丰花月季组培快繁技术研究初报

组织快繁技术研究结果表明：适宜丰花月季离体芽诱导分化的培养基为ＭＳ＋６－ＭＡ０．５０ｍｇ／Ｌ＋ＮＡＡ０．１０～０．２０ｍｇ／Ｌ;适宜丛生芽继代增殖的培养基为ＭＳ＋６－ＢＡ１．００ｍｇ／Ｌ＋ＮＡＡ０．１０～０．２０ｍｇ／Ｌ;适宜丰花月季试管苗生根的培养基为１／２ＭＳ＋ＮＡＡ０．１０ｍｇ／Ｌ,其生根率达９０％。     

非洲菊组培快繁技术研究

以非洲菊花蕾为外植体,接种在ＭＳ＋６－ＢＡ１０ｍｇ／Ｌ＋ＮＡＡ０．０５ｍｇ／Ｌ培养基中,４５ｄ左右诱导成芽,再将芽接种于ＭＳ＋６－ＢＡ２ｍｇ／Ｌ＋ＩＡＡ１ｍｇ／Ｌ培养基中进行继代培养出苗,最后将苗接种于１／３ＭＳ＋ＩＢＡ ０．１ｍｇ／Ｌ的培养基中,１５ｄ即可生根,３０￣３５ｄ平均生根率达９８．８％。     

TDZ对枣子离体培养繁殖的影响

厍有ＴＤＺ０．０１ｍｇ／Ｌ的ＭＳ＋６ＢＡ１ｍｇ／Ｌ＋ＩＢＡ０．２ｍｇ／Ｌ的培养基中，对离体芽的繁殖系数、高于对照高于ＭＳ＋６ＢＡ２ｍｇ／Ｌ＋ＩＢＡ）．２ｍｇ／Ｌ的培养基２倍和３倍，枯梢率下降至零，在生根培养基１／２ＭＳ＋ＩＢＡ０．５ｍｇ／Ｌ＋ＮＡＡ０．５ｍｇ／Ｌ上，生根可达８０％以上。     

白网纹草的茎段培养和快速繁殖

以白网纹草茎段为外植体，在ＭＳ＋ＢＡ０．５ｍｇ／Ｌ＋ＮＡＡ０．１ｍｇ／Ｌ培养基上可产生大量丛生芽，丛生芽切割后接种到ＭＳ＋ＢＡ１．０ｍｇ／Ｌ＋ＮＡＡ０．１ｍｇ／Ｌ培养基上，３０ｄ后增殖系数可达５．６，在１／４ＭＳ＋ＮＡＡ０．１ｍｇ／Ｌ培养基上生根效果最好，白网纹草试管苗移栽成活率可达８５％￣９０％。     

接骨木的快速繁殖研究

在ＭＳ培养基中进行基尖培养,研究植物激素对器官形成的影响．试验结果表明：ＢＡＰ可明显促进芽的形成和增殖,ＢＡＰ和ＮＡＡ结合使用有助于苗的形成和生长．合适的培养基为ＭＳ＋ＮＡＡ（０．２ｍｇ／Ｌ）＋ＢＡＰ（１．０ｍｇ／Ｌ）或者ＭＳ＋ＮＡＡ（０．２ｍｇ／Ｌ）＋ＢＡＰ（３．０ｍｇ／Ｌ）．ＮＡＡ对根的诱导有促进作用,诱导生根用１／２ＭＳ附加ＮＡＡ（０．２ｍｇ／Ｌ）,当无根苗转入生根培养基,诱导生根获得完整植株,试管苗移栽成功     

马铃薯试管芽保存研究

“万农４号”马铃薯茎尖在２５°±１℃、光强２０００ｌｘ，连续光照下培养，适宜的芽分化培养基为ＭＳ＋ＮＡＡ０．２ｍｇ／Ｌ＋ＢＡ４ｍｇ／Ｌ，生根培养基为ＭＳ＋ＮＡＡ０．４ｍｇ／Ｌ，试管芽在ＭＳ＋ＮＡＡ０．２ｍｇ／Ｌ＋ＢＡ４ｍｇ／Ｌ＋ＡＢＡ４ｍｇ／Ｌ培养基上和５℃黑暗条件下保存３００天，存活率仍高达９３％，而且芽呈绿色，生长健壮。     

