奈的离体繁殖

以奈的带腋芽茎段为外植体进行离体繁殖技术研究,结果表明,外植体从快停止生长的嫩梢切取为佳,并以在１．０ｍｇ．Ｌ＾－１升汞中消毒５ｍｉｎ为宜;在附加０．２ｍｇ．Ｌ＾－１ＩＡＡ〈１．０ｍｇ．Ｌ＾－１ＢＡ的ＭＳ培养基上进行初代２,启动腋芽萌发,在含ＮＡＡ０．１ｍｇ．ｌ＾－１、ＢＡ０．５－１．０ｍｇ．Ｌ＾－１的１／２ＭＳ培养基上进行难代增殖,可形成丛生芽,并且增殖倍数达４．０以上,增殖后的芽苗在含ＮＡＡ０     

丰花月季组培快繁技术研究初报

组织快繁技术研究结果表明：适宜丰花月季离体芽诱导分化的培养基为ＭＳ＋６－ＭＡ０．５０ｍｇ／Ｌ＋ＮＡＡ０．１０～０．２０ｍｇ／Ｌ;适宜丛生芽继代增殖的培养基为ＭＳ＋６－ＢＡ１．００ｍｇ／Ｌ＋ＮＡＡ０．１０～０．２０ｍｇ／Ｌ;适宜丰花月季试管苗生根的培养基为１／２ＭＳ＋ＮＡＡ０．１０ｍｇ／Ｌ,其生根率达９０％。     

影响草莓花药培养效率的若干因素

本试验结果表明，基本培养基的愈伤组织诱导率，Ｂ５明显地高于ＭＳ、Ｎ６、Ｅ１。〔ＮＯ３＾－〕／〔ＮＨ４＾＋〕值大，有利于愈伤组织的诱导。乳糖作为碳源，其诱导愈伤组织的效果明显优于蔗糖。花药愈伤组织诱导率的高低与基因型和培养基有关。ＭＳ＋ＢＡ２．０ｍｇ·Ｌ＾－１＋ＩＡＡ４．０ｍｇ·Ｌ＾－１＋ＺＴ２．０ｍｇ·Ｌ＾－１适于作不定芽的分化培养基，其分化率达４０．００％。     

荔浦芋的离2体培养和快繁技术

选用优良荔浦芋的母芽和子芽的顶芽为外植体。在ＭＳ＋６－ＢＡ１．０ｍｇ／Ｌ的培养基上可诱导出再生植株,瑞生植株在ＭＳ＋６－ＢＡ２．０～４．０ｍｇ／Ｌ＋ＩＢＡ０．１ｍｇ／Ｌ或ＮＡＡ０．１ｍｇ／Ｌ的培养基上继代培养３０－４０天可获得２－３倍丛生芽,以６－ＢＡ３．０ｍｇ／Ｌ＋ＩＢＡ０．１ｍｇ／Ｌ的培养基对丛生芽的诱导效果较好,把丛生芽切割在ＭＳ＋ＮＡＡ１．０ｍｇ／Ｌ或ＭＳ＋ＩＢＡ１．０ｍｇ／Ｌ的培养基上培     

奈的离体繁殖

以木柰的带腋芽茎段为外植体进行离体繁殖技术研究．结果表明,外植体材料从快停止生长的嫩梢切取为佳,并以在１．０ｍｇ·Ｌ－１升汞中消毒１５ｍｉｎ为宜;在附加０．２ｍｇ·Ｌ－１ＩＡＡ、１．０ｍｇ·Ｌ－１ＢＡ的ＭＳ培养基上进行初代培养,启动腋芽萌发;在含ＮＡＡ０．１ｍｇ·Ｌ－１、ＢＡ０．５１．０ｍｇ·Ｌ－１的１／２ＭＳ培养基上进行继代增殖,可形成丛生芽,并且增殖倍数达４．０以上;增殖后的芽苗在含ＮＡＡ０．１ｍｇ·Ｌ－１、ＩＢＡ１．０ｍｇ·Ｌ－１的１／２ＭＳ培养基上长根成苗．以泥炭土和石至石（１∶１）为介质,试管苗移苗成活率为９０．１％．试管苗种植田间５ａ后,已正常开花结果．     

