新疆天山雪莲组培快繁技术的建立

[目的]探讨新疆天山雪莲组培快繁技术。[方法]以新疆雪莲切除根部的无菌苗,或无菌苗的真叶,或者直接采集野生的新疆雪莲幼嫩部位作外植体,进行愈伤组织诱导培养及丛生芽分化、丛生芽增殖继代培养、生根培养和组培苗移栽试验。[结果]新疆天山雪莲外植体在MS+NAA 2 mg/L+6-BA 0.5 mg/L和MS+6-BA 1.0+NAA 0.1 mg/L+2,4-D 0.1 mg/L培养基上可诱导产生大量的丛生芽;在MS+6-BA 0.5 mg/L+NAA 2.0 mg/L和MS+6-BA 0.5 mg/L+NAA 0.01 mg/L培养基上交替培养,丛生芽继代快速增殖率达1.0∶3.5;组培苗在MS+NAA 0.2 mg/L培养基上诱导生根,生根率达83%;生根的雪莲组培苗经炼苗和移栽后成活,生长健壮。[结论]该研究建立的快繁技术为雪莲野生资源保护和产业化发展开拓了一条有效途径。     

香叶天竺葵组培快繁体系的研究

以香叶天竺葵无菌苗叶片为外植体,MS为基本培养基进行组培快繁研究,结果表明:愈伤组织诱导最佳培养基为MS+6-BA 0.2 mg/L+2,4-D 0.1 mg/L;不定芽诱导最佳培养基为MS+6-BA 0.2 mg/L+NAA 0.5 mg/L;不定芽增殖最佳培养基为MS+6-BA 1.0 mg/L+NAA 0.5 mg/L;最佳生根培养基为MS+NAA 0.1 mg/L,生根率达100%,且根系长势良好.     

细叶粉葛的组织培养和快速繁殖技术的研究

将茎尖接种于MS 6-BA0.2mg/L NAA0.01 mg/L的培养基上,获得无菌苗,将无菌苗接种于培养基MS 6-BA1.2mg/L NAA0.2mg/L或MS 6-BA0.5mg/L NAA0.5mg/L上形成丛生芽,将丛生芽切块接种于MS 6-BA0.2mg/L NAA0.3mg/L培养基上壮苗,将丛生小苗接种于MS NAA0.5mg/L培养基上生根,得到大量的整齐一致的细叶粉葛种苗。     

兴仁金线莲丛生芽诱导增殖研究

[目的]筛选兴仁金线莲丛生芽的诱导和增殖的最佳培养基。[方法]用野生兴仁金线莲植株茎段作外植体,以MS为基本培养基,并添加不同浓度的6-BA和NAA,诱导丛生芽,筛选最佳培养基配方。[结果]MS是兴仁金线莲快繁最佳基本培养基;2.0～3.0 mg/L的6-BA有利于丛生芽的诱导;1.0 mg/L 6-BA+0.1 mg/L NAA有利于芽的生长;最佳蔗糖浓度为25 g/L。[结论]MS+2 mg/L 6-BA+0.2 mg/L NAA+25 g/L蔗糖为丛生芽增殖的最佳培养基配方。     

杂交马褂木组培快繁研究

以杂交马褂木嫩枝作为外植体,接种到培养基MS+6-BA0.2mg/L+NAA0.1mg/L,可诱导大量丛生芽。增殖阶段,培养基MS+6-BA0.1mg/L+NAA0.2mg/L有利于苗的快速繁殖,提高繁殖系数。最佳生根培养基配方为MS+NAA0.2mg/L。     

菝葜组织培养研究

[目的]更好地开发利用菝葜。[方法]以菝葜幼嫩茎段为外植体,以MS1、/2 MS1、/4 MS为基本培养基,研究不同植物激素组合对菝葜组织培养快速繁殖的影响。[结果]外植体的最佳消毒方式为0.1%升汞消毒9 min。1/2 MS1、/4 MS培养基更有利于菝葜芽的诱导、增殖及生根,6-BA对芽丛的增殖培养具有关键作用。最佳启动培养基为1/2 MS+6-BA 2.0 mg/L+IBA 0.1 mg/L+NAA 0.2 mg/L。最佳增殖培养基为1/2 MS+6-BA 3.0 mg/L+IBA 0.2 mg/L+NAA 0.2 mg/L。最佳生根培养基为1/4 MS+IBA 0.1 mg/L+NAA 1.5 mg/L+活性炭1 000 mg/L,生根率最高,达75%。[结论]该研究建立了菝葜的组织培养繁殖体系,增加了菝葜的繁殖系数。     

