南昆山莪术的组培快繁技术研究

以南昆山莪术的根状茎腋芽为外植体,采用MS基本培养基,附加不同种类、不同浓度的植物生长调节剂,进行了不定芽诱导、丛生芽继代、试管苗生根等研究,探索其组织培养和离体繁殖的适宜务件。结果表明:在MS+6-BA 5.0 mg/L+NAA 0.1 mg/L培养基中,不定芽的诱导率最高,达到85%;MS+TDZ 0.5 mg/L培养基最有利于丛生芽的增殖,增殖系数达到13.60;试管苗生根以1/2MS+NAA 0.2 mg/L培养基最好;当试管苗长至6 cm时出瓶移栽,成活率可达95%以上。     

紫龙角愈伤组织诱导与植株再生的研究

以紫龙角的不同器官为试材,研究不同植物生长调节剂浓度及组合、培养基、光照、外植体等因素对其愈伤组织诱导和植株再生的影响。结果表明:愈伤组织诱导的最佳外植体是不带腋芽茎块,在麦基1号+CH+6-BA 1.0～1.8mg/L+2,4-D 0.5～2.0mg/L的培养基上,暗培养6d时诱导率高达90%以上;质地紧密,有一定疏松度,是建立细胞无性系的优良材料。带腋芽茎块是直接诱导丛生芽的理想外植体,H+TDZ 4mg/L+NAA 0.4mg/L培养基适合丛生芽生长、增殖诱导率达到91%。复壮增殖不定芽的培养基为改良的H+TDZ 4mg/L+NAA 0.4mg/L;1/2MS+NAA 2.5mg/L是最佳生根培养基,每个不定芽平均有效根数最高为6.17个。     

春秋姜黄组培快繁技术研究

以春秋姜黄根茎腋芽为外植体,采用添加6-BA、NAA、TDZ不同浓度和不同组合的MS基本培养基,进行不定芽诱导、丛生芽继代增殖和生根、壮苗培养等研究,探索其组织培养和离体快繁技术的适宜条件。结果表明:MS+6-BA 2.0mg/L+NAA 0.5mg/L的培养基腋芽诱导率高达86.7%,且生长速度快;MS+6-BA 2.0mg/L+TDZ 0.1mg/L最有利于芽增殖,继代3次后,增殖系数达14.1;MS+6-BA 1.0mg/L+NAA 0.5mg/L培养基的壮苗生根效果最好。试管苗长至6cm时移栽,成活率可达90%以上。     

TDZ诱导中间锦鸡儿植株再生

以中间锦鸡儿种子无菌萌发得茎段为外植体,不同激素组合诱导丛生芽,得出最佳丛生芽诱导培养基为MS+TDZ 0.1 mg/L+NAA 0.02 mg/L+糖30.0 g/L+琼脂9 g/L,芽诱导率达220%。诱导得到的丛生芽直接生根困难,需过渡培养。在培养基MS+BA 0.2 mg/L+NAA 0.4 mg/L+糖30.0 g/L+琼脂9 g/L上过渡培养三代以上后转入生根培养基1/2MS+IAA 0.5 mg/L+糖30.0 g/L+琼脂9 g/L生根,长出的根粗壮,且须根数多,生根率在85%以上。生根培养后在草炭土∶珍珠岩=4∶1的基质上移栽成活率达到80%。     

苦瓜子叶离体再生体系的建立

以“圣香”苦瓜、“玉华”苦瓜的子叶为外植体进行离体培养植株再生研究.结果表明:2个苦瓜品种的子叶在不同的培养基上都较易形成愈伤组织,愈伤组织诱导率都达到80％以上.培养基MS+TDZ 0.05 mg/L+-NAA 0.02 mg/L适合“圣香”苦瓜子叶不定芽分化,分化率为68.4％;培养基MS+-TDZ 0.03 mg/L+-NAA 0.02 mg/L适合“玉华”苦瓜子叶不定芽分化,分化率为67.8％.“圣香”苦瓜在培养基上MS+ZT 0.3 mg/L+NAA 0.01 mg/L上丛生芽诱导效果好,增殖率达6.5;“玉华”苦瓜丛生芽诱导的最佳培养基为MS+TDZ 0.02 mg/L+NAA0.01 mg/L,增殖率达6.6.生根诱导以1/2MS+NAA 0.05 mg/L培养基诱导率最高,“圣香”苦瓜生根率为90.7％,“玉华”苦瓜生根率达91.9％.     