金心巴西铁的茎尖培养及植株再生

以金心巴西铁带腋芽的茎尖为外植体，成功地培育出试管苗。外植体接种到成分为ＭＳ＋ＢＡ３．０ｍｇ／Ｌ的培养基上，可诱导腋芽萌动并直接分化形成丛生芽。继代培养以ＭＳ＋ＢＡ２．０ｍｇ／Ｌ＋ＮＡＡ０．０１ｍｇ／Ｌ为宜。生根培养则以ＭＳ＋ＩＢＡ３．０－４．０ｍｇ／Ｌ＋ＧＡ３ ２．０ｍｇ／Ｌ＋活性碳０．５％效果最佳。     

番茄下胚轴离体诱导成株的激素调控

以番茄“矮黄”、“鲜丰”品种的下胚轴的为外植体进行离体培养,发现ＭＳ培养基上附加不同浓度的生长素和细胞分裂素,对愈伤组织的形成影响不大,但对不定芽的分比有较大影响,且品种间存在明显差异;品种“矮黄”,在ＭＳ＋ＢＡ１．０－２．５ｍｇ．Ｌ＾－１＋ＩＡＡ０．２－０．５ｍｇ．Ｌ＾－１培养基上,诱导率都达５０％以上,其中以ＭＳ＋ＢＡ２．５ｍｇ．Ｌ＾－１＋ＩＡＡ０．２ｍｇ．Ｌ＾－１效果最佳,诱导率高达８１．３     

切花菊组织培养快速繁殖技术

在ＭＳ培养基基础上，添加不同种类和浓度的激素，对切花菊进行组织培养快速繁殖技术的研究，外植体分别为腋芽，茎段，花蕾，叶片，叶炳。其中以带芽茎段，叶柄和腋芽的增殖效果较好，诱导不定芽的培养基以ＭＳ＋６－ＢＡ１．０ｍｇ／Ｌ＋ＮＡＡ０．１ｍｇ／Ｌ不定芽的发生率最高。不定根的诱导以１／２ＭＳ＋ＩＢＡ１．０ｍｇ／Ｌ生根率达１００％，根系发达，适宜的温度、较高的湿度和控制杂菌是提高组培苗移栽成活率的重要因素。     

丰花月季的组培快繁技术

试验结果表明,适宜丰花月季离体侧芽分花的培养基为ＭＳ＋６－ＢＡ２．００ｍｇ／Ｌ＋ＮＡＡ０．１０￣０．５０ｍｇ／Ｌ,生根培养基为１／２ＭＳ＋ＮＡＡ０．３０￣０．５０ｍｇ／Ｌ,其生根率在９５％以上,在蛭石与营养土的双层基质中,生根试管 移栽成活率达９０％。     

曼海母宫殿组织培养

曼海母宫殿以当年生枝条上饱满未萌发的侧芽为外植体．进行组织培养、在附加６－ＢＡ１．０ｍｇ／Ｌ的ＭＳ培养基上．芽诱导效果最好，在附加６－ＢＡ１．５＋ＮＡＡ０．０５＋ＺＴ０．１ｍｇ／Ｌ或ＫＴ１．０＋ＮＡＡ０．０５＋ＺＴ０．１ｍｇ／Ｌ的ＭＳ培养基上．芽的分化效果最好。在附加ＫＴ０．３＋ＮＡＡ０．０５＋ＺＴ０．１ｍｇ／Ｌ或６－ＢＡ０．３＋ＮＡＡ０．０５＋ＺＴ０．１ｍｇ／Ｌ的ＭＳ培养基上，壮苗效果最好。在附加ＩＢＡ０．１ｍｇ／Ｌ或ＩＢＡ０．１＋ＮＡＡ０．０２ｍｇ／Ｌ的１／２ＭＳ培养基上生根效果最好。试管苗高２．５～４．０ｃｍ，且具有３～５条短根时，开瓶锻炼３～５ｄ。移栽入土效果好、种植在保温保湿环境中．试管苗成活率高。     

