三褶虾脊兰无菌播种快繁技术研究

【目的】建立三褶虾脊兰（Calanthe triplicata）无菌播种快繁技术体系。【方法】以三褶虾脊兰种子为外植体,采用种子→原球茎→完整植株途径,探讨不同组合（0.5 mg/L 6-BA、0.1 mg/L NAA 和 1.0 g/L AC）、附加物［椰汁（CM）、土豆泥、香蕉泥］及基本培养基（花宝1号、1/2花宝1号、MS和1/2MS）对三褶虾脊兰种子萌发、原球茎诱导、增殖、分化、生根的效果,筛选适宜的培养基。【结果】成熟种子在1/2花宝1号+0.5 mg/L 6-BA+0.1 mg/L NAA+200 mL/L CM+1.0 g/L AC+20.0 g/L蔗糖培养基中培养150 d左右可形成原球茎,萌发率超过80%以上;诱导原球茎在1/2MS+100 mL/L CM+2.0 mg/L 6-BA+0.1 mg/L NAA+1.0 g/L AC+20.0 g/L蔗糖培养基上的增殖效果最好,增殖率为4.5;原球茎接种于花宝1号+0.1 mg/L 6-BA+0.1 mg/L NAA+100.0 g/L土豆泥+1.0 g/L AC+20.0 g/L蔗糖培养基上分化培养40 d后,再转入花宝1号+0.1 mg/L NAA+100.0 g/L土豆泥+2.0 g/L AC+20.0 g/L蔗糖培养基上培养40 d,可诱导形成完整植株。在花宝1号培养基中添加NAA和土豆泥或香蕉泥,原球茎生根率均达100.0%,但土豆泥的成本最低。【结论】建立了比较完善的三褶虾脊兰无菌播种和快繁技术体系,为其种质资源保护、种苗繁育以及产业开发提供技术支持。     

蝴蝶兰组培快繁技术研究

通过组织培养的方法诱导蝴蝶兰花梗上的腋芽萌发,可以得到无菌的蝴蝶兰不定芽。以不定芽上的幼叶为外植体,建立蝴蝶兰的无菌培养体系。结果表明:诱导腋芽萌发的培养基为MS+5 mg/L 6-BA;利用幼叶进行原球茎诱导的最佳培养基为MS+5 mg/L 6-BA+0.5 mg/L NAA+0.1 g/L活性炭(AC)+150 mL/L椰汁(CM);原球茎增殖的培养基为3 g/L花宝一号(HyponexNo.1)+5 mg/L 6-BA+1 mg/L NAA+150 mL/L CM;生根培养基为3 g/L Hyponex No.1+0.1 mg/L6-BA+1 mg/L NAA+0.5 g/L AC+100 mL/L土豆汁。     

蝴蝶兰小麻雀的组培快繁技术

以蝴蝶兰小麻雀花梗为外植体培养成的原球茎为材料,研究不同培养基、生长调节剂和外源添加物对其增殖、分化和壮苗生根的影响。结果表明,原球茎增殖的最佳配方为1/2 MS+8.0 mg/L 6-BA+0.5 mg/L蛋白胨+25 g/L蔗糖+5.2 g/L琼脂,增殖系数最高(2.62);原球茎分化的最佳配方为2.0 g/L花宝1号+0.2 mg/L 6-BA+0.1 mg/LNAA+100 m L/L椰汁+25 g/L蔗糖+5.2 g/L琼脂,分化率100%,平均叶片数为3.54张/株,平均株高4.04 cm;最适合蝴蝶兰根诱导的培养基配方为2.0 g/L花宝1号+1.5 mg/L 6-BA+0.05 mg/L NAA+100 mg/L香蕉+25 g/L蔗糖+5.2 g/L琼脂,在该培养基上生根率100%,生根数最多(3.52条),平均根长最长(35.37 mm)。     

翅萼石斛组织培养及快繁技术研究

以翅萼石斛蒴果为外植体,通过对其种子无菌萌发和原球茎诱导、原球茎增殖及丛生芽诱导、生根壮苗以及移栽驯化的研究,建立翅萼石斛的组培快繁技术体系。结果表明:翅萼石斛种子萌发和原球茎诱导的最佳培养基为MS+6-BA 1.0 mg/L+NAA 0.1 mg/L+蔗糖20 g/L;原球茎增殖和丛生芽诱导的最佳培养基为MS+6-BA 1.0 mg/L+NAA 0.1 mg/L+蔗糖20g/L+活性碳1.0g/L,接种45 d后增殖系数约5.8个、生长情况良好;生根壮苗的培养基配方为MS+6-BA 1.0 mg/L+KT 0.5 mg/L+NAA 0.2 mg/L+蔗糖30 g/L+香蕉泥100 g/L+活性碳1.0 g/L,生根率达100%,根系及幼苗长势良好。桂林地区移栽驯化宜在3~4月进行,选择水苔做基质,60 d后成活率为76.7%。     

