绿萝组织培养和遗传转化条件优化

为优化绿萝离体再生条件，建立更高效的遗传转化体系，分别以绿萝叶片和叶柄为外植体，比较不同植物生长物质对绿萝不定芽诱导和植株离体再生的影响。并通过PCR技术克隆拟南芥AtFALDH基因，利用农杆菌介导法对绿萝愈伤组织进行遗传转化，比较不同转化条件下绿萝愈伤组织抗性不定芽诱导率。结果表明，绿萝叶柄愈伤组织和不定芽诱导效果均优于叶片。绿萝叶片愈伤组织诱导最适培养基为MS+0.5 mg/L TDZ+0.5 mg/L NAA+1.0 mg/L 6-BA+2.0 mg/L 2,4-D，该培养基下诱导率大约为61.5%；叶柄愈伤组织诱导最适培养基为MS+0.5 mg/L TDZ+0.5 mg/L NAA，该培养基下诱导率达到97.8%。绿萝叶片不定芽诱导最适培养基为MS+3.0 mg/L 6-BA+0.2 mg/L NAA，该培养基下诱导率接近100%；叶柄不定芽诱导最适培养基为MS+3.0 mg/L 6-BA+0.3 mg/L NAA，该培养基下诱导率约为100%，但叶柄来源的愈伤组织诱导产生的不定芽数量较多，而且生长更旺盛。生根最适培养基为1/2 MS+0.05 mg/L NAA，该培养基下生根...     

杜仲愈伤组织诱导和植株再生体系的建立

【目的】研究在BA、NAA、IBA、2,4-D等激素作用下,杜仲愈伤组织诱导、愈伤组织诱导丛生芽及丛生芽诱导生根各阶段的最佳培养基配方,建立杜仲植株再生体系,为杜仲转基因研究提供基础材料。【方法】以杜仲成熟胚、幼嫩胚、叶片和茎段为外植体,使用BA、NAA、IBA、2,4-D等激素,配制成不同质量浓度的培养基,进行杜仲愈伤组织诱导,同时分析愈伤组织诱导丛生芽和丛生芽诱导生根培养基的最佳配方,建立杜仲植株的再生体系。【结果】杜仲愈伤组织诱导的培养基分别为:成熟胚MS+BA 2.0mg/L+NAA 2.5mg/L,诱导率77.8%;幼嫩胚MS+BA 0.5mg/L+2,4-D 2.0mg/L,诱导率88.9%;叶片MS+BA 0.5mg/L+NAA 0.5mg/L,诱导率100%;茎段MS+BA 2.0 mg/L+NAA 0.5 mg/L,诱导率为100%。愈伤组织诱导不定芽形成的适宜培养基为MS+BA 1.0mg/L+NAA 0.05mg/L,不定芽诱导率为88.9%,增殖系数为3±1;杜仲在1/4MS的基本培养基中生根最好,生根率达80%,激素的存在反而会抑制生根。【结论】杜仲成熟胚、幼嫩胚、叶片和茎段均可通过愈伤组织途径诱导不定芽的形成,并诱导生根,建立杜仲愈伤组织再生体系,但不定芽的增殖系数较低。     

盐桦(Betula halophila)愈伤组织的高效诱导和不定芽的分化

设计不同激素、不同水平的单因子试验和正交试验,统计盐桦出愈率、分化率,筛选出诱导盐桦愈伤组织的最适外植体和最适培养基.盐桦愈伤组织高效诱导和不定芽分化的最适外植体为茎段;诱导愈伤组织的最适培养基为:LS+BA 0.5 mg/L+NAA 0.4;愈伤组织分化抽枝的最适培养基为:LS+BA 0.5 mg/L+NAA0.02 mg/L;高效诱导愈伤组织和不定芽分化的最适培养基为:LS+BA 0.5 mg/L+NAA 0.2 mg/L.琼脂7;,蔗糖浓度20 g/L.愈伤组织诱导率和不定芽分化率分别达到82;和93.6;以上.     

