加工番茄离体再生体系的建立

以加工番茄B04子叶盘和下胚轴切段为外植体,研究了不同种类和浓度的细胞分裂素(ZT、6-BA和KT)和生长素(IAAI、BA和NAA)组合及附加物AgNO3对外植体不定芽诱导的影响。结果表明,细胞分裂素ZT的不定芽诱导效果明显优于6-BA和KT,KT诱导效果最差;生长素IAA的不定芽诱导效果优于IBA和NAA;在不同的激素组合中,不定芽诱导率最高的培养基为MS 2.0 mg/L ZT 0.2 mg/L IAA。再生芽在MS 0.1mg/L IAA生根培养基上能正常生根,并发育成完整的小植株。     

膏桐叶片再生植株体系的建立

[目的]研究不同激素组合对离体叶片再生体系建立的影响。[方法]选用6-BA与KT为分裂素,以无菌苗的离体叶片为外植体,在MS培养基中进行不定芽诱导,经增殖培养后,用生长素NAA、IBA促进生根,从而判断不同激素对不同外植体诱芽、增殖、生根的影响。[结果]在MS培养基中,单独使用分裂素6-BA或者KT与生长素NAA的组合都不能较好地对叶片进行不定芽的诱导。在同时添加1.00mg/L的6-BA和KT以及0.03mg/L的NAA后对不定芽的诱导效果最好,诱导率达90%;加入0.50mg/L的6-BA、0.50mg/L的KT和0.02mg/L的NAA后,不定芽的增殖和伸长效果较好;在加入0.10mg/LNAA的MS培养基上生根效果最佳。[结论]以MS培养基用适量浓度植物激素诱导膏桐离体叶片,可建立稳定的再生体系,为膏桐的组培扩繁体系提供了一种新的选择。     

非洲菊组织培养与快速繁殖试验研究

以非洲菊的花托、茎尖、花梗为外植体进行组织培养快速繁殖试验,结果表明:适合花托外植体愈伤组织不定芽诱导的培养基为"池上真一培养基"+6-BA 2 mg/L+NAA 0.5 mg/L,适合茎尖外植体愈伤组织不定芽诱导的培养基为MS+KT 10 mg/L+IAA 0.5 mg/L,适合花梗外植体愈伤组织不定芽诱导的培养基为MS+6-BA 10 mg/L+IAA 0.5 mg/L;适合非洲菊试管苗继代增殖的培养基为MS+KT 10 mg/L+IAA0.5 mg/L;适合非洲菊试管苗生根培养的培养基为1/2 MS+NAA 0.03 mg/L。     

非洲菊品种粉立新的组织培养快速繁殖技术研究

以非洲菊粉色品种粉立新的幼蕾为外植体,选用MS为基本培养基.附加激素6-BA、KT和NAA,研究了不同激素浓度组合对外植体不定芽分化、增殖培养和生根培养的影响.结果表明,诱导芽的分化时以MS+6-BA 7mg/L+NAA0.1 mg/L的效果最佳;增殖培养以MS+6-BA0.3～0.4mg/L+KT0.2～0.3mg/L为佳;生根培养以MS+NAA0.3mg/L+IAA0.1mg/L的培养基最好,生根率达100%.     

龙椒2号大甜椒子叶离体培养中诱导不定芽的研究

[目的]采用子叶离体培养方法快速繁殖龙椒2号大甜椒,尤其在诱导不定芽阶段能更快、更多地诱导出不定芽。[方法]在诱导不定芽阶段中以MS为基本培养基,添加不同的激素配比进行对比,以优选出最佳的激素配比方案。[结果]生长素NAA对形成愈伤组织有主导作用,添加量以0.6 mg/L较为合适,6-BA和KT对促进芽分化都能起主导作用,6-BA以0.4 mg/L为宜,KT以1.0 mg/L为宜。[结论]选用子叶切片转入MS＋NAA0.6 mg/L培养基上,诱导出愈伤组织,然后将愈伤组织切块转入MS＋6-BA0.4 mg/L＋NAA0.5mg/L或MS＋KT1.0 mg/L＋NAA0.5 mg/L培养基上,分化出多数量的不定芽,然后利用这些不定芽进一步扩繁、生根,进而形成再生植株。     