素花虎头兰×黄蝉兰F_1代原球茎再生体系的建立

以素花虎头兰×黄蝉兰F_1代的原球茎、茎尖和叶片基部为材料,在无菌条件下研究不同激素配比对原球茎受体系统建立的影响。结果发现,以原球茎为材料诱导增殖原球茎的效果明显优于以茎尖和叶片基部为材料诱导增殖原球茎的效果,最佳培养基为1/2MS+1. 0 mg/L 6-BA+0. 5 mg/L NAA+1. 5 g/L花宝1号+0. 5 g/L炭粉+80 g/L香蕉泥,增殖倍数为4. 5倍,最佳分化培养基为1/2MS+2. 0 mg/L 6-BA+0. 1 mg/L NAA+0. 1 mg/L KT+1. 5 g/L花宝1号+0. 5 g/L炭粉+80 g/L香蕉泥,分化率为38. 80%,且原球茎浓绿色和长势健壮;最佳生根培养基为1/2MS+0. 3 mg/L 6-BA+1. 5 mg/L NAA+1. 5 g/L花宝1号+0. 5 g/L炭粉+80 g/L香蕉泥,生根率达到100%,平均株根数为4. 69条,平均根长为7. 31 cm,植株长势健壮,叶片浓绿。     

蜻蜓凤梨叶片组织培养植株再生的研究

以蜻蜓凤梨试管苗叶片为外植体进行离体再生研究。结果表明,叶片诱导直接分化不定芽的最佳培养基是MS+BA 5.0 mg/L+IBA 1.5 mg/L,分化率高达80%。增殖培养基为MS+BA 0.5 mg/L+NAA 0.2 mg/L。壮苗培养基为MS+NAA 2.0 mg/L。生根培养基为MS+NAA 2.0 mg/L+AC 0.5 g/L,生根率达100%。     

春石斛的组织培养和快速繁殖研究

试验结果表明:春石斛不定芽诱导、增殖的最佳培养基为1/2MS+6-BA1 mg/L+NAA 1 mg/L+香蕉泥100 g/L;原球茎诱导的培养基以1/2MS+NAA最佳;不加任何生长调节剂的1/2MS培养基最适宜原球茎的增殖;原球茎分化的最适基本培养基为1/2MS;最适宜的壮苗生根培养基为1/2MS+NAA2 mg/L+香蕉泥100 g/L。     

大花蕙兰高频再生体系的建立

以大花蕙兰的不同部位作外植体,对其启动诱导;采用正交试验设计等方法筛选大花蕙兰类原球茎诱导、增殖与生根壮苗的最佳培养基。结果表明:在大花蕙兰离体再生过程中,侧芽是最容易启动的外植体;MS 6-BA 1.0 mg/L NAA 0.1 mg/L AC 0.1 g/L是类原球茎诱导的最佳培养基;1/2MS 6-BA 1.0 mg/L NAA 0.1 mg/L是类原球茎增殖和幼苗分化的最适宜培养基;芽分化后,在1/2MS NAA 1.0 mg/L GA31.0 mg/L 香蕉泥150 g/L培养基中生根壮苗效果最好。     

大花蕙兰组织培养快繁技术

对大花蕙兰进行组织培养研究表明:适合供试品种原球茎诱导培养基为MS+BA1.0+NAA0.01+Acc0.3%;原球茎增殖培养基为MS+BA1.0+NAA0.1+Acc0.3%;萌芽壮苗培养基为MS+BA2.0+NAA0.1+Acc0.3%;生根培养基为MS+NAA1.0;移栽基质为1/4沙土+1/4草炭+1/4腐殖土+1/4松针。     

