东方百合试管鳞茎膨大的研究

以东方百合‘S iberia’试管苗为材料,研究了激素种类及其质量浓度、蔗糖浓度、大量元素浓度、低温处理对试管鳞茎形成和膨大的影响。结果表明,低质量浓度NAA有利于提高结鳞茎率;90 g/L蔗糖处理结鳞茎效果最好,所结鳞茎的平均直径为1.59 cm,平均鲜重为2.09 g,但与70 g/L蔗糖处理差异不显著;增加大量元素浓度可以促进鳞茎的形成和膨大,当浓度为2M S时,鳞茎直径最大达2.06 cm,平均直径1.65 cm,平均鲜重2.68g,较处理前的单芽增加了12.8倍;5℃低温处理可使试管苗100%结鳞茎,处理30 d对结鳞茎的效果最好,鳞茎的直径、鲜重平均分别为1.50 cm,2.06 g。     

百合试管鳞茎诱导及膨大技术的研究

以东方百合"Sorbonne"试管苗为材料,研究了蔗糖浓度、大量元素、培养基状态、多效唑和水杨酸浓度对百合试管鳞茎诱导及膨大的影响。结果表明,蔗糖浓度为60 g.L-1时新增鳞茎数最多,鳞茎形成率达75%,蔗糖浓度120g.L-1处理最有利于鳞茎膨大;高浓度的大量元素有利于鳞茎的膨大,而不利于鳞茎的诱导,3MS时形成的鳞茎最大,但鳞茎形成率则下降到14.6%;液体培养基对鳞茎鲜重影响显著;多效唑浓度10mg.L-1处理能促进鳞茎的诱导和膨大;水杨酸处理则能显著提高试管鳞茎的数量。     

百合试管苗快速繁殖技术的研究

对百合鳞片进行了试管快速繁殖研究．结果表明：外植体取样部位影响百合小鳞茎的增殖率,幼嫩的基部增殖率高,而外部、顶部细胞老化的鳞片增殖率低．百合小鳞茎的形成主要靠不定芽的形成．     

金石和伯爵百合鳞茎诱导及膨大研究

为找到适应金石和伯爵百合鳞茎诱导和膨大的最适培养基及光照条件,以金石和伯爵百合的愈伤组织为材料,研究激素、蔗糖和光周期对鳞茎诱导和膨大的影响。结果表明,MS+NAA 1.0 mg/L+6-BA 2.0 mg/L+蔗糖60 g/L是诱导愈伤组织形成小鳞茎的最佳培养基;该培养基可诱导金石组培苗叶片和根直接产生不定芽;30 g/L的蔗糖质量浓度对金石和伯爵百合小鳞茎的增质量效果均好于其他蔗糖浓度下小鳞茎的增质量效果;光环境有利于小鳞茎的膨大。研究可为金石和伯爵2个百合品种的鳞茎商业化生产提供科学参考。     

光暗不同培养条件下植物生长调节剂对亚洲百合鳞茎诱导的影响

以亚洲百合Elite中外层鳞片为外植体,研究了光暗不同培养条件下,苄基腺嘌呤(benzylaminopurine,BA)、萘乙酸(1-naphthlcetic acid,NAA)、蔗糖、活性炭(activated charcoal,AC)、水杨酸(salicylic acid,SA)、多效唑(paclobutrazol,PP333)对试管鳞茎诱导效果及诱导途径的影响.结果表明:小鳞茎共有2种发生途径,1种是从外植体上直接诱导形成小鳞茎,第2种是外植体经诱导产生不定芽,40d后经不定芽基部膨大形成小鳞茎.光培养下小鳞茎的增殖系数高于暗培养,但小鳞茎直径小于暗培养.单因素试验中,蔗糖、AC及PP333均可促进小鳞茎的膨大;AC可以促进小鳞茎品质的提高,在含0.5g· L-1AC的培养基中,诱导出的小鳞茎抱合较紧实.SA可以促进小鳞茎繁殖系数的提高,SA浓度为0.5 μmol· L-1时,小鳞茎诱导率高达96％.多因素试验结果表明,培养基MS+0.5mg· L-1BA+0.6mg·L-1NAA+0.5g·L-1AC+0.5 μmol·L-1SA+5mg·L-1PP333+70g· L-1蔗糖最适合Elite试管鳞茎的生长发育.     

