蝴蝶兰花梗初代培养研究

为建立蝴蝶兰"空港甜心"品种花梗芽的高效诱导体系,对影响其营养芽诱导的主要因子,包括消毒时间、花梗不同位置芽、培养基、外源激素及培养温度进行研究。结果显示:以幼嫩花梗中半木质化的花梗II为诱导材料,用0.1%HgCl2溶液消毒处理10min,接种于添加5mg.L-1的6-BA的Hyponex培养基中,并于25/18℃中培养,营养芽诱导及生长最佳。     

核桃茎段组织培养无菌芽苗的诱导

以改良DKW培养基为基本培养基,附加不同质量浓度的6-BA和IBA,对核桃进行茎段组织培养初代培养基筛选,同时进行继代培养,诱导无菌芽苗。结果表明:使用75%乙醇消毒60 s,再用0.1%氯化汞消毒8 min,可以达到最佳灭菌效果;最佳初代培养基为改良DKW培养基+蔗糖30 g/L+琼脂8 g/L+6-BA 1.0 mg/L+IBA 0.1 mg/L,继代培养芽苗生长良好。     

2种蝴蝶兰组织培养快繁技术

以红龙、皇帝2个品种的蝴蝶兰花梗为材料,1/3MS培养基为基本培养基,筛选花梗使用HgCl2消毒的最佳时间,增殖培养基的最佳激素、蔗糖浓度,以确立最佳培养配方。结果表明,红龙、皇帝品种最佳的诱导材料为开过花的花梗;红龙品种的最佳消毒时间为20 min,皇帝品种的最佳消毒时间为18 min;适合红龙品种生长的最佳激素组合为5 mg/L 6-BA+0.5 mg/L NAA,蔗糖浓度为25 g/L;适合皇帝品种生长的最佳激素组合为5 mg/L 6-BA+0.5 mg/L NAA,蔗糖浓度为20 g/L。     

珍稀濒危植物珙桐初代培养影响因素研究

以室内培养的珙桐带芽茎段为外植体,采用不同的消毒方式,通过正交设计研究了基本培养基、6-BA、NAA以及培养温度对珙桐初代培养的影响.结果表明:用70%酒精浸泡30 s,0.1%升汞浸泡3 min消毒效果较好.培养基类型、6-BA浓度和培养温度对珙桐初代培养影响极显著,低盐培养基WPM优于中盐培养基H和高盐培养基N6、MS;6-BA浓度以2.0 mg/L时萌芽率最高;NAA浓度对萌芽率影响不显著.初代培养的最佳组合为:在15 ℃下选用WPM+2.0 mg/L 6-BA+0.1 mg/L NAA.     

香味蝴蝶兰快速繁殖技术研究

文章详细叙述了通过组织培养的方法诱导香味蝴蝶兰L2030花梗上的腋芽萌发,可以得到无菌的蝴蝶兰不定芽.以不定芽为外植体,进行香味蝴蝶兰L2030组织培养快繁技术.结果表明:诱导花梗芽萌发的培养基为MS+6-BA5mg/L+柠檬酸0.05%;不经过原球茎诱导直接形成丛生芽,对其进行增殖的最佳培养基为MS+6-BA15 m...     

蝴蝶兰花梗初代培养的研究

本试验以蝴蝶兰花梗为外植体,MS为基本培养基,对影响腋芽诱导的MS基本培养基中无机盐浓度、植物生长调节物质的种类和浓度配比、外植体选取部位等因素进行了研究。试验结果表明:选用1/3MS处理来诱导花梗腋芽萌芽生长的综合效果最好;单独使用细胞分裂素(6-BA)时芽的诱导率比同时使用细胞分裂素和生长素的诱导率高;花梗腋芽的取材部位影响萌芽率和营养芽的形成。     

切花文心兰花梗芽组培快繁技术研究

以切花文心兰南茜Oncidium Gower Ramsey为材料,对以花梗芽为外植体的切花文心兰组培快繁技术进行研究.结果表明,以成熟度2(外形呈笋状,花苞和分叉始露出花梗苞片,高约70 cm)和中部节位的花梗上的芽为最适宜外植体;用0.1％升汞消毒处理花梗芽的适宜时间为12 min; 1/2MS+6-BA 2.0 mg/L+TDZ 1.0mg/L+NAA 0.2 mg/L为花梗芽最佳初代诱导培养基;继代培养以6-BA 3.0 mg/L+NAA 0.3 mg/L为最佳激素组合;以温度25℃C和光照强度2 500 lx(光照时间10～12 h/d)的培养条件最为理想.     