海芋根状茎的离体培养与植株再生

以海芋的根状茎为外植体,探索了不同的生长调节剂配比对愈伤组织诱导、增殖与分化的影响.结果表明:含TDZ 0.5 mg/L的MS培养基上愈伤诱导率最高,达到53.3%;4mg/LBA 0.1 mg/L NAA生长调节剂浓度有利于愈伤组织的增殖;附加1 mg/L BA 0.05 mg/LNAA的培养基上芽分化率最高;下表面切除0.1～0.2 cm有利于愈伤组织增殖与分化.不定芽在无生长调节剂的1/2MS培养基中都能生根.     

非洲茉莉组织培养技术研究

以非洲茉莉的茎段和叶片进行外植体诱导试验表明,茎段外植体诱导不定芽效果较好,诱导率达53.3%;试验条件下,适宜外植体诱导的培养基是MS+TDZ 1.0 mg/L,适宜丛生芽增殖的培养基是MS+6BA 2.0 mg/L+NAA 1.0 mg/L,适宜生根的培养基是1/2 MS+NAA 0.25 mg/L+IBA0.25 mg/L;试管苗移栽到体积比为1∶1∶2的草炭、蛭石、园土基质中,成活率达90%以上。     

崇庆枇杷茶组织培养初步研究

以崇庆枇杷茶的带芽茎段为试材,对外植体的消毒、愈伤的诱导、芽的启动和增殖进行了初步研究。结果表明:以培养室扦插苗的带芽茎段为材料,用多菌灵处理20min,0.1%升汞消毒10min后再用0.05%升汞消毒3min效果最好,其存活率可达88.5%;适合愈伤诱导的培养基为MS+1mg/L BA+0.5mg/L NAA,愈伤颜色鲜绿,质地较硬,转入MS+(1、2mg/L)TDZ中愈伤表面变为颗粒状;有利于芽启动的培养基为:MS+2mg/L BA+0.05mg/L IAA+0.5mg/LGA3,有利于芽增殖的培养基为MS+1mg/L TDZ+1mg/L GA3,2种培养基交叉培养有利于芽的增殖。     

蝴蝶兰组培快繁技术研究

将蝴蝶兰花梗腋芽作为外植体,接种于不同培养基上进行培养.结果表明:1/2MS+6-BA 5.0 mg/L+NAA 2.0 mg/L+CM 15%培养基诱导丛生芽最合适,诱导率可达100%,丛生芽增殖阶段1/2 MS+6-BA 7 mg/L+NAA 0.5 mg/L+CM 15%培养基效果最好,增殖倍数达7.13.无菌苗叶片诱导丛生芽以1/2MS+6-BA 5.0 mg/L+NAA 2.0 mg/L+香蕉泥10%+AC 0.2%为最好,诱导率达54.3%,丛生芽增殖阶段1/2 MS+6-BA 7 mg/L+NAA 0.5mg/L+香蕉泥10%+AC 0.2%培养基效果最好,增殖倍数达6.17.茎尖诱导原球茎状体以MS+6-BA 5.0 mg/L+NAA 2.0 mg/L+CM 10%+0.2%,其诱导率达77.1%,原球茎状体进行增殖培养的适宜培养基1/3MS+6-BA 50 mg/L+NAA 0.5 mg/L+CM 15%+AC 0.3%,增殖倍数达8.3,随后转入1/2MS+6-BA 7 mg/L+CM 15%中,很快分化成芽.生根培养基以1/2MS+NAA 1.0 mg/L+IAA 0.5 mg/L+AC 1.0%较好,将生根蝴蝶兰移栽至水苔中,1个月后成活率为99.9%.     

