紫菜薹子叶离体培养不定芽诱导频率的研究

为比较紫菜薹不同基因型之间的子叶不定芽诱导频率,以6个紫菜薹（Brassica campestris ssp.chinensis var.purpuraria）品种为试材,在不同的培养基上诱导不定芽,发现‘十月鲜’紫菜薹的子叶不定芽诱导频率最高。为确定‘十月鲜’紫菜薹子叶不定芽诱导最佳培养基,采用二次正交旋转组合设计研究了6-BA、NAA及AgNO3对‘十月鲜’子叶离体培养不定芽诱导频率的影响,发现3个因素对子叶不定芽诱导影响的主次关系为：AgNO3〉6-BA〉NAA,最佳培养基是MS＋3.0 mg/L6-BA＋1.5 mg/L NAA＋5.0 mg/LAgNO3,不定芽诱导率达85.71%。     

车前不定芽直接诱导及再生体系的建立

[目的]建立车前高效离体植株再生体系,为车前快速扩繁奠定基础。[方法]以车前无菌苗的下胚轴和子叶为外植体,以MS为基本培养基,研究了6-BA、NAA不同配比的培养基对车前下胚轴和子叶不定芽诱导的影响。[结果]MS培养基添加6-BA2 mg/L,5～7d的下胚轴不经过愈伤组织诱导阶段便可直接形成不定芽,不定芽诱导率为80%,每个外植体可产生7～8个不定芽。培养基中添加NAA促进不定根的分化,但影响不定芽的诱导。6-BA与NAA配合使用时,外植体易分化愈伤组织。在添加NAA的MS培养基上,再生苗诱导生根频率为100%。将再生植株移栽于盆土中,可获得100%存活率,且生长良好。[结论]6-BA促进车前下胚轴直接分化不定芽,而NAA则影响不定芽的诱导,在不定芽诱导培养基中应避免添加NAA。     

小盐芥下胚轴再生体系的建立

以小盐芥下胚轴为外植体,研究了不同激素与不同浓度组合对愈伤诱导和不定芽分化的影响。结果表明,MS 6-BA 2,4-D组合能诱导出愈伤,诱导率为100%。MS 6-BA NAA组合既能诱导出愈伤又能分化不定芽,愈伤诱导率为100%,激素不同浓度不定芽分化率不同,最佳分化培养基为MS 2.5mg/L 6-BA 0.1mg/L NAA,不定芽分化率为43%。生根培养基为1/2MS,生根率为74%。     

双单倍体南瓜后代子叶离体再生植株研究

【目的】探索一种快速扩繁南瓜双单倍体植株的技术,以扩大双单倍体植株的数量,提高其育种效率。【方法】以双单倍体南瓜后代子叶为外植体,在MS培养基中分别添加不同质量浓度的6-BA（1.0,4.0 mg/L）和NAA（0.05,0.1,0.2,0.5,1.0 mg/L）,筛选最佳组合;在此基础上,继续添加不同质量浓度的2,4-D（0.5,1.0,1.5,2.0 mg/L）,筛选3种激素的最佳组合。在MS＋6-BA 4.0 mg/L＋NAA 0.2 mg/L的不定芽诱导培养基上,研究其对不同苗龄子叶的诱导效果。将不定芽接种在含不同质量浓度NAA (0.05, 0.1, 0.2, 0.5 mg/L)的MS生根培养基上,比较生根率和根系生长势。【结果】在诱芽培养基中,添加2种激素时,以6-BA 4.0 mg/L＋NAA 0.2 mg/L的MS培养基诱导率最高,为66.67％,分化系数为3.89;添加3种激素时,以6-BA 4.0 mg/L+NAA 0.2 mg/L＋2,4-D 1.5 mg/L的MS培养基诱导率最高,达80.95％,分化系数为4.12。当子叶展开后苗龄为3 d时,不定芽诱导率相对较大,为77.42％。不定芽在MS+0.1 mg/L NAA培养基上生根效果最好,根系生长健壮,生根率达100%。【结论】双单倍体南瓜后代子叶离体再生的适宜激素质量浓度组合为MS＋6-BA 4.0 mg/L+NAA 0.2 mg/L+2,4-D 1.5 mg/L;以展开后3 d苗龄的子叶作为外植体诱导效果最好;MS+0.1 mg/L NAA是不定芽诱导生根的最适培养基。     