贵州非洲菊主栽品种工厂化育苗技术研究

为生产提供优质的非洲菊种苗,以非洲菊桔红品种大零88和红色品种热带草原的幼蕾为外植体,选用MS为基本培养基,附加激素6-BA、KT和NAA,研究了不同激素浓度组合对外植体不定芽分化、增殖培养和生根培养的影响.结果表明:诱导芽分化时,大零88以MS+6-BA 6mg/L+KT 4mg/L+NAA 0.1 mg/L的效果最佳;热带草原以MS+6-BA 9 mg/L+KT 4 mg/L+NAA 0.1 mg/L的效果最佳.增殖培养中,大零88以MS+6-BA 0.3～0.5mg/L+KT 0.2～0.4mg/L+NAA 0.01～0.05mg/L为佳;热带草原以MS+6-BA 0.2～0.4mg/L+NAA 0.01mg/L为佳.生根培养大零88以MS+NAA 0.4mg/L+IAA 0.1 mg/L的生根率达100%,热带草原以MS+NAA 0.3～0.4 mg/L+IAA 0.1～0.2 mg/L的生根培养基最好.     

培养基和植物激素对非洲菊叶片愈伤组织诱导的研究

为了完善非洲菊组培快繁体系和推动非洲菊种苗工厂化生产,本试验以非洲菊叶片为外植体,对影响非洲菊愈伤组织诱导的基本培养基、激素种类及其浓度等关键因素进行了研究。结果表明,基本培养基以MS诱导愈伤组织效果最好,诱导率可达78.3%;2,4-D比NAA和IBA能够较快地诱导叶片产生愈伤组织,其中以1.0mg/L2,4-D诱导率最高,可达100%,且形成愈伤组织多;6-BA诱导愈伤组织的效果优于KT和TDZ,2.0mg/L6-BA的诱导率为89.7%;叶片在6-BA2.5mg/L+2,4-D0.5mg/L+NAA0.4mg/L培养基上愈伤组织诱导率最高,诱导出的愈伤组织生长快,并可分化出不定芽。     

红掌组织培养中不定芽诱导及增殖研究

目的:探析优化红掌组织培养中不定芽诱导及增殖的培养基比例。方法:选用"红粉佳人"品种红掌组织,以叶柄作为初代培养,分别选用MS培养基(100%比例)、MS培养基(50%)、MS培养基(25%)进行诱导不定芽培养;对红掌愈伤组织做分化处理,添入浓度不一的细胞分裂素6-BA(0.5mg/L、1.0mg/L、1.5mg/L、2.0mg/L),生长素IBA(0.1mg/L、0.3mg/L、0.5mg/L、0.7mg/L),生长素NAA(0.1mg/L、0.3mg/L、0.5mg/L、0.7mg/L),评估红粉佳人愈伤外植体培养不定芽诱导及分化增殖的变化特征。结果:MS培养基(100%比例)对红粉佳人品种红掌组织愈伤不定芽诱导效果及增殖系数最高,MS培养基(25%)最低,不同梯度MS培养基的诱导效率、增殖系数差异明显(P0.05);0.5mg/L的6-BA对红掌愈伤组织的不定芽诱导率、增殖系数最小,1.0mg/L的6-BA可明显促进不定芽诱导率、增殖系数提升;0.1mg/L生长素IBA对红掌愈伤组织的不定芽诱导率最小,当生长素IBA≥0.3mg/L可明显促进不定芽诱导率提升(P0.05),0.1mg/L生长素NAA对不定芽诱导率为57.39%,0.3mg/L生长素NAA对不定芽诱导率为72.03%,0.5mg/L生长素NAA对不定芽诱导率为64.37%,0.7mg/L生长素N AA对不定芽诱导率为91.89%,表明生长素N AA用于红掌愈伤组织不定芽诱导仅在0.7mg/L水平才具备良好效果。结论:红掌组织培养中选用100%完整配比的MS培养基与1.0mg/L细胞分裂素平6-BA联合0.3 mg/L生长素IBA作为不定芽诱导及增殖的最佳培养配比。     