中油桃4号丛生芽诱导及增殖激素配比试验

本试验以中油桃4号的嫩枝茎段为外植体,研究不同激素配比对丛生芽诱导的影响.结果表明,最适芽萌发培养基MS+ZT(2.5mg/L)+GA,(0.4 mg/L),萌发率87％;丛生芽诱导最佳增殖培养基为MS+ZT(3.0 mg/L)+GA3(0.5 mg/L),增殖系数为4.37;最适生根培养基MS+2,4-D(1.5 m...     

秋福红树莓叶片离体再生植株研究

以红树莓品种秋福(Rubus L.cv.Autumn Bliss)离体叶片为外植体,研究适合其再生植株的叶片部位、放置方式、植物生长调节剂以及暗培养时间等条件。结果表明,叶片外植体接种于MS+TDZ2.00mg/L+IAA0.10mg/L的培养基,暗培养2～3周转移至正常光照下培养效果最好,愈伤组织形成率、不定芽再生率和外植体不定芽数分别为100.00%、95.83%和(5.57±0.27)个。将再生芽接种于1/2MS+IBA0.10mg/L的培养基中,35d后生根率达100.00%。再生植株炼苗后移栽,30d时成活率达97.30%,成功地建立了红树莓叶片的离体再生体系。     

''''宫藤''''富士苹果叶片离体再生体系的建立

以'宫藤'富士苹果组培苗为试材,对叶片离体再生体系进行了研究.不同激素种类、浓度配比及叶片放置方式的试验结果表明:以MS为基本培养基添加5.0 mg/L 6-BA、1.0mg/LNAA叶片远轴面接触培养基(叶片反放)可得到最高的再生效率,为73.3%,6-BA对叶片再生效果要好于TD2,且提高NAA浓度并不能提高TDZ对再生频率和再生叶片平均再生芽数的影响.再生植株在生根诱导培养基(1/2 MS 1.0 mg/L IBA)、生根培养基(1/2 MS)上进行培养后移入营养土成活率可达100%.     

早熟油桃子叶和胚轴离体培养再生植株的研究

 以早熟油桃‘华光’和‘曙光’为试材, 对影响其子叶和胚轴再生的植物生长调节剂浓度及组合、培养基、胚发育时期等因素进行了研究。结果表明: 子叶培养中, 华光花后60 d为最佳取材时期,其子叶在MS + TDZ 2 mg/L +NAA 0.04 mg/L的培养基上再生率为75%; 曙光则要取花后68 d成熟期子叶,其在MS +BA 8 mg/L +NAA 0.04 mg/L培养基上再生率为66.7%。胚轴培养中, 上、下胚轴无显著差异,华光胚轴再生以G + TDZ 3.0 mg/L + KT 1.0 mg/L +NAA 3.0 mg/L 效果较好; 曙光胚轴再生以QL + TDZ2.0 mg/L +NAA 0.5 mg/L效果较好。     

红龙草叶片的组织培养及其植株再生

 建立了红龙草叶片再生体系。叶片外植体在培养基MS + 6-BA 1.0 mg/L + 4-PU 1.0 mg/L +NAA 0.1 mg/L上形成浅绿色愈伤组织, 20 d后愈伤组织诱导率达100%。约45.31%的愈伤组织在添加6-BA 1.0 mg/L和NAA 0.4 mg/L的MS培养基上分化出紫红色的不定芽, 约6%的愈伤组织在该培养基上产生出细小叶片和绿色变异幼芽。所产生的紫红色不定芽在1/2MS +NAA 0.4 mg/L的培养基上可全部生根,长成完整植株。再生植株的移栽成活率达85%以上。     

