猕猴桃实生苗组织培养体系建立的研究

以饱满成熟的猕猴桃种子为起始材料,用 2. 5g·L-1赤霉素处理 5小时,再用次氯酸钠灭菌消毒后,将萌芽的种子接种到MS+蔗糖 20g·L-1 +肌醇 100mg·L-1和 0. 75%琼脂的培养基上,根、茎、叶生长表现良好,初步建立了猕猴桃实生苗组织培养体系。猕猴桃实生苗组织培养同利用茎段、茎尖组织培养一样,培养基中无须附加任何激素。     

活沃德猕猴桃杂种F1实生群体表型变异的主成分分析与优良单株选择

海活德为世界著名美味猕猴桃品种，以它为母本进行品种间杂交育种，其Ｆ１出现许多优良变异，为优株选择奠定了基础。对海活德杂种Ｆ１进行了主成分分析，并计算出Ｆ１群体内和中单株在重要主成分上的得分，进而选出综合性状优良的单株。     

不同叶面肥对大花高代生长的矮化效应

为了筛选对大花高代具有矮化效应的叶面肥,采用多效唑、比久、通丰、试验1号和试验2号5种叶面肥对不同播期的两组大花高代苗进行喷施,研究不同叶面肥处理对大花高代苗生长状况的影响。结果表明,多效唑、比久均能促使大花高代节间缩短、植株矮化,但以叶面喷施多效唑的效果最为明显,而通丰、试验1号和试验2号对大花高代没有矮化效应。该研究结果可直接用于大花高代的矮化栽培。     

延长盆栽苹果挂树期的试验

近年来,北方落叶果树如苹果、梨、桃等的观赏盆栽日渐盛行,有的还将盆栽与传统的盆景造型技艺相结合,制作出优美的果树盆景,其观赏价值和经济价值大幅度提高。但盆栽果树同露地栽培一样,挂果期较短。如何延长盆栽果树的挂果期,以进一步提高其观赏价值和经济价值,成为果树盆栽的     

60Coγ射线种子辐射对大花高代 组培苗的生长及诱变效应

以0Gy、10Gy、50Gy、100Gy、150Gy和200Gy不同剂量的60Coγ射线辐射种子，研究其对大花高代组培苗生长影响的结果表明，在50~200Gy范围内，根和真叶的生长以及植株高度都不同程度地受到了抑制，且抑制程度与辐射剂量呈正相关，而10Gy则能促进根和真叶的生长。随着剂量的增高，死亡率增高，组培苗生长41d时的半致死剂量(LD50)为150Gy。各处理组培苗培养70d后，少量瓶内开花，出现花型、花色和花瓣变异。花型变异主要由对照的正常花形变为蝴蝶形。花色变异主要是颜色变浅，甚至变为白色。花瓣变异可由原来的单瓣变为重瓣花。以上结果表明，60Coγ射线辐射可以提高突变频率且诱变效应明显，有利于在大花高代育种中产生色彩丰富，花型、株型美观的变异类型     

60Coγ射线种子辐射对大花高代组培苗的生长及诱变效应

以0Gy、10Gy、50Gy、100Gy、150Gy和200Gy不同剂量的60Coγ射线辐射种子,研究其对大花高代组培苗生长影响的结果表明,在50～200Gy范围内,根和真叶的生长以及植株高度都不同程度地受到了抑制,且抑制程度与辐射剂量呈正相关,而10Gy则能促进根和真叶的生长。随着剂量的增高,死亡率增高,组培苗生长41d时的半致死剂量(LD50)为150Gy。各处理组培苗培养70d后,少量瓶内开花,出现花型、花色和花瓣变异。花型变异主要由对照的正常花形变为蝴蝶形。花色变异主要是颜色变浅,甚至变为白色。花瓣变异可由原来的单瓣变为重瓣花。以上结果表明,60Coγ射线辐射可以提高突变频率且诱变效应明显,有利于在大花高代育种中产生色彩丰富,花型、株型美观的变异类型。     

软枣猕猴桃原生质体培养与细胞团再生的初步研究

以软猕猴桃叶片、叶片愈伤组织为材料，研究了影响原生质体分离和培养的因素。结果表明，原生质体分离，酶液配方2优于配方1，成龄叶片优于幼龄叶片；培养方法以浅层培养法最好；改良MS液体培养基培养愈伤组织原生质体，5-7d出现第一次细胞分裂，14d出现第2次细胞分裂，30d形成多细胞团，55d形成肉眼可见的小愈伤组织。     

美味猕猴桃叶蛋白质电泳分析

１通过叶蛋白质凝胶电泳分析，首先研究了叶龄对蛋白质带型结构的影响，随着美味猕猴桃叶片的生长发育，可以看到河溶性多肽的渐进变化，对这些变化的研究能增进叶片发育过程中基因表达的理解。２）３个蛋白质带区可用于品种鉴定。应用这３个带区，可以把一些美味猕猴桃品种相互区别开来。然而仅利用这３个品种鉴定。应用这３个带区，可以把一些美味猴猴桃品种相互区别开来。然而仅利用这３个带区，还不能区别Ｆ１单个植株，这是因为     

GFP基因在软枣猕猴桃愈伤组织原生质体中瞬间表达的初步研究

用PEG介导法对游离出来的软枣猕猴桃原生质体进行遗传转化,成功地将绿色荧光蛋白(GFP)基因导入了原生质体,并获得了瞬间表达.结果表明,影响GFP基因转化的因素主要是材料的生理状态,PEG的种类和浓度;适宜的转化条件和方法为,将从白色、较为疏松愈伤组织中游离的原生质体,悬浮到质量分数为13%甘露醇的洗液(CPW13)中,置于45℃水浴中热激5min,再放在冰浴中迅速冷却;加入质粒,轻轻混匀后静止10min;逐滴加入质量分数40%PEG6000介导转化,终浓度为100g·L-1,在室温下放置20min;逐滴加入CPW13稀释转化后的原生质体,以避免PEG浓度剧烈变化造成细胞膜破裂.     

美味猕猴桃叶蛋白质电泳分析

１）通过叶蛋白质凝胶电泳分析，首先研究了叶龄对蛋白质带型结构的影响，随着美味猕猴桃叶片的生长发育，可以看到可溶性多肽的渐进变化，对这些变化的研究能增进对叶片发育过程中基因表达的理解。２）３个蛋白质带区可用于品种鉴定。应用这３个带区，可以把一些美味猕猴桃品种相互区别开来。然而仅利用这３个带区，还不能区别Ｆ＿１单个植株，这是因为双亲带型可以在Ｆ＿１植株中共同显现，而且由于基因重组，使Ｆ＿１植株的带型变得更为复杂。３）在Ｆ＿１群体中，可以观察到蛋白质带型的变异，同时还可以看到成带强弱的变化。可能是基因的剂量效应造成了成带强度的不同。