黑莓叶片组织培养及植株再生的初步研究

以美国黑树莓叶片作为外植体,以MS为基本培养基,添加不同浓度的6-BA、NAA或IAA进行愈伤组织诱导及植株再生试验.结果表明:树莓叶片外植体在培养基MS+6-BA 2.0～ 4.0 mg/L+NAA(IAA)0.01～0.5 mg/L都能不同程度地形成愈伤组织 ,但以MS+6-BA 4.0 mg/L+NAA 0.5 mg/L和MS+6-BA 4.0 mg/L+IAA 0.5 mg/L愈伤组织的诱导率最高,诱导率可达100%;所试验的各种不定芽分化培养基,都能不同程度地诱导愈伤组织分化出不定芽,在添加6-BA 2.0 mg/L和NAA 0.01 mg/L的MS培养基上,愈伤组织分化不定芽的比例最高,达49.7%的;所产生的不定芽在1/2 MS+NAA 0.1 mg/L的培养基上的生根率可达89.3%.     

虎刺梅愈伤组织的诱导和快速繁殖

以虎刺梅不同部位为试验材料,不同浓度6-BA、NAA进行愈伤组织的诱导和快速繁殖。结果表明,MS培养基附加6-BA 0.5 mg/L+NAA 1.0 mg/L的激素组合对花柄愈伤组织诱导效果最佳;将产生的愈伤组织团转入分化培养基中诱导不定芽,其最适分化培养基为MS附加6-BA 3.0 mg/L+NAA 0.2 mg/L;再生苗在附加6-BA 2.5 mg/L+NAA 0.5 mg/L的MS培养基上生根培养效果较好。     

两性株番木瓜愈伤组织分化初探

以番木瓜两性株的愈伤组织为材料,以MS为基本培养基,研究了不同植物生长调节剂及组合对愈伤组织诱导不定芽和无菌芽诱导生根的影响.结果表明,6-BA和TDZ对番木瓜愈伤组织分化都有一定的诱导作用,而6-BA的作用优于TDZ,最适浓度0.05mg/L.GA3具有促进6-BA诱导愈伤组织分化的作用,诱导番木瓜愈伤组织分化出芽的最佳培养基为MS+6-BA 0.5 mg/L+GA 31.0 mg/L.相对NAA而言,IBA更适于诱导不定芽生根,生根培养基以MS+IBA 0.3 mg/L为宜.     

春石斛兰愈伤组织的诱导及分化培养基的筛选

以春石斛兰无菌幼苗茎段为外植体,分别研究了愈伤组织的诱导、分化、生根培养基配方.结果表明,愈伤诱导培养基为MS+6-BA 0.5 mg/L+2.4-D 0.8 mg/L;愈伤分化率最高的培养基为MS+NAA1.2mg/L+KT1.5 mg/L,不定芽生根培养基为1/2MS或者MS+NAA0.5 mg/L.     

两性株番木瓜愈伤组织分化初探（英文）

以番木瓜两性株的愈伤组织为材料,以MS为基本培养基,研究了不同植物生长调节剂及组合对愈伤组织诱导不定芽和无菌芽诱导生根的影响。结果表明,6-BA和TDZ对番木瓜愈伤组织分化都有一定的诱导作用,而6-BA的作用优于TDZ,最适浓度0.05mg/L。GA_3具有促进6-BA诱导愈伤组织分化的作用,诱导番木瓜愈伤组织分化出芽的最佳培养基为MS+6-BA 0.5 mg/L+GA 31.0 mg/L。相对NAA而言,IBA更适于诱导不定芽生根,生根培养基以MS+IBA 0.3 mg/L为宜。     

玉米湘农3号幼胚愈伤组织诱导及再生体系建立

以玉米品种湘农3号幼胚为外植体,以MS为基本培养基,研究2,4-D与NAA浓度配比对愈伤组织诱导、KT与IBA浓度配比对愈伤组织分化、NAA与6-BA浓度配比对试管苗生根的影响。结果表明:愈伤组织诱导的最适培养基为MS+2,4-D 2.0 mg/L+NAA 0.5mg/L;愈伤组织分化的最适培养基为MS+KT 1 mg/L+IBA 0.5 mg/L;生根的最适培养基为MS+6-BA 0.1 mg/L+NAA 0.6 mg/L。     