月季‘萨蔓莎’愈伤组织的诱导及植株再生

 以试管苗的小叶为外植体, 探讨了月季品种‘萨蔓莎’愈伤组织诱导及植株再生的方法。结果表明: 高浓度的生长素能诱导小叶产生愈伤组织, 经2,4-D 7.0～10.0 mg/L光下诱导愈伤15 d的小叶外植体, 在含TDZ 1.5 mg/L的MS培养基上光下培养约20 d后有白色假珠芽形成, 此芽暗培养在含NAA、ZT和GA3 的培养基上产生新的假珠芽和新的愈伤组织, 通过持续选择继代生活力高的组织, 约1年后获得可长期继代的愈伤组织, 到目前为止已保存了16个月。此愈伤组织在TDZ 1.0 mg/L、NAA 0.01 mg/L和GA3 0.1 mg/L的诱导下30 d内分化出不定芽, 在含BA 2.0 mg/L和NAA 0.01 mg/L的培养基上不定芽伸长形成正常植株。     

地被月季‘Royal Bassino’高频再生体系的建立

 以地被月季‘RoyalBassino’为试材, 进行了组培快繁和外植体再生条件的研究。结果表明,以带有腋芽的茎段为外植体, MS中添加6-BA 1.5 mg/L和IBA 0.1 mg/L 为最适诱导培养基, 诱导出芽率100%; MS中添加6-BA 0.5 mg/L和IBA 0.05 mg/L可以获得最高增殖倍数(6.3) ; 而添加IBA 0.01 mg/L的1/2MS为最佳生根培养基, 生根率92%。试管苗经7 d驯化后, 移栽成活率在99%以上。分别以叶柄、叶盘和茎段为外植体进行再生培养, 以MS为基本培养基, 叶柄在添加噻苯隆(TDZ) 7μmol /L的诱导培养基中暗培养10 d后, 转接到添加6-BA 0.5 mg/L的再生培养基中光照培养约20 d, 可以获得57.1%的芽再生率。     

不同基因型梨叶片离体培养和植株再生

 以‘巴梨’、‘身不知’和‘早酥’梨试管苗叶片为外植体, 对不定芽进行了诱导、增殖和生根。重点探讨了基本培养基、植物生长调节剂配比、AgNO₃ 不同浓度和NH4⁺-N与NO3^--N比例对不定芽再生的影响。结果表明, MS + TDZ 0.5 mg/L + IBA 0.1 mg/L为‘巴梨’叶片不定芽发生的最佳培养基。在QL + TDZ 1.0 mg/L +NAA 0.1 mg/L培养基上, 暗培养3周后转光下培养, ‘身不知’和‘早酥’分别获得89.6%、81.2%的不定芽再生率和3.45、3.73的平均再生芽数; 对‘巴梨’和‘早酥’不定芽再生有效促进的AgNO₃ 浓度范围为0.1～0.5 mg/L, 0.1～4.0 mg/L的AgNO₃、1∶2～7的NH₄⁺-N∶NO ₃^--N和21.50mmol/L的K+对‘身不知’叶片再生均有促进作用, 缺乏NH₄⁺-N不利于不定芽的再生; 转移到MS+BA1.0 mg/L + IBA 0.1 mg/L培养基上能快速增殖; 在MS、1 /4MS + IBA 1.0～2.5 mg/L +蔗糖5～15 g/L +活性炭0.5～1.0 g/L上获得了不同程度的生根苗。     

Adventitious bud formation and plantlet regeneration from leaves of fig (Ficus carica L.)

Summary

Leaf fragments of fig (Ficus carica L. ‘Masui Dauphine’) regenerated from in vitro shoot culture were excised and inoculated on MS medium supplemented with different combinations of 2, 4-D, TDZ, and 0.5 mM phloroglucinol. Addition of 2, 4-D induced root formation directly on the explant, and the presence of phloroglucinol significantly increased root formation. When a combination of 2, 4-D and TDZ was added to MS medium containing phloroglucinol, the explants started to produce adventitious buds at the edges. The addition of phloroglucinol was effective in inducing adventitious bud formation. Excised shoots were rooted successfully in MS medium that was either hormone free or supplemented with 1.0 mg l^–1 indolebutyric acid. Regenerated plantlets were successfully established in soil after a short period of acclimatization. This is the first protocol of organogenesis and plant regeneration from vegetative organs of Ficus carica L.