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魔芋组织培养与快繁技术研究 总被引:14,自引:1,他引:14
以不同类型的白魔芋Md和Ms与花魔芋CMH和CCDY4种材料的块茎为外植体,培养于附加6-BA和NAA不同浓度组合的MS培养基上进行愈伤组织诱导、不定芽分化及试管苗生根寄栽等试验。结果表明,培养效果与魔芋的类型无关,主要与培养基中激素的浓度组合相关。培养的适宜激素浓度组合,诱导带芽愈伤组织CMH和Md为6-BA1.0mg/L NAA0.5mg/L,CCDY和Ms为6-BA1.0mg/L NAA1.0mg/L;不定芽分化及快繁,花魔芋为6-BA1.0mg/L NAA0.5mg/L,白魔芋为6-BA2.0mg/L NAA0.5mg/L。试管苗生根以NAA0.5mg/L IBA0.1mg/L激素浓度组合较好。愈伤组织诱导及不定芽分化应在黑暗或散射光下培养,可大大减少切块伤口褐化程度;愈伤组织继代以10mm×10mm×10mm大小及不定芽增殖以带3个小芽的组织切块转接,利于快速生长。加入多酚氧化酶抑制剂(Vc、柠檬酸)及吸附剂(活性碳)对抑制褐化效果并不明显。 相似文献
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以不同类型的白魔芋Md和Ms与花魔芋CMH和CCDY 4种材料的块茎为外植体,培养于附加6-BA和NAA不同浓度组合的MS培养基上进行愈伤组织诱导、不定芽分化及试管苗生根寄栽等试验.结果表明,培养效果与魔芋的类型无关,主要与培养基中激素的浓度组合相关.培养的适宜激素浓度组合,诱导带芽愈伤组织CMH和Md为6-BA1.0 mg/L+NAA 0.5 mg/L,CCDY和Ms为6-BA 1.0 mg/L+NAA 1.0 mg/L;不定芽分化及快繁,花魔芋为6-BA 1.0mg/L+NAA 0.5 mg/L,白魔芋为6-BA 2.0mg/L+NAA0.5 mg/L.试管苗生根以NAA0.5 mg/L+IBA 0.1 mg/L激素浓度组合较好.愈伤组织诱导及不定芽分化应在黑暗或散射光下培养,可大大减少切块伤口褐化程度;愈伤组织继代以10mm×10 mm×10 mm大小及不定芽增殖以带3个小芽的组织切块转接,利于快速生长.加入多酚氧化酶抑制剂(Vc、柠檬酸)及吸附剂(活性碳)对抑制褐化效果并不明显. 相似文献
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[目的]探索蓬莪术的离体快繁技术。[方法]以蓬莪术嫩叶、块茎和根为外植体,接种在以MS为基本培养基,外加不同浓度激素组合的培养基上进行愈伤组织诱导、增殖和分化培养;以幼芽为外植体,进行幼芽的增殖、生根培养和移栽等。[结果]诱导蓬莪术叶、块茎和根的愈伤组织形成的最适培养基为MS+2,4-D1.0 mg/L+6-BA0.5~1.0 mg/L+NAA0.3 mg/L,其中蓬莪术叶诱导率最高,达96%;愈伤组织增殖和分化培养还有待进一步研究。幼芽最适增殖培养基为MS+6-BA3.0 mg/L+NAA0.1 mg/L+KT1.0 mg/L,其增殖倍数达3.5以上;而生根培养基以1/2 MS+NAA1.0 mg/L+6-BA0.5 mg/L为最佳,生根率达100%,其移栽成活率达85%以上。[结论]该研究结果为蓬莪术的快速繁殖及工厂化生产奠定了基础。 相似文献
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过路黄的组织培养及叶片植株再生 总被引:2,自引:1,他引:1
用过路黄嫩茎作为外植体进行组织培养,在附加不同浓度激素的培养基上对其进行增殖、生根培养,诱导叶片愈伤组织的形成及叶片愈伤组织不定芽的形成,建立其叶片再生体系.结果表明,过路黄最适分化培养基是MS 6-BA 0.5 mg/L NAA 1.0 mg/L,最适生根培养基是不附加任何激素的1/2MS培养基,诱导叶片愈伤组织最适培养基是MS 6-BA 0.3 mg/L NAA 0.1mg/L,诱导叶片愈伤组织不定芽形成最适培养基是MS 6-BA 0.3 mg/L NAA 0.1 mg/L. 相似文献
