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101.
102.
石斛组织培养与栽培技术的研究 总被引:37,自引:1,他引:37
研究结果表明,N6,MS等14种培养基对曲茎石斛,铁皮石斛的种胚成苗率,种胚苗生长有显著作用,其中以N6为硅。在1/2N6培养基内添加香蕉汁(150mg/L),石斛种胚苗生长最好;若添加2mg/L或1mg/LNAA,可提高石斛种胚分蘖率6-7.14倍。选曲茎石斛或铁皮石斛的茎尖,茎段,充实幼叶及其种胚,鳞叶期原球茎,种胚苗,幼根为外殖体,可培育出大批组培苗。栽培试验结果表明,石斛组培苗在特殊的环境 相似文献
103.
104.
铁皮石斛高效设施栽培技术研究 总被引:6,自引:1,他引:6
[目的]实现铁皮石斛的高效设施栽培。[方法]以铁皮石斛无菌试管苗为试材,当苗高5cm左右时,分别移栽到3种不同的栽培基质中,筛选出铁皮石斛的最适生长基质;以其最适生长基质为栽培基质,设置清水(CK)和营养液浇灌2个处理,研究营养液浇灌对铁皮石斛生长的影响。[结果]所设置的3种栽培基质都适合铁皮石斛生长,其中,以石灰岩碎石滤水层5 cm+锯末(杂木粗糙的锯末)8cm+活苔藓2 cm为基质时,铁皮石斛长势最好、产量最高;适当浓度的营养液浇灌可较大幅度地提高铁皮石斛的产量。[结论]该研究为铁皮石斛的高效设施栽培提供了参考。 相似文献
105.
碳是植物必需的首要营养元素,主要从空气中的二氧化碳获取,植物常处于碳饥饿状态,施加有机碳肥能有效补充植物所需的碳元素。铁皮石斛是珍稀药用植物,为揭示有机碳肥α-酮戊二酸对铁皮石斛品质及氮、磷、钾养分吸收的影响,对2 a生铁皮石斛进行叶面喷施试验,并测定叶面喷施2个月后茎中可溶性总糖、水浸出物、水溶性氮、总氮、总磷、总钾和微量元素铁、锌含量。结果表明,叶面喷施不同浓度α-酮戊二酸能明显提高铁皮石斛可溶性总糖含量,施用50~100 mg·L-1 α-酮戊二酸显著增加了总氮含量,水溶性氮随着α-酮戊二酸的增加,呈现逐渐下降趋势。在α-酮戊二酸的施用浓度为50~100 mg·L-1时,处理组的水溶性氮/总氮显著低于对照,说明氮合成代谢显著增强。叶面喷施α-酮戊二酸并没有明显影响磷、钾含量,10~50 mg·L-1 α-酮戊二酸显著提高了铁、锌含量。以上研究结果说明了外施α-酮戊二酸能显著提高铁皮石斛可溶性总糖、铁和锌含量,增强其氮合成代谢,稳定磷、钾平衡。 相似文献
106.
铁皮石斛是我国传统名贵中药材,具有益胃生津等功效,由于过度开采,野生种濒危。新世纪以来,随着栽培技术的发展,铁皮石斛产业得到快速发展,成为我国产销量最大中药材之一,原生态栽培是铁皮石斛产业发展方向。林业是我国重要产业,推广林下活树附生种植铁皮石斛技术,有利于发展林下经济,解决林业增收问题,结合铁皮石斛生物学特性,从自然条件、移植上树、树体管理、采收加工等方面总结铁皮石斛在乔林树种附生种植技术。 相似文献
107.
铁皮石斛的林下仿野生种植技术及养护方法应用对于铁皮石斛的种植有非常重要的作用,在实际的铁皮石斛种植过程中应该注重对其种植技术进行分析研究,确保铁皮石斛仿野生种植更加合理,提升铁皮石斛种植效果。本文笔者结合自己几年铁皮石斛林下仿野生种植实践经验,针对铁皮石斛林下仿野生种植技术进行了分析研究,文章中简要阐述了铁皮石斛的价值,并对其林下仿野生种植技术以及养护方法的具体应用进行了阐述。 相似文献
108.
《亚热带农业研究》2021,17(1)
[目的]建立快速检测铁皮石斛中乙烯菌核利、毒死蜱、腐霉利、联苯菊酯和伏杀硫磷等5种农药残留的GC-MS/MS方法。[方法]采用QuEChERS方法对铁皮石斛进行提取和净化,使用质谱多反应监测(MRM)模式定性,使用外标法定量测定铁皮石斛中的农药残留。[结果]标准曲线在0.05~2.0μg·mL~(-1)质量浓度范围内线性关系良好,相关系数(r~2)介于0.999 1~0.999 9之间;方法定量限介于0.003~0.012 mg·kg~(-1)之间;在0.2、0.5、2.0 mg·kg~(-1)添加水平,回收率分别介于79.76%~91.45%、82.57%~91.94%、84.17%~89.97%之间;相对标准偏差(RSD)分别介于1.14%~4.53%、1.10%~1.52%、0.32%~1.91%之间。[结论]建立的检测方法具有简便高效、经济节约、准确稳定等优点,适用于检测铁皮石斛中乙烯菌核利等5种农药残留。 相似文献
109.
为了研究铁皮石斛最佳的组织培养方法,本试验以铁皮石斛带节茎段作为外植体,探寻铁皮石斛的最佳基本培养基,最优消毒时间,以及不同浓度的NAA和6-BA对腋芽诱导、丛芽增殖、生根壮苗的影响.结果表明:以铁皮石斛带节茎段作外植体时,最佳的基本培养基是1/2MS培养基,在1‰HgCl2中浸泡消毒的最优时间为10 min;诱导腋芽时以1/2MS+10 g·L-1蔗糖+0.6 mg·L-1 NAA+1.5 mg·L-16-BA为最佳培养基;诱导丛芽增殖的最佳培养基为1/2MS+0.6 mg·L-1 NAA+1.5 mg·L-16-BA;诱导生根的最佳培养基为1/2MS+0.5 mg·L-1 IBA+0.9 mg·L-1 NAA. 相似文献
110.