露水草愈伤组织的诱导及分化研究

以露水草的种子为外植体,以10%次氯酸钠为消毒剂,以20~30 min为消毒时间建立无菌苗具有最好效果;MS培养基较适合露水草愈伤组织的形成和芽的分化;以MS 6-BA 1.0 mg/L NAA 1.0 mg/L的激素组合诱导露水草的种子和茎形成愈伤组织,并分化成芽具有较好效果,露水草的根、叶形成愈伤组织的能力较差;露水草的种子、茎段易于诱导形成不定芽;KT、6-BA对露水草不定芽的形成是必要的,其效果明显优于ZT和2-ip,以MS KT1.0 mg/L NAA0.1 mg/L或MS 6-BA1.0 mg/L NAA 0.1 mg/L的激素组合诱导露水草的种子、茎段形成不定芽具有较好效果。     

激素对非洲菊花托愈伤组织诱导和不定芽分化的影响

在MS培养基中分别加入不同浓度的6-BA和NAA,对非洲菊的幼嫩花托进行培养。结果表明,不同激素组合对非洲菊愈伤组织的诱导、不定芽的分化和不定芽的增殖影响明显,以MS+6-BA 7 mg/L+NAA 0.5 mg/L+琼脂9 g/L+3%蔗糖为最佳培养基。     

老虎须的组织培养与植株再生

以老虎须茎段为试验材料,采用不同激素组合对其进行愈伤组织诱导和分化、芽增殖与生根研究。结果表明:老虎须茎段愈伤组织诱导和分化的最适培养基分别为MS+6-BA 1.0 mg/L+KT 3.0 mg/L+NAA 0.5 mg/L和MS+6-BA 1.0 mg/L+KT 1.0 mg/L+NAA 0.5 mg/L;芽增殖的最适培养基为MS+6-BA 2.0 mg/L+IAA 0.2 mg/L;生根的最适培养基为1/2MS+IBA0.5mg/L。     

樱桃番茄的组织培养与离体快繁技术研究

以樱桃番茄(Lycopersicon esculuntumvar.Cerasiform e)的下胚轴、子叶为外植体,在附加不同质量浓度6-BA和NAA的1/2 MS培养基上进行培养。实验结果显示:消毒方法对种子发芽率的影响很大,以10%NaC lO消毒20 m in最为有效,且能够保证种子的最大发芽率。樱桃番茄下胚轴和子叶的最佳不定芽诱导培养基分别为1/2 MS 3.0 mg/L 6-BA 0.2 mg/L NAA和1/2 MS 2.0 mg/L 6-BA 0.1 mg/L NAA。最佳增殖培养基为1/2 MS 2.0 mg/L 6-BA 0.1 mg/L NAA,其增殖系数为3.4。诱导生根培养基则以1/2 MS 0.1 mg/L NAA最好。     

唇萼薄荷的组织培养与植株再生

以唇萼薄荷(M.pu leg ium)的叶片、顶芽、茎段作为外植体进行离体培养,结果表明,顶芽为最适的外植体,最利于不定芽分化的培养基为M S+2.0 m g/L 6-BA+0.1 m g/L NAA,丛芽增值的最佳培养基为M S+2.0 m g/L 6-BA+0.05 m g/L NAA,最优的生根培养基为1/2 M S+0.05 m g/L NAA,生根率达100%。     

6-BA和NAA对菊花叶片离体再生的影响

以叶片为外植体进行了菊花(Chrysanthemum morifllium)组织培养技术的研究。结果表明,菊花叶片用0.1%HgCl2消毒7min为佳;较低浓度的6-苄氨基腺嘌呤(6-BA)和较高浓度的α-奈乙酸(NAA)有利于愈伤组织的诱导,其中以MS 1.0mg/L6-BA 0.3mg/LNAA诱导的效果较好;较高浓度的6-BA和较低浓度的NAA则有利于芽的诱导,其中以MS 4.0mg/L6-BA 0.2mg/LNAA诱导的效果较好;以1/2MS附加0.1mg/LIBA的培养基诱导的根量最大,且根粗长。     