甜叶菊“中山一号”快速繁殖的研究

用甜叶菊“中山一号”嫩茎叶叶柄为外植体,ＭＳ为基本培养基,在附加ＢＡ（０．５ｍｇ／Ｌ）＋ＮＡＡ（０．２ｍｇ／Ｌ）的分化培养基上,分化率为８５％;继代增殖在附加ＺＴ（１．５ｍｇ／Ｌ）＋ＮＡＡ（０．１ｍｇ／Ｌ）的培养基上,每３～４周可增殖５～６倍;在附加ＢＡ（０．１ｍｇ／Ｌ）＋ＮＡＡ（０．５ｍｇ／Ｌ）＋ＩＢＡ（０．５ｍｇ／Ｌ）的生根培养基上,生根效果最好,出瓶前须炼苗２～３ｄ,生根苗移栽成活率在９０％     

蓝玉簪龙胆茎段的组织培养技术

采用西藏著名野生花卉蓝玉簪龙胆茎段为组织培养材料。通过多次试验后确定,蓝玉簪龙胆的启动培养中适宜的培养基为ＭＳ＋ＮＡＡ１．０ｍｇ／Ｌ．＋ＢＡ０．４～０．５ｍｇ／Ｌ,或者为ＭＳ＋ＢＡ０．５ｍｇ／Ｌ＋ＮＡＡ０．５ｍｇ／Ｌ;继代培养阶段的适宜培养基为ＭＳ＋ＢＡ０．５ｍｇ／Ｌ＋ＮＡＡ０．５ｍｇ／Ｌ;生根阶段的适宜培养基为１／２ＭＳ＋ＢＡ０．１ｍｇ／Ｌ＋ＩＢＡ０．５ｍｇ／Ｌ。为蓝玉簪龙胆在组培条件下大量繁殖     

菊花幼嫩花瓣愈伤组织的诱导和植株再生

以菊花幼嫩花瓣作为供体材料,ＭＳ作为基本培养基,在激素组合为６ＢＡ１～３ｍｇ／Ｌ＋ＮＡＡ１ｍｇ／Ｌ或２,４ Ｄ１～３ｍｇ／Ｌ＋ＫＴ１ｍｇ／Ｌ的范围内均能诱导出愈伤组织,但以ＭＳ附加６ＢＡ２ｍｇ／Ｌ和ＮＡＡ１ｍｇ／Ｌ的诱导率最高,可达１００％。将愈伤组织转移到ＭＳ＋６ＢＡ２ｍｇ／Ｌ＋ＮＡＡ０２ｍｇ／Ｌ的培养基上,分化芽的频率为７７８％。将３ｃｍ左右的茎段转移到不含激素的ＭＳ培养基或ＭＳ＋ＮＡＡ０１ｍｇ／Ｌ的培养基上,生根率可达９５％以上。     

满天星微繁技术研究

用无病毒满天星的带芽茎段作为外植体,研究其组培试管苗生长协调性。结果表明：在起始培养中,以ＭＳ＋ＢＡ２．５ｍｇ／Ｌ＋ＮＡＡ０．０１ｍｇ／Ｌ培养基为最好,侧芽诱导率最高,平均为１８个;在增殖培养中,低世代使用ＭＳ＋ＢＡ２．０ｍｇ／Ｌ＋ＮＡＡ０．２ｍｇ／Ｌ培养基为最佳,增殖倍数为１８～２５倍,在高世代使用ＭＳ＋ＢＡ１．５ｍｇ／Ｌ＋ＮＡＡ０．０５ｍｇ／Ｌ培养基为最佳,增殖倍数在４０倍左右且兼顾了试管苗的粗细、节间长度和愈伤组织块的大小,使之生长协调性良好;在根的诱导中,使用１／２ＭＳ＋ＮＡＡ０．３ｍｇ／Ｌ培养基最易诱导生根且根系发达。     