毛百合试管鳞茎形成和膨大的培养优化

以毛百合(Lilium dauricum)试管苗为材料,研究不同浓度活性炭、激素种类、水杨酸、蔗糖等对试管鳞茎形成和膨大的影响,同时比较鳞茎大小对移栽成活率的影响。结果表明,NAA、IBA、多效唑对试管鳞茎形成和膨大都有影响,蔗糖对鳞茎膨大有影响;1.0 g/L活性炭对鳞茎的形成及膨大效果最好,所结鳞茎直径增大2.50倍,鳞茎球形指数1.40,鳞茎鲜质量828.2 mg,结球率达100%,平均新增鳞茎4.40个;水杨酸对鳞茎膨大效果不明显;鳞茎越大(≥8 mm),移栽成活率越高(96%),长势越好。     

不同因子对兰州百合组培小鳞茎诱导及膨大的影响研究

为了缩短兰州百合生长周期,提高百合品质,以兰州百合组培小鳞茎为材料,研究了大量元素、NAA、6-BA、培养基状态、蔗糖、2,4-D等单一因素对百合试管鳞茎形成和膨大的影响。结果表明,高浓度的大量元素有利于鳞茎的膨大,而不利于鳞茎的诱导;大量元素浓度为2MS时鳞茎平均直径最大,但新增鳞茎数下降到4.56个;NAA浓度为0.2 mg/L时新增鳞茎数最多且鳞茎平均直径最大;6-BA浓度为0.1 mg/L时最有利于鳞茎的形成和膨大,新增鳞茎数5.25个,鳞茎平均直径10.642 mm;固体培养基对鳞茎的形成效果明显,而半固体更有利于鳞茎的膨大;蔗糖浓度为90 g/L时新增鳞茎数最多,120 g/L时鳞茎平均直径最大;2,4-D浓度0.02 mg/L处理对鳞茎的形成和膨大效果更好。     

百合试管鳞茎诱导技术研究

通过对百合试管鳞茎诱导的系统研究,建立高效稳定的百合鳞茎诱导体系。以百合鳞片为外植体,分析不同因素对百合鳞茎诱导的难易及快慢程度。结果表明,MS,1/2MS,B5和N6作为基本培养基均能诱导形成小鳞茎,但MS较其他3种更适合诱导鳞茎的形成,且数量多。试验还表明,以不同部位鳞片作外植体,其内层鳞片诱导率最高;NAA浓度为0.5 mg·L-1且6-BA 浓度为1.0 mg·L-1时鳞茎诱导率最高,达78%;同时,百合鳞茎诱导率还受培养时间、不同糖源种类和浓度的影响,培养时间越长诱导率越高,添加30 g·L-1蔗糖诱导效果佳。     

绿花百合组培芽增殖与试管鳞茎膨大的影响因素研究

为优化绿花百合组培芽增殖与试管鳞茎膨大的条件,分析了培养基中蔗糖含量、激素浓度及其配比、硫酸腺嘌呤及水解酪蛋白对绿花百合组培芽增殖的影响,以及蔗糖含量、激素浓度及其配比对试管鳞茎膨大的影响。结果表明:在(23±1)℃和12 h/d光照培养条件下,MS培养基附加0.2 mg/L TDZ、0.2 mg/L NAA、30 mg/L硫酸腺嘌呤、200 mg/L水解酪蛋白和30 g/L蔗糖,有利于绿花百合增殖,增殖系数为5.59;适宜绿花百合鳞茎膨大的最佳培养基为MS附加0.5 mg/L 6-BA、0.3 mg/L NAA及60 g/L蔗糖。因此,蔗糖浓度及温度过高或过低均不利于绿花百合组培芽增殖,光培养下绿花百合组培芽增殖系数高于暗培养,添加适宜浓度的水解酪蛋白对不定芽的分化有良好的促进作用,并且细胞分裂素和生长素协同作用对组培芽增殖和鳞茎膨大有显著的促进作用。     