不同细胞分裂素及使用浓度对蝴蝶兰花梗芽增殖生长的影响

通过对比试验验证不同种类细胞分裂素及不同使用浓度对蝴蝶兰花梗芽增殖生长的影响.结果表明:在一定浓度范围内,添加6-BA可以促进蝴蝶兰花梗芽增殖,以添加5 mg/L 6-BA为最佳;Ad可促进蝴蝶兰花梗芽根系的生长,但对蝴蝶兰花梗芽的增殖无促进作用;6-BA、Ad配合使用时增殖倍数均比各自单独使用时高,6-BA、Ad添加浓度的比例以1∶2为最好.     

铁炮百合快速繁殖技术研究

以铁炮百合(Lilium longiflorum)的鳞片尧含苞待放时花蕾下的花梗为外植体,进行诱导生芽、生根的组织培养快速繁殖技术的研究。结果表明：鳞片诱导生芽最适合的初代培养基为MS+6-BA2.0 mg/L+NAA0.1 mg/L+2,4-D0.1mg/L;花梗的诱导生芽最适合的初代培养基为MS+6-BA1.0 mg/L+NAA0.5 mg/L;最佳继代培养基为MS+6-BA3.0mg/L +NAA 0.02 mg/L;最佳生根培养基培养基为1/2MS+6-BA 0.1 mg/L+NAA 1.0 mg/L+活性炭0.1%;生芽率和生根率均可达100%。     

一种高效的蝴蝶兰花梗诱导丛生芽体系

为提高蝴蝶兰组织培养效率,分别以幼嫩花梗和已开花蝴蝶兰花梗腋芽为外植体,采用两种消毒剂HgCl2、NaClO,3种消毒方式0.1%HgCl2,10min;10%NaClO,10min;5%NaClO,10min为处理,以VW(大量)+MS(微量、铁盐、有机)+100g·L-1马铃薯+0.1g·L-1 Ga3(PO4)2+6mg·L-16-BA+0.2mg·L-1 NAA为诱导基本培养基;VW(大量)+MS(铁盐、有机、微量)+100g·L-1马铃薯+3mg·L-16-BA+0.2mg·L-1 NAA为增殖分化培养基;1/2MS+0.1mg·L-1 NAA为生根培养基诱导丛生芽,拟建立以蝴蝶兰花梗腋芽为外植体的高效丛生芽诱导体系。结果表明:在0.1%HgCl2,10min消毒方式下,幼嫩花梗腋芽的污染率为0,丛生芽诱导率为95.6%;增殖率为216%;在生根培养基1/2MS+0.1mg·L-1 NAA上生根率为95.6%,建立了高效的蝴蝶兰幼嫩花梗腋芽诱导丛生芽。     

茅苍术组培快繁技术研究

茅苍术是重要的道地药材,但由于繁殖困难和采伐过度,导致野生资源濒危,产量大幅度下降.为解决这一问题,利用植物组织培养的方法,以茅苍术种子为外植体,对初代培养的建立及不定芽诱导、增殖和生根的适宜激素浓度进行了筛选,以期为茅苍术的组培快繁生产提供技术支持.结果表明:初代培养以种子去皮、0.1％升汞消毒10min效果最佳;不定芽诱导以MS+6-BA 3.0mg/L诱导率最高,配合NAA浓度0.4mg/L和0.8mg/L的不定芽诱导率分别为96.77％、95.78％.其次是MS+6-BA 2.0mg/L,添加NAA浓度0.2mg/L和0.4mg/L的诱导率分别为94.53％、95.22％.增殖培养以MS培养基添加6-BA 3.0mg/L的增殖系数最高,为11.88;其次是2.0mg/L,增殖系数在9.5以上;但以MS+6-BA 2.0mg/L+NAA0.4mg/L增殖系数和长势综合效果最好.生根培养以培养基配方为1/2MS+NAA0.5mg/L生根效果最佳.     