中国樱桃泰小红樱的组培快繁研究

以中国樱桃＇泰小红樱＇的茎段为外植体,研究WPM和MS不同培养基以及6-BA和NAA不同激素浓度组合对外植体增殖的影响,建立其组织培养的快繁体系。结果表明：（1）泰小红樱茎段最佳的初代培养基为MS＋1.0 mg/L6-BA＋0.1 mg/L NAA,诱导分化率高,腋芽新梢生长健壮;（2）最佳继代培养基为WPM＋1.0 mg/L6-BA＋0.1 mg/L NAA,丛芽增殖与腋芽增殖并存,增殖倍数显著提高,高达8.0倍,且芽苗健壮,叶色浓绿;（3）最佳生根培养基为1/2MS＋0.5 mg/L IBA＋20 g/L蔗糖＋5 g/L琼脂,生根率高,根系长且数量多。     

猪笼草组培快繁技术研究

以猪笼草的顶芽和腋芽为外植体进行组培快繁研究,结果表明:在1/2MS 6-BA 1mg/L NAA 0.1mg/L培养基中培养10d后,能诱导出幼芽;1/2MS 6-BA 2mg/L NAA 0.1mg/L培养基对丛生芽的增殖效果最好,增殖倍数达4.1;生根培养基以1/4MS 6-BA 0.1mg/L NAA 0.5mg/L为最佳,生根率可达95%以上。     

多因子正交试验对甜叶菊丛生芽诱导条件的筛选

利用正交试验设计方法探讨了植物生长物质(6-苄基腺嘌呤、奈乙酸)、蔗糖、水解酪蛋白(CH)对甜叶菊丛生芽诱导的影响。结果表明:蔗糖对丛生芽诱导影响最大,其次是6-BA,NAA、CH影响较小。筛选出甜叶菊丛生芽诱导的最适培养基为MS 6-BA1mg/L 琼脂6g/L 蔗糖30g/L。继代培养采用MS 6-BA0.5mg/L NAA0.05mg/L 琼脂6g/L 蔗糖30g/L。生根最适培养基为1/4MS 0.1mg/LIBA 琼脂6g/L 蔗糖30g/L 1g/L活性炭,生根率达100%。已获得驯化移栽成活的植株,移栽成活率为92.13%。     

‘紫泉’萱草的组培快繁技术研究

[目的]建立一套完整的‘紫泉’萱草组织培养快繁技术体系。[方法]选取‘紫泉’萱草的花托及幼嫩的茎段为外植体,旨在建立‘紫泉’萱草离体培养的有效再生体系。[结果]适合花托愈伤组织产生的培养基是MS+6-BA 2.0 mg/L+NAA 0.01 mg/L,适合茎段愈伤组织产生的培养基是MS+6-BA 2.0 mg/L+NAA 0.1 mg/L。诱导不定芽分化与增殖的最佳培养基为MS+6-BA 2.0 mg/L+NAA 0.1mg/L,最佳生根培养基为1/2MS+NAA 0.4 mg/L。[结论]为‘紫泉’萱草的大规模生产提供基础数据。     

金边瑞香的组培快繁技术研究

以金边瑞香的茎段为外植体,在MS基本培养基中添加不同浓度的6-BA和NAA,采用侧芽诱导法快速繁殖,研究了金边瑞香的组培快繁技术。结果表明,最佳启动培养基为MS+6-BA 1.0 mg/L+NAA 0.1~0.2 mg/L,最佳增殖培养基是MS+6-BA 2.0 mg/L+NAA0.2 mg/L,最佳生根培养基为1/2MS+NAA 0.5 mg/L,生根率100%,且根系发达。经过该试验的驯化移栽,试管苗成活率达85%以上。     

迷迭香组培快繁技术研究

以迷迭香茎段为外植体进行组织培养,结果表明:在M S 6 BA 4.0m g/L NAA 0.1m g/L培养基上培养一周后,诱导出幼芽;M S 6 BA 3.0m g/L KT 0.2m g/L NAA 0.1m g/L培养基对丛生芽的增殖效果最好,增殖倍数达3.70;生根培养基选用1/2M S NAA 0.5m g/L为最佳,生根率达86.7%。