添加物和植物生长调节剂对铁皮石斛离体快速繁殖的影响

以铁皮石斛未成熟种子为外植体,在离体条件下进行原球茎诱导,类原球茎增殖、分化、生根试验研究。结果表明,以种子萌发直接诱导原球茎的适宜培养基为MS+1.0mg/L BA+0.5mg/L NAA+0.5g/L活性炭(AC)+1.0g/L水解酪蛋白(CH),诱导率达95%以上。在MS+1.0mg/L BA+0.5mg/L KT+0.5mg/L NAA+0.5g/L AC+0.6g/L CH条件下可获得类原球茎最大增殖系数(达18.7),该培养基也适宜于维持类原球茎的增殖保存。类原球茎的最大分化率为93.7%,所需的培养基成分为MS+0.5mg/L BA+0.5mg/L KT+0.2mg/L NAA+0.5g/L AC+0.6g/L CH。试管苗在1/2 MS+0.5mg/L NAA+0.5g/L AC培养基上生根率达100%,且根系健壮发达,移栽后全部成活,长势良好。     

不同培养基组分对带叶兜兰离体培养效果的影响

【目的】探讨适宜带叶兜兰(Paphiopedilumhirsutissimum)离体培养的培养基组分,为规模化生产带叶兜兰组培苗提供技术支持。【方法】以带叶兜兰组培苗为外植体,筛选适合其丛生芽诱导、增殖和壮苗生长的基本培养基、附加物种类和生长激素组合。【结果】初步筛选出较适宜带叶兜兰丛生芽诱导的培养基为1/2MS+3.0 mg/L BA+0.1 mg/L NAA+80.0 g/L香蕉汁+2.0 g/L活性炭,其诱导率较高,为36.1%,且丛生芽诱导出芽较多;丛生芽增殖培养基为1/2MS+0.1 mg/L TDZ+3.0 mg/L 2,4-D+80.0 g/L香蕉汁+2.0 g/L活性炭,其增殖系数为2.02,芽生长较快;壮苗生长最适宜培养基为1.0 g/L花宝1号+1.0 g/L花宝2号+MS培养基的有机、微量成分+1.0 mg/L NAA+2.0 g/L活性炭+80.0 g/L香蕉汁+1.5 g/L蛋白胨,其幼苗生长较好,生物量大,生根率达75.5%。【结论】在1/2MS+3.0 mg/L 6-BA+0.1 mg/L NAA+2.0 g/L活性炭培养基中添加香蕉汁较适宜带叶兜兰丛生芽诱导和增殖培养;在1/2MS+80.0 g/L香蕉汁培养基中添加0.1 mg/L TDZ+3.0 mg/L 2,4-D对带叶兜兰的增殖效果较佳;花宝改良培养基适宜带叶兜兰壮苗培养,结合添加NAA和活性炭培养效果更佳,但活性炭浓度不宜过高。     

绿叶朱蕉组培快繁技术研究

以绿叶朱蕉的茎段为外植体,进行快繁技术研究,筛选出最佳的材料部位、消毒方法以及培养基.结果表明,采用带顶芽茎段,0.05%升汞处理8 min,消毒效果最理想;诱导培养基:MS+5.0 mg/LBA+3.0 g/L花宝1号;增殖培养基:MS+2.0 mg/LBA+NAA 0.1 mg/L;生根培养基:MS+NAA 1.0 mg/L.     

血叶兰的无菌播种与快速繁殖（英文）

[目的]研究野生中药资源血叶兰的无菌播种技术,实现其快速繁殖。[方法]以血叶兰种子为外植体,接种于4种不同的培养基MS、1/2MS、花宝1号(3.0 g/L)和1/2花宝1号(1.5g/L),80 d后统计萌发率,筛选适合血叶兰种子萌发的培养基。在培养基中添加不同激素配比,不同的有机物等,筛选适宜血叶兰原球茎增殖与分化、壮苗与生根的培养基。[结果]成熟血叶兰种子在1/2花宝1号(1.5 g/L)培养基中暗培养80 d左右形成原球茎团,萌发率为86.67%,是最适于血叶兰种子萌发的培养基;而种子萌发效果较差的是MS培养基。在1/2花宝1号(1.5 g/L)+6-BA 2.0 mg/L+椰汁100ml/L培养基中添加NAA 0.4-0.6 mg/L,原球茎团转接培养45 d左右形成原球茎和小芽的混合体,最高增殖倍数为6.11倍,增殖效果显著优于添加NAA 0.2和0.8 mg/L的培养基(P0.05)。将培养获得的小芽转接至分别添加10%土豆汁、10%香蕉汁和100 ml/L椰汁的花宝1号(3.0 g/L)+NAA 1.0 mg/L+培养基中进行壮苗和生根培养,结果表明添加香蕉汁10%的培养效果最佳,培养80 d后可形成完整植株,幼苗生根率为93.33%,株高7.19 cm。经温室大棚炼苗10 d后,将血叶兰试管苗移栽至泥炭土与1 cm火山石(3∶1)的混合基质中,60 d后成活率达91.7%。[结论]该研究以血叶兰种子为外植体所建立的血叶兰无菌播种育苗技术体系可用于血叶兰的种质资源保护、种苗生产及产业化开发等。     