蝴蝶兰‘大辣椒’组培快繁技术体系的优化

探索优化蝴蝶兰组培快繁技术体系，以蝴蝶兰‘大辣椒’半木质化花梗为试验材料，研究消毒剂、基础培养基、植物生长调节剂配比及浓度对蝴蝶兰不定芽诱导、增殖和生根过程的影响。结果表明:1）先用2% H₂O₂溶液处理15 min，再用10% NaClO溶液处理10 min，消毒效果良好，花梗污染率低，为26.6%；2）不定芽诱导最适培养基为花宝1号+花宝2号+ 6-BA 3 mg/L+NAA 0.05 mg/L，出芽率为78.9%；3）不定芽增殖最适培养基为花宝1号+6-BA 5 mg/L+NAA 0.05 mg/L，增殖系数为3.60；4）幼苗生根最适培养基为1/2MS+NAA 0.2mg/L，生根率为73.7%。本研究旨在优化‘大辣椒’品种的组培快繁技术体系，为进一步建立蝴蝶兰再生体系和工厂化生产提供技术支持。     

蝴蝶兰组织培养的初步研究

该实验以蝴蝶兰花梗为外植体,MS为基本培养基,对影响腋芽诱导的MS基本培养基中无机盐浓度、植物生长调节物质的种类和浓度配比、外植体选取部位等因素进行了研究.实验结果表明:选用1/3MS处理来诱导花梗腋芽萌发生长的综合效果最好;单独使用细胞分裂素(6-BA)时的芽苗诱导率比同时使用细胞分裂素和生长素的诱导率高;花梗腋芽的取材部位影响萌发率和营养芽的形成.     

金线莲丛生芽诱导研究

[目的]为提高金线莲的繁殖系数。[方法]以金线莲为材料,以MS为基本培养基,设置不同的激素组合,进行分化增殖培养,定期观察并记录结果。[结果]升汞浓度和消毒时间是金线莲无菌体系建立的重要影响因素。不同消毒方式对金线莲启动培养的污染率极显著差异,褐变率有显著差别。金线莲启动培养最佳消毒方式为:75%酒精消毒30 s+0.15%升汞消毒4 min。不同激素浓度及配比对丛生芽诱导的影响差异极显著。培养基中附加6-BA 1.0 mg/L+2,4-D 0.10 mg/L较其他培养基对丛生芽诱导有极显著差异,增殖1.166 7倍。筛选出的丛生芽诱导最佳培养基为MS+6-BA 1.0 mg/L+2,4-D 0.1 mg/L+3%蔗糖+7 g/L琼脂。[结论]得到了适宜的诱导金线莲丛生芽的培养基。     

丽影和红韵蝴蝶兰快速繁殖试验

以花梗腋芽为材料,研究了蝴蝶兰新品种丽影和红韵的快速繁殖技术。结果表明,消毒时间对营养芽诱导率有显著影响,0.1%Hg Cl2消毒8 min的红韵蝴蝶兰营养芽诱导率最高,激素对营养芽诱导率影响不显著。6-BA浓度、有机附加物和芽数对丛生芽增殖影响显著,当6-BA浓度为8.0 mg/L时,丽影和红韵芽增殖系数最高,分别为2.31和2.22;添加椰汁更有利于减轻褐变,提高增殖系数;单芽接入的增殖系数最高。激素对生根率无显著影响,但对平均根数和苗高有显著影响,在含6-BA 0.1 mg/L+NAA 1.0 mg/L的培养基上试管苗株高最高,平均根数最多。以松树皮为基质,丽影和红韵蝴蝶兰试管苗移栽成活率分别为91.58%和87.27%。     

多花山竹子组培初代培养技术研究

旨在为多花山竹子组培快繁体系建立提供参考。通过观察对比试验法、完全随机化法正交试验设计、运用方差分析、显著性检验、LSD多重比较,探讨多花山竹子组培的外植体最佳消毒时间控制和最适初代培养基类型与激素浓度配方。试验表明：多花山竹子组培的外植体消毒时间为2 min时其污染率最高、死亡率与存活率较低,消毒时间为6 min时其污染率和死亡率居中、存活率最高,消毒时间为10 min时其污染率与存活率最低、死亡率最高;以MS和B5作为多花山竹子组培的初代培养基培养效果较好,若对MS和B5分别添加不同浓度的6-BA、NAA ,对其外植体不定芽的诱导促进作用不同,MS的最佳配比为6-BA 1.6 mg/L+NAA 0.9 mg/L,B5的最佳配比为6-BA 1.6 mg/L+NAA 0.6 mg/L。考虑各因素和激素交互作用,综合认为其外植体消毒时间控制6 min、初代培养基类型与激素浓度配方为MS+6-BA 1.6 mg/L+NAA 0.9 mg/L时培养效果最好。     

