紫花山柰的组培快繁研究

以紫花山柰无菌苗的芽基部为外植体,对芽基部进行继代增殖、丛生芽诱导以及生根培养基的筛选,建立了紫花山柰无菌苗芽基部的组培快繁体系。结果表明:紫花山柰无菌苗芽基部继代增殖比较合适的培养基为MS+6-BA 8~12 mg/L+NAA 0~0.1 mg/L+椰汁10%+白砂糖30 g/L+卡拉胶粉10 g/L,最佳继代增殖培养基为MS+6-BA 8 mg/L+NAA 0.1 mg/L+椰汁10%+白砂糖30 g/L+卡拉胶粉10 g/L;丛生芽诱导较合适的培养基为MS+6-BA 3~5 mg/L+NAA 0.05~0.1 mg/L+椰汁10%+白砂糖30 g/L+卡拉胶粉10 g/L,最佳的丛生芽诱导培养基为MS+6-BA 3 mg/L+NAA 0.05 mg/L+椰汁10%+白砂糖30 g/L+卡拉胶粉10 g/L;生根较佳的培养基为MS+NAA0.1 mg/L+香蕉泥10~15%+活性炭0.5~1.0 g/L+白砂糖30 g/L+卡拉胶粉9.5 g/L。     

小花山奈的组培快繁

以小花山柰无菌苗的芽基部为外植体,对芽基部进行继代增殖、丛生芽诱导以及生根培养基的筛选,建立了小花山柰无菌苗芽基部的组培快繁体系。结果表明:小花山柰无菌苗芽基部继代增殖比较合适的培养基为MS+6-BA 8.0~10.0 mg/L+NAA 0~0.10 mg/L+椰汁10%+白砂糖30 g/L+卡拉胶粉10 g/L,最佳的继代增殖培养基为MS+6-BA 8.0 mg/L+椰汁10%+白砂糖30 g/L+卡拉胶粉10 g/L;丛生芽诱导比较合适的培养基为MS+6-BA 3.0~5.0 mg/L+NAA 0.05~0.10 mg/L+椰汁10%+白砂糖30 g/L+卡拉胶粉10 g/L,最佳的丛生芽诱导培养基为MS+6-BA 3.0 mg/L+NAA 0.05 mg/L+椰汁10%+白砂糖30 g/L+卡拉胶粉10 g/L;生根最佳的培养基为MS+NAA 0.10 mg/L+香蕉泥15%+活性炭1 g/L+白沙糖30 g/L+卡拉胶粉9.5 g/L。     

海南三七根茎芽基部的组培快繁

以海南三七根茎芽基部为外植体,对根茎芽基部进行初代诱导、继代增殖、生根壮苗培养,并对其组培苗移栽基质进行筛选,建立海南三七根茎芽基部的组培快繁技术体系。结果表明:根茎芽基部最佳诱导培养基为MS+6-BA 3.0 mg/L+NAA 0.10 mg/L+3%蔗糖+卡拉胶粉10.0 g/L+10%椰汁;继代增殖比较合适的培养基为MS+6-BA 3.0~8.0 mg/L+NAA 0.10 mg/L+3%蔗糖+卡拉胶粉10.0 g/L+10%椰汁;生根最佳的培养基为MS+NAA 0.10 mg/L+3%蔗糖+卡拉胶粉10.0 g/L+10%香蕉泥+活性碳1.0 g/L;组培苗移栽合适的基质为进口泥炭、红壤和腐叶土的混合基质或纯进口泥炭。     

土田七幼嫩根茎的组培快繁

以土田七的幼嫩根茎为外植体,通过对其芽启动诱导、继代增殖及生根诱导培养基的筛选,建立了土田七幼嫩根茎的离体快繁体系。结果表明:土田七幼嫩根茎的最佳芽诱导培养基为MS+6-BA 3.0 mg/L+NAA0.10 mg/L+3%蔗糖+卡拉胶粉9.5 g/L+10%椰汁;继代增殖最佳的培养基为MS+6-BA 5.0 mg/L+NAA 0.10 mg/L+3%蔗糖+卡拉胶粉9.5 g/L+10%椰汁;生根最佳的培养基为MS+NAA 0.10 mg/L+3%蔗糖+卡拉胶粉9.5 g/L+10%香蕉泥+活性碳1.0 g/L;组培苗移栽较合适的基质为进口泥炭∶红壤∶腐叶土混合的基质。     