满天星微繁技术研究

用无病毒满天星的带芽茎段作为外植体,研究其组培试管苗生长协调性。结果表明：在起始培养中,以ＭＳ＋ＢＡ２．５ｍｇ／Ｌ＋ＮＡＡ０．０１ｍｇ／Ｌ培养基为最好,侧芽诱导率最高,平均为１８个;在增殖培养中,低世代使用ＭＳ＋ＢＡ２．０ｍｇ／Ｌ＋ＮＡＡ０．２ｍｇ／Ｌ培养基为最佳,增殖倍数为１８～２５倍,在高世代使用ＭＳ＋ＢＡ１．５ｍｇ／Ｌ＋ＮＡＡ０．０５ｍｇ／Ｌ培养基为最佳,增殖倍数在４０倍左右且兼顾了试管苗的粗细、节间长度和愈伤组织块的大小,使之生长协调性良好;在根的诱导中,使用１／２ＭＳ＋ＮＡＡ０．３ｍｇ／Ｌ培养基最易诱导生根且根系发达。     

接骨木的快速繁殖研究

在ＭＳ培养基中进行基尖培养,研究植物激素对器官形成的影响．试验结果表明：ＢＡＰ可明显促进芽的形成和增殖,ＢＡＰ和ＮＡＡ结合使用有助于苗的形成和生长．合适的培养基为ＭＳ＋ＮＡＡ（０．２ｍｇ／Ｌ）＋ＢＡＰ（１．０ｍｇ／Ｌ）或者ＭＳ＋ＮＡＡ（０．２ｍｇ／Ｌ）＋ＢＡＰ（３．０ｍｇ／Ｌ）．ＮＡＡ对根的诱导有促进作用,诱导生根用１／２ＭＳ附加ＮＡＡ（０．２ｍｇ／Ｌ）,当无根苗转入生根培养基,诱导生根获得完整植株,试管苗移栽成功     

莲藕组织培养及快速繁殖试验研究

莲藕顶芽或叶芽在１／２ＭＳ＋６－ＢＡ２．５ｍｇ／Ｌ＋ＩＢＡ０．１ｍｇ／Ｌ＋活性炭０．２％培养基上培养３５ｄ,诱导产生丛生芽３—６个,芽长２—４ｃｍ。此时,将它们分切成单芽转到同一培养基,继代培养２５ｄ,繁殖系数４—６。芽长２—３ｃｍ时再分切成单芽于１／２ＭＳ＋ＩＢＡ１．０ｍｇ／Ｌ＋６－ＢＡ０．０５ｍｇ／Ｌ＋活性炭０．３％培养基上进行生根培养,培养２５ｄ,生根率８２．５％,移载成活率８６％。     

非洲菊组培快繁技术研究

以非洲菊花蕾为外植体,接种在ＭＳ＋６－ＢＡ１０ｍｇ／Ｌ＋ＮＡＡ０．０５ｍｇ／Ｌ培养基中,４５ｄ左右诱导成芽,再将芽接种于ＭＳ＋６－ＢＡ２ｍｇ／Ｌ＋ＩＡＡ１ｍｇ／Ｌ培养基中进行继代培养出苗,最后将苗接种于１／３ＭＳ＋ＩＢＡ ０．１ｍｇ／Ｌ的培养基中,１５ｄ即可生根,３０￣３５ｄ平均生根率达９８．８％。     