大花萱草的花梗组织培养与快速繁殖

[目的]建立大花萱草的花梗组织培养与快速繁殖方法。[方法]以矮化大花萱草的幼嫩花梗为材料,筛选大花萱草快速繁殖中的愈伤组织诱导及丛生芽发生培养基及生根培养基。[结果]MS+2.0～3.0 mg/L 6-BA+0.2～0.3 mg/L NAA、MS+1.0～2.0 mg/L6-BA+0.1～0.2 mg/L NAA及MS和1/2MS+0.2 mg/L NAA培养基分别是愈伤组织诱导、继代培养和生根培养的理想培养基。[结论]该研究所采用的离体培养及簇生苗生根技术,是快速繁殖大花萱草的有效途径,为大花萱草的工厂化生产提供了技术参考。     

植物激素对无籽西瓜丛生芽诱导的影响

[目的]对无籽西瓜的组织培养技术进行探索。[方法]以墨童无籽西瓜子叶作为外植体,分别置于添加不同浓度6-BA、NAA、IBA、KT的MS培养基中诱导愈伤组织、丛生芽及丛芽的伸长。[结果]浓度0.3~1.2 mg/L6-BA、NAA均能诱导愈伤组织;浓度0.6~2.5 mg/L6-BA、IBA均能诱导丛生芽;浓度0.2~1.0 mg/LKT均能诱导丛生芽伸长。[结论]诱导无籽西瓜愈伤组织的最佳培养基为MS＋NAA1.0 mg/L＋6-BA0.5 mg/L,诱导丛生芽的最佳培养基为MS＋6-BA2.0 mg/L＋IBA0.8 mg/L;诱导丛生芽伸长的最佳培养基为MS＋KT0.2 mg/L。     

红叶李离体茎段培养与微体快繁的研究

[目的]为红叶李的商品化生产、遗传转化和品种定向改良奠定基础。[方法]以红叶李茎段为外植体,在MS、1/2MS基本培养基中添加不同浓度的6-BA和NAA,研究不同激素浓度对红叶李增殖和生根的影响,建立红叶李的离体繁殖体系。[结果]适量浓度的6-BA和NAA组合比单独使用6-BA诱导率高,处理⑤(6-BA、NAA的浓度分别为1.0、0.2mg/L)的诱导率达75.0%,且腋芽生长良好。处理⑥(6-BA、NAA的浓度分别为2.0、0.2mg/L)的增殖系数为7.67,芽苗高度大于2cm的芽数为4.76。适合红叶李生根的最佳IBA浓度为0.5mg/L,生根率达98.3%。试管苗移栽成活率达85%以上。[结论]红叶李离体培养的最佳启动培养基为MS+6-6-BA1.0mg/L+NAA0.2mg/L,最佳增殖培养基为MS+6-BA2.0mg/L+NAA0.2mg/L,最佳生根培养基为1/2MS+IBA0.5mg/L。     

Regeneration system in vitro of Bromeliad distant hybrid

[目的]建立一套观赏凤梨远缘杂种离体再生培养体系,为优质新种质的工厂化生产提供参考.[方法]以观赏凤梨V‘ Christiane’×G.dissitisflora远缘杂交种子为材料,研究不同激素组合和基因型对种子愈伤组织的诱导、芽分化和无菌苗生根的影响.[结果]在添加6-BA 1.0 mg/L、NAA 0.2 mg/L的MS培养基上,株系Cd-40的增殖倍数最高,为20.43,其次为Cd-15、Cd-46.与MS培养基相比,在添加不同浓度NAA和6-BA的1/2MS培养基中,Cd-15愈伤组织增殖倍数为6.5～8.5.在含6-BA 2.0 mg/L+NAA 0.5 mg/L的MS培养基上,Cd-8、Cd-15、Cd-40的平均芽分化率和平均芽分化数均最高,分别为98.49％和18.4个/块.在E4培养基中,Cd-15、Cd-40的愈伤组织分化率和分化芽均达最高值.Cd-40无菌苗在含NAA 0.5 mg/L+IBA 0.5 mg/L+ 6-BA 0.25 mg/L的1/2MS培养基上生根效果最好,生根率高达99.0％,平均根数为2.41条/株.[结论]在添加生长素NAA的培养基中提高6-BA的浓度有利于芽的分化,NAA是观赏凤梨无菌苗生根效果较好的激素.     