辣木组织培养和快繁技术研究

采用正交实验设计L9(34),以MS培养基,分别加入不同质量浓度的6-BA、NAA、ZT和蔗糖进行辣木丛生芽增殖诱导;采用正交实验设计L9(34),以不同基本培养基,不同质量浓度的IBA、NAA进行辣木组培苗不定根诱导。结果表明,MS+蔗糖30 g/L+6-BA 1 mg/L+NAA 0.2 mg/L+琼脂7 g/L为辣木诱导丛生芽较佳的启动培养基,丛生芽诱导率可达100%;MS+蔗糖30g/L+ZT 0.5 mg/L+6-BA 0.5 mg/L+NAA 0.1 mg/L+琼脂7 g/L,为辣木丛生芽增殖较佳的培养基,增殖系数为6.17;1/2MS+IBA 0.2 mg/L+NAA0.1 mg/L,为辣木丛生芽生根较佳的培养基,不定根诱导率可达100%。     

新疆天山雪莲组培快繁技术的建立

[目的]探讨新疆天山雪莲组培快繁技术。[方法]以新疆雪莲切除根部的无菌苗,或无菌苗的真叶,或者直接采集野生的新疆雪莲幼嫩部位作外植体,进行愈伤组织诱导培养及丛生芽分化、丛生芽增殖继代培养、生根培养和组培苗移栽试验。[结果]新疆天山雪莲外植体在MS+NAA 2 mg/L+6-BA 0.5 mg/L和MS+6-BA 1.0+NAA 0.1 mg/L+2,4-D 0.1 mg/L培养基上可诱导产生大量的丛生芽;在MS+6-BA 0.5 mg/L+NAA 2.0 mg/L和MS+6-BA 0.5 mg/L+NAA 0.01 mg/L培养基上交替培养,丛生芽继代快速增殖率达1.0∶3.5;组培苗在MS+NAA 0.2 mg/L培养基上诱导生根,生根率达83%;生根的雪莲组培苗经炼苗和移栽后成活,生长健壮。[结论]该研究建立的快繁技术为雪莲野生资源保护和产业化发展开拓了一条有效途径。     

瓜蒌组培快繁体系研究

为保护及合理利用瓜蒌资源,采用正交设计,研究MS培养基中添加不同配比的植物生长调节剂(6-BA、NAA、IBA),活性炭,白糖等对瓜蒌茎外植体的丛生芽诱导、增殖及生根培养的影响,明确了外植体的最佳取样时间和消毒方法,建立了瓜蒌茎段组培快繁技术体系。结果表明:4月份取样最佳,0.1%的HgCl_2灭菌8min消毒效果最好;正交试验发现,对瓜蒌丛生芽增殖影响大小依次为活性炭6-BA白糖NAA;筛选出的瓜蒌外植体丛生芽的增殖培养基配方为MS+0.5 mg/L 6-BA+0.1 mg/L NAA+30 g/L白糖+7.8 g/L卡拉胶,45 d平均增殖系数达7以上;筛选出的瓜蒌外植体诱导生根培养基为MS+0.6 mg/L NAA+0.6 mg/L IBA+20 g/L白糖+7.8 g/L卡拉胶,生根率达96%,生根速度较快,粗细均匀,根系壮。     

唐菖蒲球茎芽高频再生体系的建立

将带芽的唐菖蒲子球茎切块接种在附加2,4-D 3.0 mg/L的MS基本培养基上诱导愈伤组织的发生.愈伤组织转至MS+6-BA 0.5 mg/L+NAA 0.1 mg/L诱导芽的分化.丛生芽继代增殖在MS+6-BA 0.5 mg/L+NAA 0.1mg/L上,增殖系数最高.生根培养以1/2 MS+NAA 0.1 mg/L效果最佳.     