大花蕙兰再生体系建立的研究

[目的]研究并建立大花蕙兰再生体系。[方法]用75%酒精和0.1%升汞进行表面灭菌,以MS为基本培养基,采用L9(33)正交试验设计进行类原球茎增殖的优选,以继代培养40 d后的增殖系数及幼苗分化率为考察指标。[结果]在大花蕙兰离体再生过程中,侧芽是最容易启动的外植体;MS+6-BA 1.0 mg/L+NAA 0.1 mg/L+AC 0.1 g/L是类原球茎诱导的最佳培养基;1/2 MS+6-BA 1.0 mg/L+NAA 0.1 mg/L是类原球茎增殖和幼苗分化的最适宜培养基;芽分化后,待长至2~3 cm时,小心切下接入1/2 MS+NAA 1.0 mg/L+GA31.0 mg/L+香蕉泥150 g/L培养基中生根壮苗效果最好。[结论]为规模化生产提供依据。     

紫花山柰的组培快繁研究

以紫花山柰无菌苗的芽基部为外植体,对芽基部进行继代增殖、丛生芽诱导以及生根培养基的筛选,建立了紫花山柰无菌苗芽基部的组培快繁体系。结果表明:紫花山柰无菌苗芽基部继代增殖比较合适的培养基为MS+6-BA 8~12 mg/L+NAA 0~0.1 mg/L+椰汁10%+白砂糖30 g/L+卡拉胶粉10 g/L,最佳继代增殖培养基为MS+6-BA 8 mg/L+NAA 0.1 mg/L+椰汁10%+白砂糖30 g/L+卡拉胶粉10 g/L;丛生芽诱导较合适的培养基为MS+6-BA 3~5 mg/L+NAA 0.05~0.1 mg/L+椰汁10%+白砂糖30 g/L+卡拉胶粉10 g/L,最佳的丛生芽诱导培养基为MS+6-BA 3 mg/L+NAA 0.05 mg/L+椰汁10%+白砂糖30 g/L+卡拉胶粉10 g/L;生根较佳的培养基为MS+NAA0.1 mg/L+香蕉泥10~15%+活性炭0.5~1.0 g/L+白砂糖30 g/L+卡拉胶粉9.5 g/L。     

矮生沿阶草茎尖离体培养及其植株再生

以矮生沿阶草幼嫩茎尖为外植体,进行愈伤组织、丛生芽诱导以及壮苗、生根培养基筛选对比研究,建立矮生沿阶草组培快繁体系。结果表明,采用MS+0.1 mg/L BA+0.1 mg/L KT+1.0 mg/L NAA或MS+0.2 mg/L BA+0.05 mg/L KT+1.0 mg/L NAA,愈伤组织诱导率96%以上,愈伤组织致密、淡黄色;将诱导的愈伤组织接种于MS+2.5 mg/L BA+0.5 mg/L KT+0.2 mg/L NAA或MS+3.0 mg/L BA+0.05 mg/L KT+0.1 mg/L NAA或MS+2.0 mg/L BA+0.1 mg/L KT+0.1 mg/L NAA培养基中,可分化出较多的丛生芽;丛生芽接种于MS+2.5 mg/L BA+0.1~0.2 mg/L NAA培养基中进行壮苗培养,幼苗生长健壮、色泽良好;适宜矮生沿阶草组培苗生根的培养基为1/4 MS+0.2 mg/L NAA,外观表现良好。     

