叶片愈伤形成的较适培养基为：MS＋6-BA2．0mg／L＋NAA1．0mg／L：诱导重瓣叶片愈伤形成的较适培养基为：MS＋6-BA1．5mg／L＋NAA0．5mg／L．（2）2单瓣叶片分化最佳配方为：MS＋6-BA1．0mg／L＋NAA0．5mg／L;重瓣叶片分化的较适培养基为：MS＋6-BA0．5mg／L＋NAA0．2mg／L,（3）诱导生根的最佳培养基为：1／2MS＋KT0．2mg／L＋NAA0．5mg／L＋6-BA0．2mg／L。     

驱蚊香草组织培养与快速繁殖研究

以驱蚊香草不同部位为外植体,进行离体快繁试验,结果表明：外植体以叶片和顶芽容易诱导产生愈伤组织,最高诱导率达90％;诱导培养基以Ms＋6-BAl．0～2．0mg／L＋NAA0．2mg／L效果较好,平均芽诱导分化率达85．6％-86．7％;增殖培养基以MS＋6-BA1．0mg／L＋NAA0．1mg／L效果最好,丛生芽增殖最多,繁殖系数达6．12倍;诱导生根培养基以1／2MS＋NAA0．3mg／L最佳,生根率达到100％;假植20d后,移栽成活率达100％。     

西伯利亚百合花丝组织培养研究

本试验以东方百合杂种系的西伯利亚品种为试材,采用正交试验法,筛选出的花丝为外植体的最佳诱导培养基和最佳增殖培养基,并进行了生根、移栽实验。结果表明：西伯利亚百合最适合花丝愈伤组织诱导与分化的培养基为MS＋6-BA1．0mg／L＋IBA0．5mg／L;最佳增殖培养基为MS＋6-BA2．0mg／L＋IBA0．1mg／L＋NAA0．3mg／L。     

巨峰葡萄外植体愈伤组织的诱导和植株再生

选取了栽培品种巨峰作为试材,进行了外植体愈伤组织诱导和植株再生的研究．通过葡萄品系巨峰无菌外植体的获得,叶片的愈伤组织诱导、再分化,以器官发生途径实现植株再生．结果表明：外植体消毒灭菌过程中,用1g／L汞处理7min,外植体污染率和茎尖褐变的比率适中,而且茎尖被诱导分化的成活率最高,可达30．0％．最适的分化培养基为MS＋6-BA1．0mg／L＋NAA0．01mg／L;叶片愈伤组织诱导的培养基选择MS附加5．0mg／L6-BA和0．5mg／LNAA较为适宜;MS＋6-BA0．5mg／L＋NAA0．05mg／L最适宜巨峰葡萄愈伤组织再生不定芽;将所得的不定芽继代增值诱导生根,1／2MS＋IBA0．2mg／L为理想的生根培养基,根长适中,根数较多．初步建立了巨峰葡萄栽培品系的再生体系．     

灯盏花组培快繁与植株再生

[目的]建立较为系统的灯盏花组培体系,培育、壮大和发展灯盏花这一独具特色和优势的产业。[方法]以灯盏花（Erigeron breviscapus）的叶片为外植体,用不同浓度的激素6-BA、2,4-D、KT和NAA对其进行愈伤组织的诱导和再生植株的研究。[结果]诱导愈伤组织最佳的培养基是MS＋KT0．5mg／L＋2,4-D10mg／L和MS＋2,4-D0．5mg／L＋6-BA0．5mg／L,诱导率为100％;二者相比,前者长出的愈伤组织较为紧密,而后者松散性好;MS＋6-BA0．5mg／L＋10％香蕉汁是诱导芽最佳的培养基,达87％;加入0．3mg／L NAA的1／2MS培养基对生根最有利,生根率达83％。[结论]生长素与细胞分裂素的合理配比有利于快速构建灯盏花培养体系。     