大花葱愈伤组织诱导分化及不定芽增殖研究

为给今后建立大花葱组培种球繁殖技术体系提供技术积累,特对大花葱愈伤组织诱导、分化及不定芽增殖的相关技术要点进行了研究。结果表明,以大花葱鳞球茎为外植体,用0.1%升汞消毒15 min,外植体成活率达62.5%;外植体在MS+6-BA 0.5 mg/L+2,4-D 2.0 mg/L+白砂糖30 g/L培养基中培养10 d,然后转入MS+6-BA 1.0 mg/L+NAA 1.0 mg/L+白砂糖30 g/L培养基中,愈伤诱导率为93.3%;在愈伤组织再分化形成不定芽环节中,以培养基MS+6-BA 2.0 mg/L+NAA 0.2 mg/L+白砂糖30 g/L的分化效果最佳,分化率为77.8%;对不定芽进行增殖培养,以培养基MS+6-BA3.0 mg/L+NAA 0.2 mg/L+白砂糖30 g/L的增殖效果最好,增殖倍数达2.65倍。     

瓷玫瑰的组织培养

以瓷玫瑰刚萌动的嫩芽作为外植体,采用从腋芽→丛生芽→完整植株的繁殖途径进行繁殖。实验结果表明:在MS+6-BA1.0mg/L+NAA0.1mg/L+Vc150mg/L+蔗糖30g/L的培养基上培养可诱导其腋芽萌发,新芽接种于MS附加6-BA3.0mg/L+NAA0.3mg/L+蔗糖30g/L的培养基上培养20d后,可诱导形成丛生芽,丛生芽在继代培养过程中,每25d可增殖6倍。把丛生芽接种于1/2MS+NAA2.0mg/L+IBA0.5mg/L+蔗糖30g/L培养基上培养,2周以后可诱导形成完整的根系,小植株移栽成活率可达90%以上。     

微型月季组织培养技术的研究

以盆栽微型月季"粉和平"为试验材料,以MS为基本培养基,附加不同浓度的6-BA和NAA,以诱导芽和丛生芽为繁殖途径。结果表明:适于诱导芽分化的培养基为MS+6-BA2mg/L+NAA0.1mg/L;适于增殖的培养基为MS+6-BA3mg/L+NAA0.3mg/L;适于壮苗的培养基为6-BA1mg/L+NAA0.1mg/L、6-BA2mg/L+NAA0.3mg/L。     

瓷玫瑰的组织培养

以瓷玫瑰刚萌动的嫩芽作为外植体,采用从腋芽→丛生芽→完整植株的繁殖途径进行繁殖.实验结果表明:在MS+6-BA1.0mg/L+NAA0.1mg/L+Vc150mg/L+蔗糖30g/L的培养基上培养可诱导其腋芽萌发,新芽接种于MS附加6-BA3.0mg/L+NAA0.3mg/L+蔗糖30g/L的培养基上培养20d后,可诱导形成丛生芽,丛生芽在继代培养过程中,每25d可增殖6倍.把丛生芽接种于1/2MS+NAA2.0mg/L+IBA0.5mg/L+蔗糖30g/L培养基上培养,2周以后可诱导形成完整的根系,小植株移栽成活率可达90%以上.     

石斛兰组织培养和快速繁殖体系的建立与优化

以金钗石斛、蝴蝶石斛、索尼亚石斛的茎段为外植体,研究不同的消毒方法和激素水平对石斛兰组织培养和快繁体系的影响,并筛选适合石斛兰试管苗快繁的培养基.结果表明,在初代试验中对石斛兰的茎段消毒以0.1% HgCl2处理15 min为宜;MS+2.0～3.0 mg/L 6-BA+0.5～1.0 mg/L NAA为适宜的不定芽诱导培养基;适宜愈伤组织诱导培养基为MS+1.0～1.5 mg/L 6-BA+0.2 mg/L NAA;在继代培养基1/2MS+1.0~1.5 mg/L 6-BA+0.2 mg/L NAA上,愈伤组织能够分化出状态良好的丛生芽并继续增殖;在培养基1/2MS+0.1 mg/L IBA+10%椰汁上,生根率达100%,试管苗生长健壮,根系良好.     

木本菊的组织培养及快繁技术研究

以木本菊茎段为外植体,研究了木本菊的组织培养及快繁技术。结果表明,最佳芽分化培养基是MS+1.0 mg/L 6-BA+0.1 mg/LIAA+1.0%糖,约60~70 d可诱导出丛生芽;在MS+0.5 mg/L 6-BA+0.2 mg/L NAA+1.0%糖的培养基上增殖速度最快,每升10 g的蔗糖浓度也最有利于芽的增殖;最适的扎根培养基是1/2 MS+0.1~0.3 mg/L NAA+1.0%糖或1/2 MS+0.05 mg/L 6-BA+0.5 mg/L NAA+1.0%糖,6~10 d可扎根,35~40 d可移栽。     