东方百合明星无性快繁体系的建立（英文）

【目的】以东方百合品种明星无菌叶为材料建立快繁体系,为其种球产业化生产提供技术支撑。【方法】以花器官培养获得的无菌小鳞片及叶片为材料,以添加不同浓度6-BA、2,4-D的MS培养基诱导不定芽及小鳞茎产生;以不同浓度的蔗糖诱导小鳞茎的膨大及根的产生;以珍珠岩、草炭、蛭石的混合基质作为小鳞茎移栽基质。【结果】用6-BA诱导无菌小鳞片产生不定芽时以1.5 mg/L为宜,诱导率为75.0%;用2,4-D诱导无菌叶片产生小鳞茎时以2.0mg/L为宜,诱导率为91.7%;添加70.0 g/L蔗糖的MS培养基适宜小鳞茎膨大及根的产生;带小鳞茎及根的组培苗在珍珠岩:草炭:蛭石=1:1:1的基质中移栽成活率最高,达100.0%。【结论】东方百合品种明星可利用无菌叶片建立无性快繁体系。     

东方百合明星无性快繁体系的建立

【目的】以东方百合品种明星无菌叶为材料建立快繁体系,为其种球产业化生产提供技术支撑。【方法】以花器官培养获得的无菌小鳞片及叶片为材料,以添加不同浓度6-BA、2,4-D的MS培养基诱导不定芽及小鳞茎产生;以不同浓度的蔗糖诱导小鳞茎的膨大及根的产生;以珍珠岩、草炭、蛭石的混合基质作为小鳞茎移栽基质。【结果】用6-BA诱导无菌小鳞片产生不定芽时以1.5 mg/L为宜,诱导率为75.0%;用2,4-D诱导无菌叶片产生小鳞茎时以2.0 mg/L为宜,诱导率为91.7%;添加70.0 g/L蔗糖的MS培养基适宜小鳞茎膨大及根的产生;带小鳞茎及根的组培苗在珍珠岩∶草炭∶蛭石=1∶1∶1的基质中移栽成活率最高,达100.0%。【结论】东方百合品种明星可利用无菌叶片建立无性快繁体系。     

百合试管小鳞茎高效再生体系的研究

以百合试管鳞茎诱导丛生芽,适宜诱导的培养基为MS+ 2.0 mg/L 6-BA+ 0.1 mg/L NAA+ 30 g/L蔗糖+5500 mg/L琼脂,光照强度1 500 ～2 000 lx.芽长至1～2 cm时,转入鳞茎分化培养基,适宜的鳞茎分化培养基为MS+1.0 mg/L NAA+ 90 g/L蔗糖+300 mg/L活性炭+5500mg/L琼脂,黑暗条件.提高培养基中的糖浓度可以提高百合再生小鳞茎的重量;在培养基中添加活性炭可提高再生小鳞茎形态的正常率.     

兰州百合鳞茎再生繁殖体系的建立

[目的]建立兰州百合鳞茎快繁体系,并测定丛芽与鳞茎的淀粉含量,为系统研究兰州百合鳞茎离体再生过程中淀粉的代谢奠定基础.[方法]以兰州百合鳞片为外植体,探讨不同消毒剂组合、激素与蔗糖用量对鳞茎诱导培养过程的影响.[结果]随着75％乙醇（10～30 s）与0.1％升汞消毒时间（7～10min）的延长,外植体鳞片污染数不断下降,但诱导芽数表现为先上升后下降的趋势,以75％乙醇消毒30 s＋0.1％升汞消毒10 min组合的消毒效果最好,外植体污染率和芽诱导率分别为12.33％和91.00％.使用1000倍多菌灵处理10 min后,再使用75％乙醇30 s ＋0.1％升汞7～13 min组合进行消毒,可明显降低鳞片污染率3.00％～5.00％（绝对值）.在MS＋0.03 mg/L NAA＋30.0 g/L蔗糖＋5.0 g/L琼脂培养基中添加6-BA 0.5～1.0 mg/L,可显著提高平均芽诱导数;在MS＋5.0 g/L琼脂培养基中添加30.0～60.0 g/L蔗糖,对外植体芽诱导无明显影响;培养基MS＋1.0 mg/L 6-BA＋0.03 mg/L NAA＋30.0 g/L蔗糖＋5.0 g/L琼脂是外植体芽诱导的最适培养基.MS＋0.50 mg/L 6-BA＋0.03 mg/L NAA＋30.0 g/L蔗糖＋5.0 g/L琼脂为适宜增殖培养基,芽增殖系数达最高,为3.67.在MS培养基中添加60.0～90.0 g/L蔗糖可明显促进鳞茎的形成,以添加90.0 g/L蔗糖处理的鳞茎重量最高（99.30mg）.小鳞茎的淀粉质量分数比丛芽增加62.34％.[结论]以鳞片为外植体建立的兰州百合鳞茎再生繁殖体系具有可行性;在丛芽至小鳞茎形成阶段淀粉含量明显升高,小鳞茎的形成与淀粉含量升高密切相关.     