鼎湖山紫背天葵离体快速繁殖试验

以野生紫背天葵(Begonia fimbristipula Hance)的叶片为外植体,通过不定芽诱导途径,建立了快速高效的紫背天葵快速繁殖体系。研究结果表明:不同浓度6-BA和NAA组合的MS培养基上,1mg/L 6-BA和0.5mg/L NAA组合对不定芽的诱导效果最好,分化频率达到83.3%,增殖倍数37.50;转到MS+0.2mg/L IBA的培养基上不定芽可100%生根并长成完整植株,小苗移栽成活率达到90%以上。     

雪里蕻高效再生体系的建立

以雪里蕻(Brassica juncea Coss. var. multiceps Tsen et Lee)子叶、带柄子叶、子叶柄和下胚轴为外植体,在添加不同植物生长调节剂的MS培养基上进行分化培养.结果表明:在4种外植体中,带柄子叶不定芽分化能力最强.子叶和带柄子叶不定芽分化的最适培养基分别为MS+2 mg/L 6-BA+0.4 mg/L NAA+5 mg/L AgNO3和MS+2 mg/L 6-BA+0.2 mg/L NAA+5 mg/L AgNO3.带柄子叶和子叶不定芽分化的最佳苗龄都为5 d.AgNO3能显著地促进带柄子叶不定芽的分化,以5 mg/L的浓度为最佳.不同基因型对带柄子叶不定芽分化影响不大,但对子叶影响较明显.不定根诱导的最佳培养基为MS+0.2 mg/L NAA.     

茄子组织培养再生体系研究初报

以茄子的子叶和下胚轴为外植体,研究了不同激素组合对外植体分化的影响,建立茄子下胚轴高效再生体系,并初步探讨了温度对植株再分化的影响.结果表明:下胚轴不定芽诱导的最适培养基为MS NAA 0.2 mg/L 6-BA 2.5 mg/L,芽诱导率为46%;子叶不定芽诱导的最适培养基为MS NAA 0.2 mg/L KT 2.0 mg/L,芽诱导率为37%.     

彩椒的离体快繁研究

以红盾彩椒为试材,进行组培快繁,研究不同激素类型与配比组合对愈伤组织诱导、不定芽分化及芽的伸长的影响,并初步建立彩椒的组培快繁体系.结果表明:子叶愈伤诱导最适培养基为:MS-+-0.3mg/L6-BA+1.0 mg/L NAA;不定芽诱导最适培养基为:MS+3.0 mg/L 6-BA+0.5 mg/L IAA+4.0 mg/L AgN03;芽伸长最适培养基为:MS+2.0 mg/L 6-BA+0.2 mg/L IAA+2.0 mg/L ZT+2.0 mg/L GA3;最后在1/2MS+0.5 mg/L IBA(或0.5mg/L NAA)培养基上进行生根培养.     

直接诱导不定芽的矮牵牛再生体系的建立

以矮牵牛的叶片作为外植体,研究了不同浓度的激素配比对叶片直接诱导不定芽、诱导愈伤组织分化不定芽及生根的影响。得到了最适的直接诱导不定芽培养基的激素配6-BA1.5mg/L IBA0.5mg/L、诱导愈伤组织分化不定芽的培养基的激素配比6-BA1.5mg/L NAA0.3～0.5mg/L及生根培养基IBA0.03～0.05mg/L。并在时间上,从芽的长势、芽的生根情况进行比较,结果表明:直接诱导的不定芽比诱导愈伤组织分化的不定芽所需的时间短、长势好、生根快。     