大白菜外植体分化诱导及村植株再生的研究

利用大白菜的下胚轴、子叶切块和带柄子叶等外植体诱导分化和植株再生。结果表明：在ＭＳ＋１￣２ｍｇ／Ｌ６－ＢＡ＋０．５ｍｇ／Ｌ ＮＡＡ培养基上获得的无菌苗质量最好，分化能力最强；在ＭＳ＋５．０／ｍｇ／Ｌ６－ＢＡ＋１．０ｍｇ／Ｌ ＮＡＡ分化培养基上，直插的带柄子叶分化频率最高，接种后４０天达４１．２％，并能形成大量不定芽（多者一个外植体可达２０多外不定芽）；幼苗在ＭＳ＋０．２ｍｇ／Ｌ ＮＡＡ培养基上能正     

佛手瓜下胚轴离体培养及再生植株

对佛手瓜下胚轴再生植株、试管苗移栽及大田定植进行了试验，结果表明：在ＭＳ＋ＩＡＡ０．１ｍｇ／Ｌ＋ＢＡ１．０ｍｇ／Ｌ＋ＬＨ２００ｍｇ／Ｌ培养基上容易形成下胚轴愈伤组织；愈伤组织分化芽的培养基为ＭＳ＋ＩＡＡ０．５ｍｇ／Ｌ＋ＢＡ０．５ｍｇ／Ｌ，诱导分化率可达５７５％；顶芽和带腋芽茎段生根的培养基分别为ＭＳ＋ＩＡＡ１．０ｍｇ／Ｌ和１／２ＭＳ＋ＩＡＡ０．３ｍｇ／Ｌ，生根率分别为８１．８％和８３．３％；移栽培     

杂种大花万寿菊试管苗繁殖

利用组织培养技术繁殖引进的杂种大花万寿菊获得成功,在诱导侧芽时,利用６－卞基腺嘌呤（６－ＢＡ２．５ｍｇ／Ｌ）和玉米素（ＺＴ２．５ｍｇ／Ｌ）ＺＴ对侧芽的诱导效果好于６－ＢＡ,诱导生根的培养基分别为（１）１／２ＭＳ;（２）１／２ＭＳ＋ＮＡＡ０．５ｍｇ／Ｌ;（３）１／２ＭＳ＋ＮＡＡ１ｍｇ／Ｌ;（４）１／２ＭＳ＋ＩＢＡ０．５ｍｇ／Ｌ;（５）１／２ＭＳ＋ＩＢＡ１ｍｇ／Ｌ．ＩＢＡ可以促进万行区形成不定根,质量     

金心巴西铁的茎尖培养及植株再生

以金心巴西铁带腋芽的茎尖为外植体，成功地培育出试管苗。外植体接种到成分为ＭＳ＋ＢＡ３．０ｍｇ／Ｌ的培养基上，可诱导腋芽萌动并直接分化形成丛生芽。继代培养以ＭＳ＋ＢＡ２．０ｍｇ／Ｌ＋ＮＡＡ０．０１ｍｇ／Ｌ为宜。生根培养则以ＭＳ＋ＩＢＡ３．０－４．０ｍｇ／Ｌ＋ＧＡ３ ２．０ｍｇ／Ｌ＋活性碳０．５％效果最佳。     

芦荟茎段的组织培养

采用芦荟茎段培养,经实验得出最佳培养基配方。诱导分化培养基：Ｍｓ＋６－ＢＡ１ｍｇ／Ｌ＋ＮＡＡ０．２ｍｇ／Ｌ;增殖培养基：Ｍｓ＋６－ＢＡ２．０ｍｇ／Ｌ＋ＮＡＡ０．１ｍｇ／Ｌ;生根培养基：Ｍｓ＋ＮＡＡ１．０ｍｇ／Ｌ。     

