海南冬青组培快繁体系的建立

建立海南冬青(Ilex hainanensis Merr.)的组培快繁技术体系。以海南冬青成熟种子为材料,以MS、1/2MS为基本培养基,采用正交试验设计法研究不同植物生长调节剂组合对海南冬青种子萌发、初代诱导、增殖培养、生根培养的影响,筛选出组培快繁各环节的最佳培养基配方。研究结果,海南冬青种子萌发的最佳培养基为MS+6-BA0.5 mg/L+GA30.5 mg/L,萌发率达90%以上;丛生芽诱导的最适培养基为MS+6-BA 3.0 mg/L+KT 1.0 mg/L+NAA 0.1 mg/L,诱导不定芽数为28.56个;最佳继代增殖培养基为MS+6-BA 2.5 mg/L+KT 0.75 mg/L+NAA0.1 mg/L,20 d增殖系数为7.30;最适的生根培养基为1/2MS+IBA 0.75 mg/L+NAA 0.5 mg/L,生根率为91.33%,在菜园土-细河沙(3∶1)中移栽成活率为90%。表明本组培快繁技术体系不但增殖系数高,而且组培苗质量好,可为海南冬青的规模化生产提供优质种苗与技术指导。     

勿忘我组培快繁技术的优化

以蓝色勿忘我种子为材料,发芽后取其幼苗茎尖、叶片和下胚轴为外植体,进行勿忘我组培快繁技术的优化试验。通过研究外植体、接种方式、培养基配方、光质对勿忘我不定芽形成、增殖、生根的影响,优化筛选出适宜勿忘我组培的最佳外植体为茎尖,其诱导率最高达69.32%,其次为子叶,其诱导率为18.06%;适宜茎尖诱导分化的培养基为MS+0.9 mg/L 6-BA+0.2 mg/L NAA+0.2 mg/L KT,诱导率最高达83.33%;适宜子叶诱导分化的培养基为MS+0.7 mg/L 6-BA+0.2 mg/L NAA+0.2 mg/L KT,诱导率最高达20.83%;适宜增殖培养的培养基为1/2MS(不加肌醇,将维生素B1提高到1 mg/L)+0.4 mg/L 6-BA+0.2 mg/L NAA+0.2 mg/L KT,增殖系数为16.5;适宜生根的培养基为1/2MS+0.4 mg/L NAA,采用温差培养法,生根率提高到90%。适宜勿忘我增殖培养的光质为红光,之后转入白光进行培养。本试验的结果可为勿忘我组培快繁技术的应用提供一定的技术支撑。     

火炬姜种子无菌快速繁殖技术研究

为了加速火炬姜无菌培养,以火炬姜成熟种子作为外植体,通过比较MS无机盐浓度和植物生长调节剂种类及浓度配比、以及生根苗的移栽基质,建立火炬姜的组培快繁技术。结果表明:种子在培养基MS+6-BA2.0mg·L~(-1)中萌发;培养基MS+6-BA 3.0mg·L~(-1)+NAA 0.5mg·L~(-1)有利于丛生芽的生长发育,30d增殖系数为5.75;3/4MS+NAA 1.0mg·L~(-1)适宜诱导生根获得再生植株,生根率100%;生根苗移栽于椰糠中成活率98%,运用该组培快繁技术,可以高效繁殖火炬姜种苗。     

柳叶栒子组培快繁体系的建立

以柳叶栒子的实生苗为试验材料,建立无性快繁体系。结果表明,适宜的初代培养基为MS+0. 8 mg/L6-苄氨基腺嘌呤(6-BA)+0. 02 mg/Lα-萘乙酸(NAA)+1. 2 mg/L PPM(plant preservative mixture,植物组培抗菌剂);最适宜柳叶栒子继代增殖的培养基是MS+1. 0 mg/L 6-BA;最适宜柳叶栒子的生根培养基是F+0. 05 mg/L NAA;生根苗驯化移栽后的成活率可达72%以上。     