剑麻叶片愈伤组织诱导及再生体系的建立

以剑麻幼叶为外植体,进行愈伤组织的诱导试验,建立从愈伤组织到再生植株的培养体系。结果表明：诱导愈伤组织阶段表现最优的配方是N6＋NAA0．2mg／L＋6-BA3．0mg／L,而后愈伤组织转入MS＋TDZ1．0mg／L＋NAA0．05mg／L的培养基中48d便可诱导出芽,在生根培养基MS中生根率可达90％。     

龙吐珠组培快繁技术初探

[目的]探究龙吐珠最佳组织培养方案。[方法]以马鞭草科龙吐珠叶片、茎段、腋芽为外植体,进行组培快繁技术研究。[结果]最适宜外植体为茎段;最适宜消毒处理是消毒剂为0．1％升汞溶液,消毒时间为6min。产生侧芽的最佳培养基为1／2MS＋6-BA1．00mg／L＋NAA0．05ms／L＋IBA0．50mg／L,最适愈伤组织诱导及继代培养基为1／2MS＋6-BA2．00mg／L＋NAA0．10mg／L,平均诱导率为86．2％;最适分化培养基是1／2MS＋6-BA1．00mg／L＋NAA0．10mg／L＋KT 0．20mg／L,平均分化率为76．7％;不定芽的最适生根培养基是1／2MS＋N从0．01mg／L,其生根率为100％。[结论]该方案可为龙吐珠规模化生产提供技术支持。     

香根草外植体的选择及植株再生试验

为建立香根草组织培养及植株再生体系,分别选取生长健壮无病虫害的植株茎杆、根、叶和幼嫩芽不同部位进行外植体选择及愈伤组织诱导,以及香根草外植体消毒方法和激素处理及培养基对丛生芽诱导的影响试验.结果表明,茎杆、根、叶作为外植体,诱导不出愈伤组织.幼嫩芽是最佳香根草外植体的选择.0.1％升汞对各部位处理效果成功率在65％以上,幼嫩芽消毒浸泡8 min成功率达88％.在MS＋6-BA 1.5 mg/L＋NAA 0.1 mg/L的培养基上培养25 d幼芽愈伤组织诱导率为100％.在MS＋6-BA 0.8 mg/L＋NAA 0.2 mg/L培养基上培养20 d诱导丛生芽效果最好,增殖系数为6.4.生根培养基选用1/2 MS＋NAA 0.3 mg/L＋IAA 0.1 mg/L为最佳,生根率达90％以上.     

唐菖蒲球茎芽高频再生体系的建立

将带芽的唐菖蒲子球茎切块接种在附加2,4-D3．0mg／L的MS基本培养基上诱导愈伤组织的发生。愈伤组织转至MS＋6-BA0．5mg／L＋NAA0．1mg／L诱导芽的分化。丛生芽继代增殖在MS＋6-BA0．5mg／L＋NAA0．1mg／L上,增殖系数最高。生根培养以1／2MS＋NAA0．1mg／L效果最佳。     

花魔芋组织培养的研究

[目的]筛选适合花魔芋生长的诱导、分化和生根培养基。[方法]以湖北省秭归县的花魔芋球茎和鳞片作为外植体,以MS培养基为基本培养基,添加不同激素,分别组配成10种诱导培养基和分化培养基进行组织培养,然后将诱导的魔芋丛芽切成单株后接入MS＋NAA0．1—0．5mg／L生根培养基。研究不同激素配比对愈伤组织形成和芽分化以及生根的影响。[结果]球茎和鳞片在MS＋6-BA1.0mg／L＋NAA1．0mg／L培养基上容易诱导愈伤组织,诱导效率分别为92％和90％,且愈伤组织容易分化。球茎在MS＋6-BA1．5mg／L＋NAA0．15mg／L培养基上分化效率为86．7％,鳞片在MS＋6-BA2．0mg／L＋NAA0．2mg／L培养基上分化效率为83．3％。将球茎和鳞片分化出的不定芽转至MS＋NAA0．5mg／L的培养基上,生根率可达94％,20d后培养出完整植株。[结论]该试验初步建立魔芋的再生体系,为进行大规模生产魔芋种苗提供良好技术支持。     