番茄宝大906高频再生系统的建立及其潮霉素选择压的测定

以番茄宝大906品种为试材,通过对其子叶、下胚轴的离体培养,研究了不同6-BA/NAA植物生长物质浓度配比对愈伤组织诱导、不定芽再生及生根的影响.另外,还测定了潮霉素选择压.结果表明:以子叶和下胚轴为外植体诱导愈伤组织的最适培养基分别是MS+ 2.0 mg,/L 6-BA+ 0.1 mg/L NAA和MS+ 2.0 mg/L 6-BA+0.5 mg/LNAA;诱导芽分化的最适培养基均为:MS+ 2.0 mg/L 6-BA+ 0.1 mg/L NAA,子叶的芽分化率高达93.5％;不定芽适宜的生根培养基为MS+0.1 m g/L NAA;子叶、下胚轴的潮霉素选择压分别以20、40 mg/L为宜.     

桃遗传转化再生体系的建立与优化

以桃不同胚龄胚为外植体,建立桃遗传转化再生体系.结果表明:花后50 d的胚均能诱导出愈伤组织,并可分化出不定芽.胚愈伤组织诱导培养基以MS+6-BA0.25 mg/L+2,4-D 1.0 mg/L的效果最好,平均诱导率可达99.8%.将胚愈伤组织接种在培养基MS+6-BA1.0 mg/L+NAA0.1 mg/L上,愈伤组织转变为致密型,不定芽分化率为37.5%.将不定芽用100 mg/LIBA浸蘸其基部转移到不含激素的1/2 MS培养基中诱导生根,生根率为82.0%.花后75d的成熟胚不定芽的直接诱导率达到96.1%.     

台湾百合离体快繁技术初探

以台湾百合为实验材料,对其离体快繁技术做了初步探索。实验表明：诱导台湾百合分化愈伤组织的最适培养基为 MS +2,4-D(0.5mg/L)+NAA(0.1mg/L)+6-BA(2.5mg/L)；诱导台湾百合分化不定芽的最适的培养基为 MS +NAA(0.1mg/L)+6-BA(1.5mg/L)；促愈伤组织分化不定芽的最适培养基 MS +NAA(0.1mg/L)+6-BA(1.0mg/L)；最适生根培养基为 MS +NAA(0.5mg/L) +6-BA(1.0mg/L)；诱导子房分化的最适培养基为 MS +NAA(0.5mg/L)+6-BA(1.0mg/L)。     

红掌组织培养再生体系建立的研究

以红掌"骄阳"幼嫩叶片为材料,筛选出红掌愈伤组织诱导、不定芽分化、生根的最佳培养基及激素配比。结果表明:红掌愈伤组织诱导的最佳培养基为改良MS+6-BA 1.0 mg/L+2.4-D0.5 mg/L,不定芽分化培养基为改良MS+6-BA 1.0 mg/L+NAA 0.2 mg/L,生根培养基为改良MS+IBA 0.6 mg/L+IBA 0.3 mg/L,生根率达到100%。     

甜魔芋芽鞘分化及植株再生条件的研究

以甜魔芋芽鞘为外植体,进行愈伤组织诱导、芽分化及植株再生的研究.结果表明:芽鞘在培养基MS +6-BA0.6 mg/L + NAA 0.1 mg/L+蔗糖 30g/L上愈伤组织诱导率最高,达92.3 %;芽分化最适培养基是MS +6-BA 1.5 mg/L + NAA 0.5 mg/L+蔗糖 30g/L,分化率达93.8 %;切割后的芽在生根培养基1/2MS +NAA 0.1mg/ L+蔗糖 30g/L上,能100%形成完整植株.     