姜荷花组培快繁一次性成苗技术的试验研究

姜荷花是一种具有较高观赏价值的花卉,为简化姜荷花的组培流程,提高姜荷花的组培效率和质量,对姜荷花组培快繁一次性成苗技术进行了试验研究。研究结果表明,0.5%～1.0%HgCl_2灭菌姜荷花球茎20～30 min可以获得无菌外植体;初代、增殖的适合培养基是MS+6-BA 1.0～2.0 mg/L+NAA 0.2～0.5 mg/L,诱导率达100%,增殖系数为3.21～4.12;成苗的适合培养基是MS+6-BA 0.4～0.8 mg/L+NAA 0.01 mg/L,每个半芽可分化形成1～5棵生长健壮、生根率为100%且根系发达的植株。研究结果可应用于姜荷花的组培工厂化育苗。     

台湾大肥姜茎尖组培及田间试验初步研究

以台湾大肥姜为试材,进行了茎尖组培、组培快繁、生根培养、组培苗移栽等探索,成功获得了茎尖组培苗,筛选出适宜茎尖组培诱导培养基为MS 6 BA 1.5 mg/L NAA 0.5 mg/L,适宜组培快繁培养基为MS 6 BA 1.0 mg/L NAA 0.2 mg/L,适宜生根培基为MS NAA 0.2 mg/L.田间试验明确了组培姜二代具有明显的增产效果和对姜瘟的抗病性,组培姜二代比普通姜增产25.9%.     

红花檵木组培快繁技术的研究

为满足生产上对红檵木的需求,深入研究了红花檵木的组培快繁技术。结果表明:红花檵木组培快繁中,初代培养基MS+6-BA 1.0mg·L-1+NAA 0.5mg·L-1;继代增殖培养基MS+6-BA 0.1mg·L-1+NAA0.1mg·L-1;生根培养基1/2MS+IAA 2.5mg·L-1+0.1%活性炭;继代培养和生根培养时用有透气孔的培养瓶有利于组培苗以及组培苗根系的生长。     

彩色马蹄莲‘高原’组培快繁技术的研究

以彩色马蹄莲‘高原’块茎为材料研究其组培快繁技术,筛选适合彩色马蹄莲快繁的培养基。结果表明：在初代试验中对块茎的消毒以0.1%升汞处理15 min为宜;MS+0.5 mg/L 6-BA+0.1~0.2 mg/L NAA为适宜的愈伤组织诱导培养基;MS+2.0 mg/L 6-BA+0.2 mg/L NAA能使愈伤组织分化出状态良好的丛生芽并继续增殖;在生根培养基1/2MS+0.2 mg/L NAA+10%香蕉上生根率100%,试管苗生长健壮,根系粗壮发达。试验为彩色马蹄莲的快繁体系及规模化生产提供参考依据。     

沙棘组培快繁技术研究

研究了不同取材时间、不同基本培养基和不同浓度的 6 -BA和NAA组合对沙棘组培快繁的影响。结果表明 :以春秋季节休眠芽为外植体获得的沙棘组培苗效果最好 ;B5+ 6 -BA 0 .5mg/L +NAA 0 .5～ 1.0mg/L为适宜的启动培养基 ,对休眠芽的诱导率为 10 0 % ;1/2B5+ 6- BA 0 .5mg/L +NAA 0 .5mg/L为最佳继代增殖培养基 ;1/2B5+ 6 -BA 0 .1mg/L +NAA 1.0mg/L为最佳生根培养基 ,生根率达到 85 % ;试管苗经过驯化移栽成活率达 5 0 %以上。     

多肉植物姬秋丽组培快繁技术研究

以姬秋丽的叶片和茎尖为外植体材料,进行多肉植物组培快繁技术研究。研究结果表明:以茎尖为外植体培养效果最佳,先用75%乙醇处理30s,再用0.1%升汞浸泡12～15min为最佳消毒处理方法;以MS为基本培养基,添加不同浓度6-BA、NAA、KT等植物生长调节剂,适宜诱导姬秋丽愈伤组织及丛生芽的培养基为MS+6-BA 2.0mg/L+NAA 1.0mg/L,效果明显;丛生芽增殖培养基MS+6-BA 2mg/L+KT 1.0mg/L+NAA 0.2mg/L最为适宜;生根培养基以1/2MS+IBA 2.0mg/L为最佳,试验证明最终成苗率可达90%以上,根部粗壮生长状态良好,研究表明姬秋丽组织培养快繁技术体系增殖数高,易成活,质量高。     