紫花山奈的组培快繁研究

以紫花山柰无菌苗的芽基部为外植体,对芽基部进行继代增殖、丛生芽诱导以及生根培养基的筛选,建立了紫花山柰无菌苗芽基部的组培快繁体系。结果表明:紫花山柰无菌苗芽基部继代增殖比较合适的培养基为MS+6-BA 8~12 mg/L+NAA 0~0.1 mg/L+椰汁10%+白砂糖30 g/L+卡拉胶粉10 g/L,最佳继代增殖培养基为MS+6-BA 8 mg/L+NAA 0.1 mg/L+椰汁10%+白砂糖30 g/L+卡拉胶粉10 g/L;丛生芽诱导较合适的培养基为MS+6-BA 3~5 mg/L+NAA 0.05~0.1 mg/L+椰汁10%+白砂糖30 g/L+卡拉胶粉10 g/L,最佳的丛生芽诱导培养基为MS+6-BA 3 mg/L+NAA 0.05 mg/L+椰汁10%+白砂糖30 g/L+卡拉胶粉10 g/L;生根较佳的培养基为MS+NAA0.1 mg/L+香蕉泥10~15%+活性炭0.5~1.0 g/L+白砂糖30 g/L+卡拉胶粉9.5 g/L。     

蝴蝶兰外植体诱导分化与培养基筛选技术研究

以蝴蝶兰的花梗为外植体,采用不同的培养基进行诱导分化、增殖生根试验。结果表明:蝴蝶兰诱导培养基MS+6-BA 3.0 mg/L+花宝1号1.0 g/L+柠檬酸30 mg/L、分化培养基MS+6-BA 5.0 mg/L+NAA 0.5 mg/L+椰子汁10%+柠檬酸30 mg/L、生根培养基1/2MS+6-BA 0.1mg/L+NAA 0.3 mg/L+柠檬酸30 mg/L是筛选的最合适的培养基。     

血叶兰的无菌播种与快速繁殖

[目的]研究野生中药资源血叶兰的无菌播种技术,实现其快速繁殖.[方法]以血叶兰种子为外植体,接种于4种不同的培养基MS、1/2MS、花宝1号(3.0 g/L)和1/2花宝1号(1.5g/L),80 d后统计萌发率,筛选适合血叶兰种子荫发的培养基.在培养基中添加不同激素配比,不同的有机物等,筛选适宜血叶兰原球茎增殖与分化、壮苗与生根的培养基.[结果]成熟血叶兰种子在1/2花宝1号(1.5g/L)培养基中暗培养80 d左右形成原球茎团,萌发率为86.67％,是最适于血叶兰种子萌发的培养基;而种子萌发效果较差的是MS培养基.在1/2花宝1号(1.5 g/L)+6-BA 2.0 mg/L+椰汁100ml/1培养基中添加NAA 0.4-0.6 mg/L,原球茎团转接培养45 d左右形成原球茎和小芽的混合体,最高增殖倍数为6.11倍,增殖效果显著优于添加NAA 0.2和0.8 mg/L的培养基(P＜0.05)将培养获得的小芽转接至分别添加10％土豆汁、10％香蕉汁和100 ml/L椰汁的花宝1号(3.0 g/L)+NAA l.0 mg/L+培养基中进行壮苗和生根培养,结果表明添加香蕉汁10％的培养效果最佳,培养80 d后可形成完整植株,幼苗生根率为93.33％,株高7.19 cm.经温室大棚炼苗l0d后,将血叶兰试管苗移栽至泥炭土与1 cm火山石(3∶1)的混合基质中,60 d后成活率达91.7％.[结论]该研究以血叶兰种子为外植体所建立的血叶兰无菌播种育苗技术体系可用于血叶兰的种质资源保护、种苗生产及产业化开发等.     

中国兰原球茎诱导及组培快繁技术研究

本研究以中国兰为试验材料建立中国兰组培快繁体系，对无菌体系建立、原球茎诱导、原球茎增殖、形成完整植株、驯化移栽等进行了系统研究。结果表明，最佳的消毒处理组合为10%漂白粉上清液浸泡15 min、70%乙醇浸泡30 s、0.1%氯化汞溶液浸泡3 min；原球茎最佳诱导培养基为MS+6-BA 0.5 mg/L+NAA 0.5 mg/L+蔗糖25.0 g/L+琼脂7.0 g/L，其诱导率为100%；原球茎最佳增殖培养基为1/2MS+6-BA 0.25 mg/L+NAA 0.5 mg/L+蔗糖15.0 g/L，其增殖系数为15.3；最佳生根培养基为1/2MS+NAA 0.5 mg/L+蔗糖15.0 g/L+琼脂10.0 g/L+活性炭5.0 g/L，生根率达100%，生根数5.42；采用移栽驯化基质体积配比为沙子∶草碳土（或腐殖土）是1∶1，组培苗移栽成活率达93.33%。