兰州百合与川百合试管苗结鳞茎研究

以兰州百合与川百合组培苗为材料进行了试管内结鳞茎的诱导研究，结果表明：兰州百合试管内诱导形成鳞茎的最适培养基为1／2MS＋0．5mg／LIBA，平均每株结鳞茎数可达3．1个，鳞茎平均直茎为1．0cm，鳞茎形成部位在试管苗的底部。川百合试管内诱导形成鳞茎的最适培养基为1／2MS＋1．0mg／LIAA，平均每株结鳞茎数为1个，鳞茎平均直茎为0．7cm，鳞茎形成部位在试管苗的顶端。     

蔗糖和光周期在泸定百合试管鳞茎膨大中的作用机制

为研究蔗糖和光周期对泸定百合试管鳞茎膨大的影响及其交互作用,解释两者在鳞茎膨大过程中的作用机制,以泸定百合种球鳞片为外植体诱导形成的无菌丛芽为材料,采用不同质量浓度(30、60、90g/L)蔗糖与不同光周期(0、8、12、16、24h/d)的组合处理,测定鳞茎发生和膨大的形态指标及其内源性糖含量与相关酶活性的变化.结果显示:1)在蔗糖质量浓度为60g/L、光周期为8h/d组合处理下,鳞茎膨大效果最好,与全黑暗处理间无显著差异.2)在30g/L蔗糖和各光照时间处理下,蔗糖含量变化趋势为W型,果糖和葡萄糖含量变化趋势为M型;而在60和90g/L蔗糖处理下,蔗糖含量呈先下降后升高再下降趋势,果糖和葡萄糖含量变化趋势与蔗糖含量变化趋势相反.3)在不同质量浓度蔗糖处理下,蔗糖磷酸合成酶活性的变化趋势与蔗糖含量变化趋势基本一致,而蔗糖合成酶活性的变化趋势与蔗糖含量变化趋势相反.综上,蔗糖质量浓度和光周期对试管小鳞茎的发生和膨大存在交互作用,但蔗糖对百合鳞茎生长与膨大影响更大,是造成鳞茎诱导及膨大的主要因子;蔗糖合成酶参与蔗糖分解代谢过程,而蔗糖磷酸合成酶参与蔗糖积累过程;蔗糖不仅在膨大过程中扮演了生理角色,还可能扮演了糖信号角色,并且这些过程都受到严格的浓度调控.在生产中,推荐的最适组合为蔗糖质量浓度60g/L,光周期0h/d.     

兰州百合试管小鳞茎膨大及碳水化合物变化规律研究

为了探明兰州百合小鳞茎的生长及膨大规律，以添加不同浓度蔗糖处理为依据，明确小鳞茎生根膨大培养基以1/2MS+0.2 mg/L NAA +70 g/L蔗糖为最适。在此浓度基础上对兰州百合试管小鳞芽进行1次和2次膨大培养，分别在培养30、50、70、90 d时测定小鳞茎鲜重、干重、糖及淀粉含量。结果表明，随着培养天数的增加，兰州百合1次和2次膨大小鳞茎单粒鲜重和干重均呈增加趋势，且2次膨大较1次膨大效果显著。1次膨大小鳞茎可溶性糖、果糖和淀粉含量均随培养天数的增加呈先增加后降低的趋势，且变化趋势基本一致；蔗糖含量随着培养天数的增加呈上升趋势，与培养30 d相比，培养50～90 d时蔗糖含量明显增加，且达极显著差异。随培养天数的增加，2次膨大小鳞茎可溶性糖和蔗糖含量变化趋势较平缓，各培养时期差异不明显；果糖含量呈降低趋势，与培养30 d相比，培养50～90 d时果糖含量显著降低；淀粉含量呈增加趋势，在培养90 d时达最大值。     