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《江苏农业科学》2019,(24)
以玉扇(Haworthia truncata)叶片、花茎为外植体,通过筛选分别得出叶片和花茎的最佳消毒灭菌方法为:75%乙醇浸洗30 s,0.1%氯化汞处理5~7 min和75%乙醇浸洗30 s,0.1%氯化汞处理3~5 min。选用6-BA(细胞分裂素)、NAA(萘乙酸)和KT(激动素)对不同生长途径的激素配比与浓度进行正交组合筛选,得到不同取材部位在不同分化途径中最适宜的愈伤组织诱导、不定芽诱导和愈伤组织分化的激素配比方案,愈伤组织诱导率最佳方案为花茎,MS+1.0 mg/L 6-BA+0.1 mg/L NAA+0.5 mg/L KT;叶片,MS+0.3 mg/L NAA+0.5 mg/L KT;出芽率最佳方案为:花茎,MS+0.1 mg/L NAA+0.5 mg/L KT;叶片,MS+1.0 mg/L 6-BA+0.3 mg/L NAA+1.0 mg/L KT;愈伤组织分化率最佳方案为MS+1.0 mg/L 6-BA+0.1 mg/L NAA+0.5 mg/L KT。选用NAA、IBA、蔗糖添加量和活性炭添加量对生根培养基进行正交组合筛选,得到最佳生根培养基为1/2MS+0.5 mg/L NAA+3.0 mg/L IBA+10 g/L蔗糖+7 g/L活性炭,所诱导的根系健康,植株饱满,移栽成活率可达80%以上。 相似文献
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以积雪草(Centella asiatica)的春芽作为外植体,以MS培养基为基本培养基,添加不同激素,分别组配成12种愈伤组织诱导培养基和丛芽增殖培养基进行组织培养,然后将诱导的积雪草丛芽切成单株后接入4种生根培养基,研究不同激素配比对愈伤组织的形成、丛芽的增殖及生根的影响.结果表明积雪草春芽在MS+6-BA 1.0 mg/L+NAA 0.20 mg/L+2,4-D 0.5 mg/L培养基上容易诱导愈伤组织,诱导率为86%.丛芽在MS+6-BA 3.0 mg/L+NAA 1.0 mg/L+活性炭0.1 g/L培养基上的成活率为94%,增殖系数为5.9.以MS+6-BA 0.4 mg/L+NAA 0.2 mg/L+活性炭0.1 g/L为培养基较有利于生根培养. 相似文献
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一品红品种柠檬雪叶片愈伤组织的诱导及再生技术 总被引:3,自引:2,他引:1
以具有黄绿色苞片的一品红品种柠檬雪的叶片为外植体,配以不同浓度的NAA和6-BA组合,对其愈伤组织的诱导及再生进行探讨.研究结果表明,生长素为柠檬雪愈伤组织诱导的主要影响因子,细胞分裂素对愈伤组织生长有促进作用;柠檬雪叶片最适合的愈伤组织诱导培养基为MS+NAA 1.5 mg/L+6-BA 1.0 mg/L,分化培养基为MS+NAA 0.2 mg/L+6-BA 1.0 mg/L,增殖培养基为MS+NAA 0.1 mg/L+6-BA 0.5 mg/L,生根培养基为1/2 MS+NAA 0.5 mg/L. 相似文献
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【目的】建立三褶虾脊兰(Calanthe triplieata)无菌播种快繁技术体系。【方法】以三褶虾脊兰种子为外植体,采用种子→原球茎→完整植株途径,探讨不同组合(0.5mg/L6-BA、0.1mg/LNAA和1.0g/LAC)、附加物[椰汁(CM)、土豆泥、香蕉泥]及基本培养基(花宝1号、1/2花宝1号、MS和1/2MS)对三褶虾脊兰种子萌发、原球茎诱导、增殖、分化、生根的效果,筛选适宜的培养基。