铁线莲组培快繁技术研究

[目的]研究不同激素浓度对铁线莲诱导、增殖和生根的影响,建立铁线莲组培快繁技术。[方法]以铁线莲茎段为外植体,在MS培养基中加入不同浓度的6-BA、NAA和IBA,研究不同激素浓度对其腋芽诱导分化、诱导芽增殖和继代苗生根的影响。[结果]铁线莲腋芽诱导效果以MS+6-BA 1.0 mg/L+NAA 0.2 mg/L为最佳;增殖培养以MS+6-BA 1.5 mg/L+NAA 0.50 mg/L为最佳;继代苗生根培养以MS+6-BA 1.5 mg/L+IBA 2.0 mg/L最佳。[结论]建立了铁线莲组培快繁技术体系,为其规模化生产提供理论依据。     

仙茅地下茎段组织培养研究

[目的]为仙茅的快速繁殖提供借鉴和依据。[方法]以仙茅无菌地下茎段为外植体,在蔗糖浓度为20 g/L,琼脂用量为6.5 g/L,pH值为5.8,温度为25℃的光照条件下,设3组培养基（A愈伤组织诱导培养基MS＋6-BA 0-1.0 mg/L＋NAA 0-1.0 mg/L,B丛生芽诱导培养基MS＋6-BA 0.5-1.5 mg/L＋NAA 0.2-0.8 mg/L,C生根培养基MS＋IAA 0-0.5 mg/L）进行组培试验。[结果]最适合仙茅的愈伤组织诱导培养基为MS＋6-BA 0.2-1.0 mg/L＋NAA 0.1-0.6 mg/L;丛生芽分化培养基为MS＋6-BA 0.8-1.5 mg/L＋NAA0.2-0.5 mg/L;生根培养基为MS＋IAA 0.1-0.3 mg/L。仙茅的愈伤组织诱导率为88%-93%,丛生芽诱导率为93%-96%,生根诱导率为92%-96%。[结论]该研究为仙茅地下茎段的组织培养提供了试验参考和理论依据。     

芦荟快繁体系建立的研究

[目的]为大规模快速生产芦荟组培苗提供理论和实践依据。[方法]以3个芦荟品种的茎尖分生组织为外植体,用含不同浓度6-BA和NAA的增殖培养基和含不同浓度NAA的生根培养基进行组织培养,研究不同培养基对芦荟组织发育的影响。[结果]在诱导芦荟侧芽分化的过程中,增殖培养基成分为MS+6-BA 3.0 mg/L+NAA 0.2 mg/L时,诱导效果比较理想,平均诱导出3.6个芽;在诱导生根的过程中,生根培养基成分为MS+NAA 0.2~0.3 mg/L时,生根率较高,平均生根数为7.8~8.2条,根较长且都为正常根。[结论]芦荟组织培养和快繁的培养基最佳配方为:增殖培养基MS+6-BA 3.0 mg/L+NAA 0.2 mg/L、生根培养基MS+NAA 0.2~0.3 mg/L。     

佛甲草的组培快繁技术研究

[目的]通过组织培养技术建立佛甲草快繁体系,为更好满足市场需要、实现其生态景观效益提供材料。[方法]以佛甲草茎段为外植体,研究不同浓度配比的激素对组培过程中不定芽诱导、丛生芽增殖及生根的影响,筛选出各阶段最适培养基。[结果]佛甲草不定芽诱导最适培养基为MS+6-BA 1.0 mg/L+NAA 0.2 mg/L+活性炭1.6 g/L;丛生芽增殖最适培养基为MS+6-BA 2.0 mg/L+NAA0.2 mg/L+活性炭1.6 g/L;最佳生根培养基为1/2MS+NAA 0.2 mg/L。[结论]以茎段为途径建立佛甲草快繁体系,能够高效稳定地获得组培苗。     