半夏的组织培养与快繁试验

以传统中药半夏的小块茎为外植体进行组织培养,对适合不定芽分化增殖、生根的培养基进行了研究。结果表明,利于愈伤组织诱导的培养基为MS＋6-BA2．0mg／L＋NAA0．2mg／L,利于不定芽增殖的培养基为MS＋6-BA2．0mg／L＋NAA0．5mg／L,利于生根的培养基为MS＋NAA0．5mg／L。试验表明,应用本项组织培养技术大批量生产优质半夏种苗是可行的。     

魔芋无毒叶柄离体快繁体系的建立

以经检测合格无毒的花魔芋试管苗叶柄为外植体,构建魔芋脱毒离体快繁体系。在12种培养基上进行愈伤组织诱导,筛选出M8（Ms＋6-BA0．5mg／L＋MA0．1mg／L）为愈伤组织诱导最适培养基,诱导率达100％;以叶柄愈伤组织为外植体,在5种培养基上进行芽的分化,筛选出帕（Ms＋6-BA1．0mg／L＋NAA0．1mg／L）为芽分化最适培养基,分化率达66．7％;以芽分化中形成的有效芽苗为外植体,在7种蚌养基上进行根的诱导,筛选出M11（MS＋6-BA1．5mg／L＋NAA0．15mg／L）为生根培养最适培养基,生根率达100％。     

长寿花快繁体系的建立

实验采用了愈伤组织和增强腋芽生枝能力两种途径对长寿花进行组织培养。愈伤组织途径：基本培养基为MS，最佳外植体为叶片．诱导愈伤培养基中PGR最佳浓度配比为：6-BA(2．0mg／L) NAA(0．4mg／L) 2，4-D(0．8mg／L)，胚状体的分化培养基中不加入生长调节物质效果最好。增强腋芽生枝能力途径：基本培养基为MS，外植体为带节的茎段，诱导丛生芽培养基中PGR最佳浓度配比为：6-BA(3．0mg／L) NAA(0．4mg／L)。生根培养中，最佳培养基为I／2MS NAA(0．2mg／L)。生根后，待根长到3-5cm即可炼苗、移栽。     

瓜叶菊花梗和花托的愈伤组织诱导与植株再生研究

为建立瓜叶菊愈伤组织再生体系，以瓜叶菊花梗、花托为外植体进行了愈伤组织诱导和分化研究．结果表明：1）在MS＋2，4-D2mg／L＋NAA0．1mg／L，3／4MS＋2，4-D2mg／L＋6-BA1mg／L＋NAA0．1mg／L，3／4MS＋6-BA2mg／L＋NAA0．1mg／L培养基上花梗、花托的出愈率可达100％，但在3／4MS＋6-BA1mg／L＋NAA0．1mg／L，3／4MS＋6-BA1mg／L培养基上花梗的出愈率不及花托；2）3／4MS无激素培养基对花托愈伤组织芽的分化较好，诱导率可达95％，3／4MS＋6-BA1mg／L培养基对花梗愈伤组织芽的分化较好，诱导枣为90％；3）W生苗在1／2MS＋IBA0．2mg／L培养基中生根完成植株再生。     

菊花脑叶片组织培养再生植株的研究

[目的]建立菊花脑叶片组织培养再生技术。[方法]以菊花脑叶片作为外植体,以MS为基本培养基,通过添加不同激素设计10种培养基,研究不同种类和浓度的激素组合对菊花脑不定芽和根诱导率的影响,筛选愈伤组织诱导、芽诱导及生根的最佳培养基。[结果]将无菌苗的叶片外植体接种于最佳愈伤组织诱导培养基MS＋2．0mg／L6-BA＋0．2mg/L NAA,培养15d可获98．0％的诱导率;之后将带有少量外植体的愈伤组织切下,接种到最佳芽诱导培养基MS＋1．0mg／L6-BA＋0．5mg／L NA量上培养,可获94．0％的出芽率;然后再将1cm以上的再生芽转接至最佳生根培养基MS＋IBA 0．05mg／L上生根,生根率这100％;生根25d以上的幼苗经炼苗和移栽后,成活率在95％以上。[结论]建立了菊花脑叶片组织培养再生植株的技术程序．     