红球甘蓝花茎离体培养繁殖研究

以红甘蓝花茎为外植体，在２５±１℃，１５００ｌｘ连续光照和ＭＳ＋ＮＡＡ０．２ｍｇ／Ｌ培养基上培养４０天，愈伤组织分化率为１００％，将愈伤组织接种到ＭＳ＋ＮＡＡ０．２ｍ８／Ｌ＋ＢＡ２ｍｇ／Ｌ培养基上培养３０天，诱芽率达９６％，平均每管芽数为５．５。将产生的幼芽转接到ＭＳ＋ＮＡＡ０．４ｍｇ／Ｌ上，经２５天培养即可生根而形成完整小植株。幼苗移出试管保湿培养１２天，移栽到土壤中的成活率达９２％。     

满天星的组织培养技术研究

在满天星的组织培养中,适宜的芽增殖培养基为ＭＳ＋６ＢＡ０．５ｍｇ／Ｌ＋ＮＡＡ０．３ｍｇ／Ｌ,增殖率可达到６ｎ（ｎ为扩繁次数）;适宜的生根培养基为１／２ＭＳ＋６ＢＡ１ｍｇ／Ｌ,生根率可达９０％～９５％。研究结果表明：在芽的诱导及生根过程中激素浓度配比起关键作用。用白糖代替蔗糖对满足组培苗碳源要求影响不大。     

合欢组织培养和快速繁殖研究

将合欢成熟胚的胚芽接种于含２，４—Ｄ２ｍｇ／Ｌ＋ＫＴ０．１ｍｇ／Ｌ的ＭＳ培养基上诱导愈伤组织，再转入合ＢＡ３ｍｇ／Ｌ＋ＮＡＡ０．５ｍｇ／Ｌ的ＭＳ分化培养基上，２周后分化出芽，利用这些芽进行切段扩繁。将苗转入含ＮＡＡ０．５ｍｇ／Ｌ的ＭＳ生根培养基上生根，移栽成活率达９０％以上。所诱导的愈伤组织经过一年的继代培养，其分化能力仍很强。培养中发现高温能增加玻璃苗的发生频率。     

曼海母宫殿组织培养

曼海母宫殿以当年生枝条上饱满未萌发的侧芽为外植体．进行组织培养、在附加６－ＢＡ１．０ｍｇ／Ｌ的ＭＳ培养基上．芽诱导效果最好，在附加６－ＢＡ１．５＋ＮＡＡ０．０５＋ＺＴ０．１ｍｇ／Ｌ或ＫＴ１．０＋ＮＡＡ０．０５＋ＺＴ０．１ｍｇ／Ｌ的ＭＳ培养基上．芽的分化效果最好。在附加ＫＴ０．３＋ＮＡＡ０．０５＋ＺＴ０．１ｍｇ／Ｌ或６－ＢＡ０．３＋ＮＡＡ０．０５＋ＺＴ０．１ｍｇ／Ｌ的ＭＳ培养基上，壮苗效果最好。在附加ＩＢＡ０．１ｍｇ／Ｌ或ＩＢＡ０．１＋ＮＡＡ０．０２ｍｇ／Ｌ的１／２ＭＳ培养基上生根效果最好。试管苗高２．５～４．０ｃｍ，且具有３～５条短根时，开瓶锻炼３～５ｄ。移栽入土效果好、种植在保温保湿环境中．试管苗成活率高。     

草莓花药培养及脱毒苗产业化生产技术研究

选取花萼未张开花蕾（长０．６～１．０ｃｍ）的黄色花药作外植体，在诱导培养基（ＭＳ＋６－ＢＡ２ｍｇ／Ｌ＋ＮＡＡ０．２～１．０ｍｇ／Ｌ）上分化出再生苗，经快繁培养基（ＭＳ＋６—ＢＡ０．５～１．０ｍｇ／Ｌ）继代培养８～１０次，于生根培养基（ＭＳ＋６—ＢＡ０．２５ｍｇ／Ｌ）上培养，最后一次性定植于温室壤土中，成活率在９０％以上。采用本技术，一年内一块分化组织可生产商品苗５０００～８０００株。脱毒苗比普通苗增产５４．５％。