茉莉酸甲酯对组培"Mona"百合鳞茎及鳞片叶生长的影响

[目的]研究茉莉酸甲酯对组培“Mona”百合鳞茎及鳞片叶生长的影响,以解决亚洲系统百合在试管鳞茎培养过程中鳞片生长过旺的问题。[方法]以亚洲型“Mona”百合试管鳞茎、鳞片的切片为外植体,研究茉莉酸甲酯对鳞片叶及鳞茎生长的影响。[结果]茉莉酸甲酯对“Mona”试管百合鳞片叶生长有抑制作用,浓度越高其效果越明显;当茉莉酸甲酯浓度为1．0μmol／L时,鳞片叶发生率（87．9％）明显低于对照（100．0％）。但鳞茎分化和生长也显著好于对照;但茉莉酸甲酯浓度超过3．0μmol／L时,不仅对鳞片叶而且对鳞茎生长也有抑制效果。[结论]在“Mona”百合试管鳞茎培养的培养基中加入1．0μmol／L的茉莉酸甲酯时即可抑制鳞片叶生长也可促进鳞茎膨大生长。     

低温层积与外源激素对百合试管小鳞茎活力的影响

采用外源激素单独和复合渗透处理,研究在低温层积条件下对百合小鳞茎活力的影响,结果表明:外源激素处理能显著提高小鳞茎的活力表达,且含有GA3成分的复合处理较其他处理效果明显。采取IAA 100 mg/L+6-BA 100 mg/L+GA350 mg/L对百合试管小鳞茎进行渗调处理,同时在2℃条件下层积时间超过120 d,能极大改善百合小鳞茎的发芽率、芽干重和活力表达,促进百合试管小鳞茎的田间应用。     

百合顶芽离体诱导小鳞茎及开花球培育

以亚洲百合顶芽为外植体,进行了离体诱导小鳞茎及小鳞茎培育开花球研究。结果表明：在BA1～2mg／L N从0．1～0．2mg／L MS培养基上,顶芽培养产生丛芽的诱导率高达100％。丛芽在MS BA0．5mg／L NAA0．05～0．1mg／L培养基上不断增殖,并逐渐发育成无根苗,增殖系数为6。激素、蔗糖、光照强度及低温处理等因素影响小鳞茎诱导,丛芽在MS IBA0．5mg／L 质量分数为4％蔗糖培养基上,光照强度1．5klx时,诱导形成小鳞茎效果较好,诱导率100％,平均每株诱导小鳞茎1．5个,小鳞茎直径0．96cm。小鳞茎经5℃低温处理2周后,在BA0．1mg／L NAA0．5mg／L MS培养基中诱导出小鳞茎,诱导率82．5％,每块鳞茎片诱导4．2个小鳞茎,直径0．29cm。直径0．8cm以上试管鳞茎,经过5～8℃低温处理4周后,在福建省南平海拔800m处栽培8个月,收获的种球中45．8％达到开花球标准。试管鳞茎开花性状稳定。     

用正交试验法优化香水百合试管鳞茎的诱导

通过正交试验研究了不同浓度(0～0.5 mg/L) NAA、不同浓度(0.5～2.0 mg/L) 6-BA、不同鳞片层次(外层、中层、内层)及不同鳞片部位(上部、中部、基部)对香水百合试管鳞茎诱导的影响,并优化了诱导试管鳞茎的组织培养条件。结果表明:各因素对诱导试管鳞茎的影响大小为NAA6-BA鳞片层次鳞片部位;试管鳞茎诱导的最佳组合条件是MS基本培养基+0.1 mg/L NAA+2.0 mg/L 6-BA+中层鳞片+鳞片中部部位,在此条件下诱导香水百合试管鳞茎,诱导率达到100%,平均分化数达到4.89。