【结果】成熟种子在1/2花宝1号+0.5mg/L 6-BA+0.1mg/L NAA+200ml/L CM+1.0g/L AC+20.0g/L蔗糖培养基中培养150d左右可形成原球茎,萌发率超过80%以上;诱导原球茎在1/2MS+100mL/LCM+2.0mg/L6-BA+0.1mg/LNAA+1.0g/LAC+20.0g/L蔗糖培养基上的增殖效果最好,增殖率为4.5;原球茎接种于花宝1号+0.1mg/L6-BA+0.1mg/LNAA+100.0g/L土豆泥+1.0g/LAC+20.0g/L蔗糖培养基上分化培养40d后,再转入花宝1号+0.1mg/LNAA+100.0g/L土豆泥+2.0g/LAC+20.0g/L蔗糖培养基上培养40d,可诱导形成完整植株。在花宝1号培养基中添加NAA和土豆泥或香蕉泥,原球茎生根率均达100.0%,但土豆泥的成本最低。【结论】建立了比较完善的王褶虾脊兰无菌播种和快繁技术体系,为其种质资源保护、种苗繁育以及产业开发提供技术支持。 相似文献
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【目的】建立三褶虾脊兰(Calanthe triplicata)无菌播种快繁技术体系。【方法】以三褶虾脊兰种子为外植体,采用种子→原球茎→完整植株途径,探讨不同组合(0.5 mg/L 6-BA、0.1 mg/L NAA 和 1.0 g/L AC)、附加物[椰汁(CM)、土豆泥、香蕉泥]及基本培养基(花宝1号、1/2花宝1号、MS和1/2MS)对三褶虾脊兰种子萌发、原球茎诱导、增殖、分化、生根的效果,筛选适宜的培养基。【结果】成熟种子在1/2花宝1号+0.5 mg/L 6-BA+0.1 mg/L NAA+200 mL/L CM+1.0 g/L AC+20.0 g/L蔗糖培养基中培养150 d左右可形成原球茎,萌发率超过80%以上;诱导原球茎在1/2MS+100 mL/L CM+2.0 mg/L 6-BA+0.1 mg/L NAA+1.0 g/L AC+20.0 g/L蔗糖培养基上的增殖效果最好,增殖率为4.5;原球茎接种于花宝1号+0.1 mg/L 6-BA+0.1 mg/L NAA+100.0 g/L土豆泥+1.0 g/L AC+20.0 g/L蔗糖培养基上分化培养40 d后,再转入花宝1号+0.1 mg/L NAA+100.0 g/L土豆泥+2.0 g/L AC+20.0 g/L蔗糖培养基上培养40 d,可诱导形成完整植株。在花宝1号培养基中添加NAA和土豆泥或香蕉泥,原球茎生根率均达100.0%,但土豆泥的成本最低。【结论】建立了比较完善的三褶虾脊兰无菌播种和快繁技术体系,为其种质资源保护、种苗繁育以及产业开发提供技术支持。 相似文献
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新疆天山雪莲组培快繁技术的建立 总被引:1,自引:0,他引:1
[目的]探讨新疆天山雪莲组培快繁技术。[方法]以新疆雪莲切除根部的无菌苗,或无菌苗的真叶,或者直接采集野生的新疆雪莲幼嫩部位作外植体,进行愈伤组织诱导培养及丛生芽分化、丛生芽增殖继代培养、生根培养和组培苗移栽试验。[结果]新疆天山雪莲外植体在MS+NAA 2 mg/L+6-BA 0.5 mg/L和MS+6-BA 1.0+NAA 0.1 mg/L+2,4-D 0.1 mg/L培养基上可诱导产生大量的丛生芽;在MS+6-BA 0.5 mg/L+NAA 2.0 mg/L和MS+6-BA 0.5 mg/L+NAA 0.01 mg/L培养基上交替培养,丛生芽继代快速增殖率达1.0∶3.5;组培苗在MS+NAA 0.2 mg/L培养基上诱导生根,生根率达83%;生根的雪莲组培苗经炼苗和移栽后成活,生长健壮。[结论]该研究建立的快繁技术为雪莲野生资源保护和产业化发展开拓了一条有效途径。 相似文献