优质魔芋组培快繁技术研究*

 以魔芋的根状茎为外植体,用正交试验法研究了不同氮素含量的基本培养基、不同浓度的BA以及NAA对魔芋根状茎愈伤组织诱导的影响;不同激素组合对不定芽分化、组培苗生根诱导的影响,并针对魔芋组织培养中的褐变现象采取了有效措施。结果表明:诱导魔芋根状茎愈伤组织产生的最适培养基为NN基本培养基+1.0mg/L BA+1.0mg/L NAA;MS基本培养基+2.0mg/L BA+1.0mg/L IAA为不定芽分化的最适培养基,在不定芽诱导和生长上,BA与IAA的组合较与NAA的组合好;MS+0.5mg/L IBA+0.5mg/L GA3为组培苗的最佳生根培养基,生根率达100%;一定浓度的PVP,Vc或者AC能有效控制褐变现象的发生。     

彩椒的离体快繁研究

以红盾彩椒为试材,进行组培快繁,研究不同激素类型与配比组合对愈伤组织诱导、不定芽分化及芽的伸长的影响,并初步建立彩椒的组培快繁体系.结果表明:子叶愈伤诱导最适培养基为:MS-+-0.3mg/L6-BA+1.0 mg/L NAA;不定芽诱导最适培养基为:MS+3.0 mg/L 6-BA+0.5 mg/L IAA+4.0 mg/L AgN03;芽伸长最适培养基为:MS+2.0 mg/L 6-BA+0.2 mg/L IAA+2.0 mg/L ZT+2.0 mg/L GA3;最后在1/2MS+0.5 mg/L IBA(或0.5mg/L NAA)培养基上进行生根培养.     

老虎须的组织培养与植株再生

以老虎须茎段为试验材料,采用不同激素组合对其进行愈伤组织诱导和分化、芽增殖与生根研究。结果表明:老虎须茎段愈伤组织诱导和分化的最适培养基分别为MS+6-BA 1.0 mg/L+KT 3.0 mg/L+NAA 0.5 mg/L和MS+6-BA 1.0 mg/L+KT 1.0 mg/L+NAA 0.5 mg/L;芽增殖的最适培养基为MS+6-BA 2.0 mg/L+IAA 0.2 mg/L;生根的最适培养基为1/2MS+IBA0.5mg/L。     

过路黄的组织培养及叶片植株再生

用过路黄嫩茎作为外植体进行组织培养,在附加不同浓度激素的培养基上对其进行增殖、生根培养,诱导叶片愈伤组织的形成及叶片愈伤组织不定芽的形成,建立其叶片再生体系.结果表明,过路黄最适分化培养基是MS 6-BA 0.5 mg/L NAA 1.0 mg/L,最适生根培养基是不附加任何激素的1/2MS培养基,诱导叶片愈伤组织最适培养基是MS 6-BA 0.3 mg/L NAA 0.1mg/L,诱导叶片愈伤组织不定芽形成最适培养基是MS 6-BA 0.3 mg/L NAA 0.1 mg/L.     

单瓣长寿花‘萨姆巴’高效快速繁殖体系的构建

选取单瓣长寿花‘萨姆巴’的叶片为外植体,设计正交试验,研究不同种类植物生长激素及其浓度配比的培养基对长寿花叶片愈伤组织的诱导、不定芽的分化和不定芽生根的影响,并研究试管苗炼苗及移栽的成活情况。试验结果表明,诱导长寿花叶片产生愈伤组织的最适培养基是MS+6-BA 1.0 mg/L+NAA 0.2 mg/L+2,4-D 0.2 mg/L,诱导率是83.33%。诱导愈伤组织不定芽分化的最适培养基是MS+6-BA 2.0 mg/L+NAA 0.3 mg/L,增殖系数是21.4。最适的不定芽生根培养基为1/2MS+IBA 0.2 mg/L+NAA 0.2 mg/L,生根系数为7.03。试管苗移栽到蛭石∶营养土=1∶1的基质中培养,移栽的成活率可达100%。     

红掌叶片愈伤组织诱导与植株再生的优化

以亚丽桑娜红掌(Anthurium andraeanum cv.Arizona)为研究对象,研究了不同激素配比对愈伤组织诱导、不定芽分化、芽增殖培养、生根培养等方面的影响。结果表明,培养基MS+6-BA 2.0 mg/L+2,4-D 0.2 mg/L为愈伤组织诱导的最适培养基;培养基MS+6-BA 1.0 mg/L+6-KT 1.5 mg/L为不定芽分化的最适培养基;培养基MS+6-BA 0.8 mg/L为继代培养的最佳培养基;培养基MS+NAA 0.3 mg/L+IBA0.2 mg/L为诱导生根的最佳培养基。