生姜芽的组培快繁

[目的]寻找生姜芽组培快繁的最佳方案。[方法]以MS为基础培养基,设计生姜芽组培快繁的两条途径,选择生姜芽组培快繁的最佳培养基配方。[结果]结果表明,茎尖→芽最适培养基为:改良MS+6-BA 3.0 mg/L+NAA 0.1 mg/L;茎尖→愈伤组织→芽,茎尖诱导愈伤组织的最适培养基为:改良MS+2,4-D 2.0 mg/L+KT 1.0 mg/L,愈伤组织诱导芽分化的最适培养基为:改良MS+6-BA 2.0 mg/L+NAA 0.5 mg/L。采用超净工作台上用75.0%酒精30 s+10.0%NaClO 15 min+0.1%HgCl210 min+50 ug/L青霉素与台外消毒相结合对外植体进行表面消毒,去污效果最佳。[结论]对愈伤组织进行切割并继代培养后再诱导芽分化,可获得较大的增殖倍数。     

生姜茎尖脱毒培养研究

以生姜茎尖为外植体进行培养,筛选诱导愈伤组织和芽分化的最佳培养基。结果表明,消毒时间对茎尖成活率影响很大,以0.1%HgCl2消毒10 min最为有效。不同的激素配比对生姜试管苗再生诱导有明显影响,诱导茎尖愈伤组织生长及分化的最适培养基为1/2MS+6-BA2.0 mg/L+NAA0.1 mg/L,丛生芽继代培养增殖效果较好的培养基为1/2MS+BA2.5mg/L+NAA0.1 mg/L+KT1.0 mg/L。     

贺州大肉姜的组培快繁技术研究

[目的]研究大肉姜组培快繁技术,为贺州大肉姜规模化生产提供技术支持。[方法]以贺州大肉姜的芽作为外植体,研究不同消毒液和激素组合对外植体污染率、芽分化和生根的影响。[结果]外植体用0.1%HgCl2消毒12min效果最好,诱导芽分化的最佳培养基为MS＋2.0mg/L6-BA＋0.1mg/LNAA,最佳生根培养基为1/2MS＋1.0mg/LNAA,生根率可达100%。[结论]该组培快繁技术可用于贺州大肉姜的规模化生产。     

吴茱萸组织培养和快速繁育技术研究

[目的]对吴茱萸的组织培养和快速繁育技术进行研究.[方法]以吴茱萸的雌株嫩叶为外植体,研究不同的植物生长调节剂和浓度配比对其诱导、增殖和生根培养的影响.[结果]最佳诱导培养基为MS+ 1.0 mg/L BA +0.3 mg/L NAA,诱导率可达74.4％,且幼苗正常,无玻璃化现象；最佳增殖培养基为MS+2.0 mg/L BA +0.1 mg/L KT +0.3 mg/L NAA,增殖系数可达4.61;以1/2MS+ 2.0 mg/LNAA为生根培养基,生根率可达86％,平均生根数为5.4.[结论]该研究建立了吴茱萸的快速繁殖体系,为其优良雌性系的工厂化苗木生产提供了技术支撑.     

郁金香组培快繁技术研究

以郁金香的鳞片、茎段和茎尖为外植体进行了组培快繁技术研究,筛选出最佳培养基。诱导鳞片产生丛芽:MS+0.4～1.0 mg/LBA+0.4 mg/LNAA;诱导茎尖产生丛芽:MS+2 mg/LBA+0.1 mg/LNAA;诱导茎段产生丛芽:MS+1.0 mg/LBA+0.2 mg/LNAA;丛芽增殖培养:MS+0.4 mg/LBA+0.2 mg/LNAA和MS+0.4 mg/LBA+0.2 mg/LIAA;茎类丛芽生根诱导培养:1/2 MS+0.4 mg/LKT和0.1～1.0 mg/LNAA。     