四季杨茎段组织培养初步研究

[目的]为四季杨苗木繁育与生产提供参考,满足道路绿化和短周期工业用材对四季杨苗木的需求。[方法]以四季杨茎段为材料,在MS培养基上添加不同浓度的6-BA和NAA,研究不同处理对外植体芽分化的影响。[结果]6-BA和NAA浓度分别以2.0mg/L和0.2mg/L对外植体不定芽的诱导率效果最好,且在MS＋2.0mg/L6-BA＋0.2mg/LNAA培养基上外植体芽分化率最高,可达到60.2%,是四季杨茎段组织培养初代培养基筛选出的最佳培养基配方。[结论]适宜的植物生长调节剂浓度对提高四季杨外植体启动率有重要影响。     

‘火焰’品种彩色马蹄莲组培快繁体系的建立及优化

[目的]建立并优化‘火焰’品种彩色马蹄莲组培快繁体系。[方法]以‘火焰’品种彩色马蹄莲的球茎嫩芽为试验材料,对其组织培养无性繁殖体系进行研究。[结果]最佳诱导培养基为MS+2.0 mg/L 6-BA+0.2 mg/LNAA;最佳增殖培养基为MS+2.0 mg/L6-BA+0.2 mg/L NAA;植株再生最适合培养基为1/2MS+0.2 mg/L 6-BA+0.2 mg/L NAA;最适生根培养基为1/2MS+0.2 mg/L NAA+2.0 g/L活性炭。[结论]该研究建立了‘火焰’品种彩色马蹄莲的组培快繁体系,为其快速繁殖及产业化生产提供了技术和理论依据。     

高丽人参快繁条件的优化

[目的]优化高丽人参的快繁条件。[方法]应用组织培养方法,以高丽人参无菌苗幼嫩的叶片为试材,通过研究不同植物生长调节物质及其组合对高丽人参不同组织的诱导,优化人参的快繁条件。[结果]结果表明,诱导愈伤组织最佳的培养基为MS＋KT0.5mg/L＋NAA 0.2mg/L;诱导丛生芽最理想的培养基为MS＋NAA 0.1mg/L＋6-BA 2.0mg／L;最佳诱导不定芽生根的培养基为1／2MS＋KT0.1mg／L＋6-BA 0.1mg／L＋IAA 0.3mg／L＋活性炭3.0g／L。[结论]该研究为更有效的开发利用人参提供参考依据。     

棣棠花组织培养与快速繁殖技术研究

[目的]提高棣棠花育苗繁殖速度。[方法]以棣棠花嫩茎为外植体,进行组织培养与快速繁殖研究。[结果]在MS＋2．0mg／L 6-BA＋0．2mg／L NAA培养基中,簇生芽分化数最多,质量最好,分化率这100％;在MS＋1．0mg／L 6-BA＋0．5mg／L KT＋0．1mg/L NAA培养基中,增殖倍数最高,为11．87;在1／2MS＋0．1mg／L NAA培养基中生根效果最好,每个嫩茎基部有3～5条根;炼苗成功后移栽成活率达96％。[结论]诱导簇生芽的最佳培养基为NS＋2．0mg／L 6-BA＋0．2mg／L NAA,继代培养的最佳培养基为MS＋1．0mg／L 6-BA＋0．5mg/L KT＋0．1mg／L NAA,再生苗在1／2 MS＋0．1mg／LNAA的培养基上生根效果较好。     

石蒜组培快繁技术的研究

[目的]建立石蒜组培快繁体系。[方法]以石蒜鳞片为外植体,采用组织培养的方法对石蒜进行扩大繁殖,在不同诱导阶段对石蒜鳞茎进行试验以得到最佳激素类别及配比。[结果]石蒜鳞茎不定芽诱导的最佳激素及配比为MS+6-BA 10 mg/L+NAA 0.5 mg/L,不定芽增殖的最佳激素及配比MS+6-BA 5 mg/L+NAA 0.5 mg/L,生根培养基的最佳激素配比为MS+NAA 2.0 mg/L。[结论]为后续的试验和生产化提供一定的基础。