红掌工厂化育苗关键技术研究

[目的]研究红掌工厂化育苗的关键技术。[方法]以红掌盆花和切花品种的叶片、叶柄、花苞片和花苞柱头为外植体,进行组培养快速繁殖技术研究,探讨外植体的选择和消毒条件以及不同培养基对红掌愈伤组织的诱导、增殖和生根影响。[结果]叶柄为最佳外植体,愈伤诱导率最高,达78.3%;外植体采用0.1%HgCl2消毒8 min的效果最好;粉冠军和MIDORI的最佳愈伤组织诱导培养基分别为1/2MS＋6-BA1.50 mg/L＋2,4-D0.50 mg/L＋NAA0.10 mg/L和1/2 MS＋6-BA1.50 mg/L＋KT1.00 mg/L＋2,4-D0.10 mg/L;最佳愈伤组织继代培养基分别为MS＋6-BA1.00 mg/L＋NAA0.50 mg/L＋2,4-D0.30 mg/L和MS＋6-BA0.50 mg/L＋KT0.50 mg/L＋NAA0.10 mg/L,添加10%的椰子汁或香蕉浆有利于增殖和丛芽生长,增殖率最高达2.83倍;最佳生根培养基为1/2 MS＋NAA0.10 mg/L＋IAA0.10 mg/L,生根率达100%。[结论]该结果为红掌工厂化育苗体系的建立奠定了基础,对确保红掌产业的发展具有重要意义。     

矮生一品红组织培养快繁体系的建立

以矮生一品红的幼叶、幼茎、茎芽为外植体，研究了影响丛芽诱导、增殖、生根壮苗的组培快繁的主要因素．结果表明：茎段、茎芽是诱导丛芽的较好试材．适合诱导胚性愈伤组织和芽分化的培养基为MS＋6-BA1．0mg／L＋NAA0．1mg／L；适合丛芽增殖成苗的培养基为MS＋6-BA1．0mg／L＋IAA0．1mg／L，继代增殖培养40d的平均增殖倍数为11；适合生根壮苗的培养基为1／2MS＋IBA0．9mg／L，开始生根天数为8d。生根率可达85％．采用河砂和营养土两步炼苗。移栽成活率可达90％以上．     

棣棠花组织培养与快速繁殖技术研究

[目的]提高棣棠花育苗繁殖速度。[方法]以棣棠花嫩茎为外植体,进行组织培养与快速繁殖研究。[结果]在MS＋2．0mg／L 6-BA＋0．2mg／L NAA培养基中,簇生芽分化数最多,质量最好,分化率这100％;在MS＋1．0mg／L 6-BA＋0．5mg／L KT＋0．1mg/L NAA培养基中,增殖倍数最高,为11．87;在1／2MS＋0．1mg／L NAA培养基中生根效果最好,每个嫩茎基部有3～5条根;炼苗成功后移栽成活率达96％。[结论]诱导簇生芽的最佳培养基为NS＋2．0mg／L 6-BA＋0．2mg／L NAA,继代培养的最佳培养基为MS＋1．0mg／L 6-BA＋0．5mg/L KT＋0．1mg／L NAA,再生苗在1／2 MS＋0．1mg／LNAA的培养基上生根效果较好。     

辽东楤木愈伤组织诱导及增殖技术研究

以辽东楤木茎尖、幼叶、嫩茎、休眠芽为外植体,以MS为基本培养基,附加不同种类和浓度的植物生长调节物质诱导丛生芽及再生植株,筛选出适合于辽东楤木组织培养的系列培养基配方。结果表明。愈伤组织诱导的最佳培养基为：MS＋6-BA2．0mg／L＋NAA0．1mg／L（或IAA0．2mg／L）,幼叶为愈伤组织诱导的理想外植体,30d继代一次分化效率较高,达到73％;不定芽分化的最佳培养基为Ms＋6-BA1．0～1,5mg／L＋IAA0．1-43．15mg／L＋NAA0．1-43．15mg／L：不定芽生根的最佳培养基为1／2MS＋NAA0．5mg／L：按1：1混配的蛭石与草炭为试管苗移栽最适基质。