蝴蝶兰组培快繁技术研究

通过组织培养的方法诱导蝴蝶兰花梗上的腋芽萌发,可以得到无菌的蝴蝶兰不定芽。以不定芽上的幼叶为外植体,建立蝴蝶兰的无菌培养体系。结果表明:诱导腋芽萌发的培养基为MS+5 mg/L 6-BA;利用幼叶进行原球茎诱导的最佳培养基为MS+5 mg/L 6-BA+0.5 mg/L NAA+0.1 g/L活性炭(AC)+150 mL/L椰汁(CM);原球茎增殖的培养基为3 g/L花宝一号(HyponexNo.1)+5 mg/L 6-BA+1 mg/L NAA+150 mL/L CM;生根培养基为3 g/L Hyponex No.1+0.1 mg/L6-BA+1 mg/L NAA+0.5 g/L AC+100 mL/L土豆汁。     

3种因素对兰州百合不定芽诱导的影响

为建立兰州百合试管苗规范化生产技术体系,以兰州百合鳞片为外植体,MS为基本培养基,对外植体消毒时间、鳞片放置方式,以及初代、继一代和继二代激素α-萘乙酸(NAA)和6-苄氨基腺嘌呤(6-BA)浓度等影响不定芽产生的3个主要因素进行研究。结果表明:0.1%的氯化汞最佳灭菌时间12 min,与鳞片内侧相比,鳞片外侧小突起、不定芽、小突起+不定芽个数也均以12 min消毒处理效果最佳;与鳞片外侧和近轴面向上放置相比,鳞片内侧和近轴面向下放置更有利于芽的诱导;最佳诱导和继一代培养基均为MS+NAA 0.1 mg/L+6-BA 1.0 mg/L,诱导培养30 d左右后不定芽数达7.00个,转绿率和发芽率分别为80.83%和55.00%;继一代发芽率和生叶率最高时可达45.02%和78.00%;兰州百合继二代培养时适当降低6-BA浓度,不仅不影响组培苗正常的生长发育,反而使叶片数和不定芽数达到23.67片和5.67个,以MS+NAA 0.1 mg/L+6-BA 0.5 mg/L为适宜培养基。     

3种因素对兰州百合不定芽诱导的影响

为建立兰州百合试管苗规范化生产技术体系,以兰州百合鳞片为外植体,MS为基本培养基,对外植体消毒时间、鳞片放置方式,以及初代、继一代和继二代激素α-萘乙酸(NAA)和6-苄氨基腺嘌呤(6-BA)浓度等影响不定芽产生的3个主要因素进行研究。结果表明:0.1%的氯化汞最佳灭菌时间12 min,与鳞片内侧相比,鳞片外侧小突起、不定芽、小突起+不定芽个数也均以12 min消毒处理效果最佳;与鳞片外侧和近轴面向上放置相比,鳞片内侧和近轴面向下放置更有利于芽的诱导;最佳诱导和继一代培养基均为MS+NAA 0.1 mg/L+6-BA 1.0 mg/L,诱导培养30 d左右后不定芽数达7.00个,转绿率和发芽率分别为80.83%和55.00%;继一代发芽率和生叶率最高时可达45.02%和78.00%;兰州百合继二代培养时适当降低6-BA浓度,不仅不影响组培苗正常的生长发育,反而使叶片数和不定芽数达到23.67片和5.67个,以MS+NAA 0.1 mg/L+6-BA 0.5 mg/L为适宜培养基。     

红花石蒜的组织培养

选用双鳞片法切割红花石蒜鳞茎为外植体,采用MS基本培养基,以两种植物生长调节剂NAA和6-BA不同浓度配伍,研究了不同消毒时间和不同激素浓度对小植株诱导和不定芽诱导的影响。结果表明:利用0.1%升汞溶液浸泡石蒜鳞茎10~15min消毒效果最好;MS+2mg/L 6-BA+0.2mg/L NAA是小植株诱导的最佳培养基;MS+NAA 2mg/L+6-BA2mg/L是不定芽诱导的最佳培养基;MS+2mg/L NAA对于小鳞茎的生根效果最好。