北海道黄杨下胚轴的离体培养及植株再生

 以北海道黄杨(Euonymus japonicus 'Cu zhi')下胚轴为外植体进行离体培养，以MS和B5为基本培养基，附加不同浓度的细胞分裂素（6-BA，KT）及生长素（NAA，IBA）诱导下胚轴直接再生不定芽。结果表明，不定芽未经过愈伤组织而直接产生于下胚轴的表皮或近表皮等表层细胞；不同的激素浓度和组合以及不同的培养基对不定芽的分化有影响；下胚轴的不同部位不定芽的分化能力差异显著。适宜不定芽分化的最佳培养体系为MS+1.5 mg·L-16-BA+0.05 mg·L-1NAA，最佳外植体为靠近子叶端的下胚轴部分，其分化率最高达63.64%；不定芽增殖培养基为MS+2.0 mg·L-16-BA+0.2 mg·L-1NAA，增殖系数为3～5；1/2MS+1.0 mg·L-1IBA+100 mg·L-1活性炭适于再生幼苗的生根，生根苗经移栽成活。     

两性株番木瓜愈伤组织分化初探

以番木瓜两性株的愈伤组织为材料,以MS为基本培养基,研究了不同植物生长调节剂及组合对愈伤组织诱导不定芽和无菌芽诱导生根的影响.结果表明,6-BA和TDZ对番木瓜愈伤组织分化都有一定的诱导作用,而6-BA的作用优于TDZ,最适浓度0.05mg/L.GA3具有促进6-BA诱导愈伤组织分化的作用,诱导番木瓜愈伤组织分化出芽的最佳培养基为MS+6-BA 0.5 mg/L+GA 31.0 mg/L.相对NAA而言,IBA更适于诱导不定芽生根,生根培养基以MS+IBA 0.3 mg/L为宜.     

两性株番木瓜愈伤组织分化初探（英文）

以番木瓜两性株的愈伤组织为材料,以MS为基本培养基,研究了不同植物生长调节剂及组合对愈伤组织诱导不定芽和无菌芽诱导生根的影响。结果表明,6-BA和TDZ对番木瓜愈伤组织分化都有一定的诱导作用,而6-BA的作用优于TDZ,最适浓度0.05mg/L。GA_3具有促进6-BA诱导愈伤组织分化的作用,诱导番木瓜愈伤组织分化出芽的最佳培养基为MS+6-BA 0.5 mg/L+GA 31.0 mg/L。相对NAA而言,IBA更适于诱导不定芽生根,生根培养基以MS+IBA 0.3 mg/L为宜。     

芝麻菜愈伤组织诱导及植株再生*

 以芝麻菜(Eruca sativa Mill)无菌苗的下胚轴、子叶和子叶柄作为外植体,研究了不同的激素浓度和组合对其愈伤组织诱导和植株再生的影响。结果表明,分别以MS+0.8mg／L 2,4-D,MS+0.8mg／L 2,4-D+0.1mg／L 6-BA,MS+0.8mg／L 2,4-D+0.2mg／L 6-BA为下胚轴、子叶柄和子叶的愈伤组织诱导培养基时,效果较好,出愈率依次为86.3%,78.2%,97.6%;将下胚轴、子叶柄和子叶的愈伤组织分别转移到分化培养基MS+3.0mg／L 6-BA+0.1mg／L　NAA,MS+3.0 mg／L 6-BA+0.2mg／L NAA上再生不定芽,效果最佳,不定芽再生频率分别为72.7%,63.6%,69.2%。将不定芽切下转移至1／2 MS+0.5mg／L IBA培养基上诱导生根,生根率达81％以上。     

黄河蜜瓜子叶组培技术研究

以甜瓜品种黄河蜜3号的无菌子叶为材料,对6-BA与NAA不同配比的16种激素组合进行不定芽分化培养基的筛选及添加IAA的4种生根培养基进行生根培养研究的结果表明,在MS 6-BA 1.50 mg/L NAA 0.20 mg/L的培养基上,不定芽的诱导率最高,达到66.7%,获得了较高的不定芽再生率;在1/2 MS IAA 0.20 mg/L的培养基上生根效果最好,生根率达100%.     