铁炮百合快速繁殖技术研究

以铁炮百合(Lilium longiflorum)的鳞片尧含苞待放时花蕾下的花梗为外植体,进行诱导生芽、生根的组织培养快速繁殖技术的研究。结果表明：鳞片诱导生芽最适合的初代培养基为MS+6-BA2.0 mg/L+NAA0.1 mg/L+2,4-D0.1mg/L;花梗的诱导生芽最适合的初代培养基为MS+6-BA1.0 mg/L+NAA0.5 mg/L;最佳继代培养基为MS+6-BA3.0mg/L +NAA 0.02 mg/L;最佳生根培养基培养基为1/2MS+6-BA 0.1 mg/L+NAA 1.0 mg/L+活性炭0.1%;生芽率和生根率均可达100%。     

东方百合花器离体培养和快速繁殖研究

以东方百合(Lilium tenuifolium oriental hybrid)索邦品种的花瓣、花丝、花托为外植体,就不同激素组合对诱导愈伤组织和不定芽的影响进行了研究.结果表明,索邦百合花瓣、花丝、花托形成愈伤组织的能力有差异,其能力大小依次为花托＞花丝＞花瓣;愈伤组织诱导的最佳培养基为MS 2,4-D 1.0 mg/L BA 0.5 mg/L,芽最佳分化培养基为MS BA 1.0 mg/L NAA 0.1 mg/L,芽最佳增殖培养基为MS KT 0.5 mg/L NAA 0.1 mg/L,生根最佳培养基为1/2 MS NAA 0.2mg/L.     

百合组培快繁技术研究

以食用百合鳞片作外植体 ,以MS为基本培养基 ,对其组培快繁技术进行了研究。结果表明 ,适宜的芽诱导培养基为MS + 1 .0mg/L 6-BA + 0 .1mg/LNAA + 1 .0mg/LKT ;适宜的快繁培养基为MS + 1 .0mg/L 6-BA + 0 .0 1mg/LNAA + 0 .5mg/LKT ;适宜的生根培养基为MS + 0 .1mg/LIBA ;芽诱导和快繁较适宜的条件为光照 1 6h/d、温度 ( 2 5± 1 )℃ ;在光照 1 2h/d、温度 ( 2 5± 1 )℃条件下较易生根     

广西优良珍贵树种灰木莲的组织培养

【目的】探索灰木莲组培快繁体系,为灰木莲的进一步开发和利用提供参考依据。【方法】以灰木莲盆栽苗的带芽茎段为外植体,以MS为基本培养基,通过添加不同种类、不同浓度植物生长调节剂,研究不同培养基对腋芽萌发、芽增殖及生根的影响。【结果】1~5号培养基均可以诱导灰木莲腋芽萌发,其中3号培养基MS+6-BA 0.5 mg/L+NAA 0.1 mg/L腋芽萌发速度最快,芽的诱导率89.3%;添加KT（Kinetin,激动素）的10~13号培养基增殖系数为2.2~2.7,没有添加KT的6~9号培养基增殖系数为1.8~2.2,11号培养基 MS+6-BA 0.3 mg/L +NAA 0.05 mg/L+KT 1.0 mg/L芽的增殖系数可达2.7,为最适宜的增殖培养基;添加生长调节剂浓度在0.5 mg/L以上的17~21号培养基能诱导灰木莲组培苗生根,其中NAA浓度为0.5、1.5 、2.0 mg/L生根率分别为33.3%、45.4%、58.3%,21号培养基 1/2MS+NAA 2.0 mg/L上生根率最高。【结论】初步建立灰木莲组织培养体系,组培苗的芽诱导率和增殖率较高,苗木长势良好。     

常绿萱草组培快繁技术研究

以常绿萱草茎尖为外植体,研究了不同消毒方式、培养基配方对于外植体生长的影响,并探索了最适于愈伤组织形成、不定芽增殖和生根的培养基配方。结果表明:在无菌条件下,用75%酒精消毒30S,再转入0.1%升汞溶液浸泡8分钟消毒效果最好;有利于外植体产生愈伤组织的培养基配方是MS+2.0mg/LBA+0.2mg/LNAA;适合愈伤组织诱导生芽培养基配方是MS+1.0mg/L2.4-D+1.0mg/LKT;适合幼苗生根的培养基配方是MS+NAA0.5mg/L+活性炭0.2mg/L。