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[目的]为仙茅的快速繁殖提供借鉴和依据。[方法]以仙茅无菌地下茎段为外植体,在蔗糖浓度为20 g/L,琼脂用量为6.5 g/L,pH值为5.8,温度为25℃的光照条件下,设3组培养基(A愈伤组织诱导培养基MS+6-BA 0-1.0 mg/L+NAA 0-1.0 mg/L,B丛生芽诱导培养基MS+6-BA 0.5-1.5 mg/L+NAA 0.2-0.8 mg/L,C生根培养基MS+IAA 0-0.5 mg/L)进行组培试验。[结果]最适合仙茅的愈伤组织诱导培养基为MS+6-BA 0.2-1.0 mg/L+NAA 0.1-0.6 mg/L;丛生芽分化培养基为MS+6-BA 0.8-1.5 mg/L+NAA0.2-0.5 mg/L;生根培养基为MS+IAA 0.1-0.3 mg/L。仙茅的愈伤组织诱导率为88%-93%,丛生芽诱导率为93%-96%,生根诱导率为92%-96%。[结论]该研究为仙茅地下茎段的组织培养提供了试验参考和理论依据。 相似文献
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[目的]建立大花萱草的花梗组织培养与快速繁殖方法。[方法]以矮化大花萱草的幼嫩花梗为材料,筛选大花萱草快速繁殖中的愈伤组织诱导及丛生芽发生培养基及生根培养基。[结果]MS+2.0~3.0 mg/L 6-BA+0.2~0.3 mg/L NAA、MS+1.0~2.0 mg/L6-BA+0.1~0.2 mg/L NAA及MS和1/2MS+0.2 mg/L NAA培养基分别是愈伤组织诱导、继代培养和生根培养的理想培养基。[结论]该研究所采用的离体培养及簇生苗生根技术,是快速繁殖大花萱草的有效途径,为大花萱草的工厂化生产提供了技术参考。 相似文献
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百合组培快繁技术研究 总被引:6,自引:2,他引:4
以食用百合鳞片作外植体 ,以MS为基本培养基 ,对其组培快繁技术进行了研究。结果表明 ,适宜的芽诱导培养基为MS + 1 .0mg/L 6-BA + 0 .1mg/LNAA + 1 .0mg/LKT ;适宜的快繁培养基为MS + 1 .0mg/L 6-BA + 0 .0 1mg/LNAA + 0 .5mg/LKT ;适宜的生根培养基为MS + 0 .1mg/LIBA ;芽诱导和快繁较适宜的条件为光照 1 6h/d、温度 ( 2 5± 1 )℃ ;在光照 1 2h/d、温度 ( 2 5± 1 )℃条件下较易生根 相似文献
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光叶楮侧芽组培快速繁殖技术研究 总被引:6,自引:0,他引:6
通过对光叶楮侧芽的离体培养和快速繁殖试验,探讨了光叶楮侧芽诱导、分化、不定芽生长分化、快速繁殖及生根的最佳培养条件。同时,还对光叶楮枝条灭菌条件、培养过程中防止玻璃化等问题进行了比较试验。结果表明:适宜光叶楮侧芽诱导的培养基为MS 6-BA2.0mg·L-1 NAA0.5mg·L-1,诱导分化率为80%;适宜不定芽诱导及继代培养的培养基为MS 6-BA1.0mg·L-1 NAA0.5mg·L-1,不定芽分化率为70%,继代倍数达6-7倍;适宜壮苗的培养基为MS 6-BA0.5mg·L-1 NAA0.5mg·L-1;适宜生根的培养基为1/2 MS IBA 1.0 mg·L-1,生根率达100%;适宜壮苗生根同时进行的培养基为MS 6-BA0.05mg·L-1 NAA 0.5 mg·L-1,生根率达100%。 相似文献
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铁炮百合快速繁殖技术研究 总被引:1,自引:0,他引:1
以铁炮百合(Lilium longiflorum)的鳞片尧含苞待放时花蕾下的花梗为外植体,进行诱导生芽、生根的组织培养快速繁殖技术的研究。结果表明:鳞片诱导生芽最适合的初代培养基为MS+6-BA2.0 mg/L+NAA0.1 mg/L+2,4-D0.1mg/L;花梗的诱导生芽最适合的初代培养基为MS+6-BA1.0 mg/L+NAA0.5 mg/L;最佳继代培养基为MS+6-BA3.0mg/L +NAA 0.02 mg/L;最佳生根培养基培养基为1/2MS+6-BA 0.1 mg/L+NAA 1.0 mg/L+活性炭0.1%;生芽率和生根率均可达100%。 相似文献