黄花白芨组培快繁技术

用不同的基本培养基,不同的植物生长调节剂及其配比,不同的原球茎切割方式系统地研究了黄花白芨组织培养技术,试验结果表明：１／２ＭＳ＋１．０ｍｇ．Ｌ＾－１ＢＡ＋０．１ｍｇ．Ｌ＾－１ＮＡＡ培养基有利于原球茎增殖,培养６０ｄ增殖到４．２１倍;     

TDZ对枣子离体培养繁殖的影响

厍有ＴＤＺ０．０１ｍｇ／Ｌ的ＭＳ＋６ＢＡ１ｍｇ／Ｌ＋ＩＢＡ０．２ｍｇ／Ｌ的培养基中，对离体芽的繁殖系数、高于对照高于ＭＳ＋６ＢＡ２ｍｇ／Ｌ＋ＩＢＡ）．２ｍｇ／Ｌ的培养基２倍和３倍，枯梢率下降至零，在生根培养基１／２ＭＳ＋ＩＢＡ０．５ｍｇ／Ｌ＋ＮＡＡ０．５ｍｇ／Ｌ上，生根可达８０％以上。     

刺树愈伤组织培养时不定芽的分化

以枣树色白,结构紧密的愈伤组织为材料,对其不定芽的分化情况进行了研究。结果表明,用ＭＳ（ＮＯ＾－３／２）作基本培养基,并附加ＫＴ４．０００ｍｇ／Ｌ．ＺＴ１．７５０ｍｇ／Ｌ和ＮＡＡ０．０１５ｍｇ／Ｌ可以获得比较好的不定芽分化效果,鸡收枣和无核小枣不定芽再生频率分别达到３０％,２２％,其它品种再生频率低于１５％,不定芽在ＭＳ（ＮＯ＾－３／２）＋ＮＡＡ０．０１５ｍｇ／Ｌ＋ＺＴＴ１．７５０ｍｇ／Ｌ＋ＫＴ４     

欧李茎、叶愈伤组织的诱导及茎苗的再生

以欧李萌发的嫩茎和叶为外植体，诱导愈伤组织，结果表明：叶愈伤组织培养，以ＭＳ为基本培养基，附加ＮＡＡ１．２０＋ＢＡ０．１６ｍｇ／Ｌ；Ｌ为基本培养基附加ＮＡＡ１．６＋ＢＡ０．２０ｍｇ／Ｌ愈伤效果最好。茎段愈伤组织培养以ＭＳ培养基附加２．４—Ｄ０．４０＋ＺＴ０．０８ｍｇ／Ｌ愈伤效果最好。愈伤组织再分化诱导不定芽的培养基为１／４Ｌ＋ＺＴ３ｍｇ／Ｌ和１／４ＭＳ＋ＺＴ２ｍｇ／Ｌ。     

芦荟茎段的组织培养

采用芦荟茎段培养,经实验得出最佳培养基配方。诱导分化培养基：Ｍｓ＋６－ＢＡ１ｍｇ／Ｌ＋ＮＡＡ０．２ｍｇ／Ｌ;增殖培养基：Ｍｓ＋６－ＢＡ２．０ｍｇ／Ｌ＋ＮＡＡ０．１ｍｇ／Ｌ;生根培养基：Ｍｓ＋ＮＡＡ１．０ｍｇ／Ｌ。     

芦荟的组织培养

以美国‘翠叶’芦荟为试材,研究芦荟的组培快繁,结果表明,无菌材料的获得以ＭＳ＋ＢＡ３＋ＮＡＡ０．２为最佳。快速繁殖阶段以ＭＳ＋ＢＡ１＋Ａｄ５＋ＮＡＡ０．２＋５０ｇ／Ｌ蔗糖为最佳,既有利于芽苗增殖,又有利于芽苗长高。生根培养用１／２ＭＳ＋ＢＡ０．１＋ＩＢＡ２－３,１０￣１５天内可长出３￣４条根。