西瓜高频再生系统的研究

以西瓜栽培种中育 1号为材料对影响西瓜组织培养的多个因素进行了研究 ,建立了西瓜茎尖、子叶块的高频再生系统。结果表明无菌苗子叶呈淡绿色时不定芽诱导率最高 ,茎尖和子叶块适于直接诱导不定芽 ,其中茎尖的诱导率稍高于子叶块 ,MS 6 -BA 1 0 IBA 0 5可较好的诱导子叶块分化不定芽 ,MS 6 -BA 1 0 IBA 0 1对茎尖较为合适 ,低浓度的IAA有利生根 ,低温、高湿可提高移栽的成活率     

观赏南瓜子叶离体培养的初步研究

用'京乐101'观赏南瓜子叶作外植体进行离体培养,初步建立了其离体组织培养的再生体系.结果表明,以MS为基本培养基诱导不定芽分化时,6-BA的附加是必须的,NAA的附加对诱导不定芽的分化有促进作用,GA3的附加虽未能提高不定芽的诱导率,但却能提高不定芽的诱导分化数,诱导不定芽分化的最佳培养基为MS+6-BA 5.0mg/L+NAA0.2 mg/L+GA30.5 mg/L.同时在试验中发现,MS+6-BA 2.0 mg/L+NAA0.2 mg/L的培养基能从子叶块表面直接诱导出不定芽.不定芽在1/2 MS+NAA0.05mg/L+20g/L蔗糖的培养基上生根.     

观赏南瓜子叶离体培养的初步研究

用‘京乐101’观赏南瓜子叶作外植体进行离体培养,初步建立了其离体组织培养的再生体系。结果表明,以MS为基本培养基诱导不定芽分化时,6-BA的附加是必须的,NAA的附加对诱导不定芽的分化有促进作用,GA3的附加虽未能提高不定芽的诱导率,但却能提高不定芽的诱导分化数,诱导不定芽分化的最佳培养基为MS 6-BA5．0mg/L NAA0．2mg/L CA30．5mg/L。同时在试验中发现,MS 6-BA2.0mg/L NAA0.2mg/L的培养基能从子叶块表面直接诱导出不定芽。不定芽在1／2MS NAA0．05mg/L 20g／L蔗糖的培养基上生根。     

不同激素配比对荷包花组织培养的影响

研究了不同激素配比对荷包花不定芽诱导、丛生芽增殖和不定芽生根的影响。结果表明:不定芽的诱导以6-BA 2 mg/L+NAA 0.1mg/L较好,丛生芽的增殖以6-BA 1 mg/L+NAA 0.1 mg/L较好,不定芽生根以NAA 0.05 mg/L+IBA 0.5 mg/L或IBA 1.0 mg/L较好,使用NAA 0.05 mg/L+IBA 0.5 mg/L时根较粗、数量较多。     

龙椒2号大甜椒子叶离体培养中诱导不定芽的研究

[目的]采用子叶离体培养方法快速繁殖龙椒2号大甜椒,尤其在诱导不定芽阶段能更快、更多地诱导出不定芽。[方法]在诱导不定芽阶段中以MS为基本培养基,添加不同的激素配比进行对比,以优选出最佳的激素配比方案。[结果]生长素NAA对形成愈伤组织有主导作用,添加量以0.6 mg/L较为合适,6-BA和KT对促进芽分化都能起主导作用,6-BA以0.4 mg/L为宜,KT以1.0 mg/L为宜。[结论]选用子叶切片转入MS＋NAA0.6 mg/L培养基上,诱导出愈伤组织,然后将愈伤组织切块转入MS＋6-BA0.4 mg/L＋NAA0.5mg/L或MS＋KT1.0 mg/L＋NAA0.5 mg/L培养基上,分化出多数量的不定芽,然后利用这些不定芽进一步扩繁、生根,进而形成再生植株。     

辣椒的离体培养及再生体系研究

以辣椒子叶、真叶、下胚轴为外植体材料进行离体培养,结果发现,以子叶为培养材料最理想。在MS附加不同激素配比的培养基上,对不定芽分化、伸长及伸长不定芽生根诱导研究的结果表明,最适合芽分化的培养基为MS+6-BA 5.0 mg/L+IAA 0.5 mg/L,芽伸长最优组合为MS+ZT 2.0 mg/L+GA2.0 mg/L;不定芽伸长后在1/2 MS+NAA 0.1~0.3 mg/L培养基上生根效果最好。