红果萝芙木植物组织培养及快速繁殖

以红果萝芙木茎段为外植体,研究其再生条件。结果表明:丛生芽诱导培养基为MS+1.0 mg/L 6-BA+0.05 mg/L IBA;继代增殖、壮苗培养基分别为MS+0.3~0.5 mg/L 6-BA+0.02 mg/L IBA、MS+0.1~0.2 mg/L6-BA+0.01 mg/L IBA;根分化的最适培养基为1/2MS+0.5 mg/L NAA+0.2 mg/L IBA。     

黑果枸杞产业现状及快速繁殖技术研究

为掌握黑果枸杞组培快繁技术,促进产业发展,以野生黑果枸杞为研究对象,对其不定芽增殖、诱导生根的培养条件进行筛选,并探讨产业发展措施。结果表明,黑果枸杞组培苗最佳初代培养基是MS+6-BA0.5mg/L+NAA0.2mg/L+30mg/g蔗糖+6mg/g琼脂,达到83.3%的萌芽率;最有利于不定芽增殖的继代培养基为MS+6-BA0.5mg/L+NAA 0.1 mg/L+30mg/g蔗糖+6mg/g琼脂,芽增殖系数达3.63;最佳生根培养基1/2MS+NAA 0.1mg/L+IBA 0.1 mg/L+15mg/g蔗糖+6mg/g琼脂,生根率达到100%。     

兴仁金线莲丛生芽诱导增殖研究

[目的]筛选兴仁金线莲丛生芽的诱导和增殖的最佳培养基。[方法]用野生兴仁金线莲植株茎段作外植体,以MS为基本培养基,并添加不同浓度的6-BA和NAA,诱导丛生芽,筛选最佳培养基配方。[结果]MS是兴仁金线莲快繁最佳基本培养基;2.0～3.0 mg/L的6-BA有利于丛生芽的诱导;1.0 mg/L 6-BA+0.1 mg/L NAA有利于芽的生长;最佳蔗糖浓度为25 g/L。[结论]MS+2 mg/L 6-BA+0.2 mg/L NAA+25 g/L蔗糖为丛生芽增殖的最佳培养基配方。     

驱蚊香草快繁体系的建立及工厂化育苗主要影响因素研究

以驱蚊香草的幼嫩叶片作外植体,在含不同激素的不同培养基上进行丛生芽的诱导、芽的继代增殖、芽生根与移栽研究,以快速获得再生植株。结果表明,丛生芽诱导培养基以MS 6-BA1.0mg/L NAA0.1mg/L较好,诱导率为96%;增殖培养基以MS(B5) 6-BA0.5mg/L NAA0.1mg/L较好,增殖系数达8倍以上,且增殖芽生长好;壮苗培养基为MS(B5) 6-BA0.1mg/L NAA0.2mg/L为好;生根培养基以1/2MS NAA0.1mg/L和MS IBA0.2mg/L为最佳,生根率达100%,幼苗生长势旺。影响工厂化育苗的主要因素有激素浓度、继代次数和移栽管理。     

太子参组织培养与快繁技术

以太子参冬芽为外植体进行组织培养试验,结果表明,1/2MS+NAA0.1mg/L+6-BA2.0～3.0mg/L能诱导太子参越冬芽的顶芽和腋芽生长;1/2MS+NAA0.2mg/L+6-BA1.0mg/L适宜诱导丛生芽生长;1/2MS+NAA0.2mg/L+6-BA1.5mg/L适宜太子参组培苗增殖继代培养;MS基本培养基适宜太子参壮苗生根。     

萱草引进新品种“Forgotten Dreams”的组织培养技术

本试验主要为萱草(Hemerocallis)引进品种“Forgotten Dreams”建立组织培养快繁体系.研究结果表明,以分枝处幼嫩花枝为外植体,灭菌方法为75％乙醇20 s+1.0％ NaClO 10 min,获得最佳启动培养基为MS+ 1.0 mg/L6-BA+ 0.2 mg/L NAA+30 g/L蔗糖+6.5 g/L琼脂,6-BA对愈伤组织分化的促进作用明显高于KT;最佳继代培养基为MS+2.0mg/L6-BA +0.01 mg/LNAA +30g/L蔗糖+6.5 g/L琼脂,增殖系数可达3.36倍,继代次数的增加会使丛生芽的增殖系数有一定下降;最佳生根培养基为1/2MS+0.05 mg/L NAA+30 g/L蔗糖+6.5 g/L琼脂,生根率达100％,NAA对生根的促进作用明显好于IBA.