铁皮石斛以芽繁芽离体培养技术体系的建立

【目的】建立铁皮石斛以芽繁芽离体培养技术体系,为广西铁皮石斛良种选育及种苗繁殖提供技术支持。【方法】以广西桂平种、容县种和西林种3种野生铁皮石斛后代材料茎段为外植体,进行丛生芽诱导、增殖和壮苗生根培养,探讨不同消毒时间和不同激素配比对丛生芽诱导培养等过程的影响。【结果】3种材料外植体的最佳消毒时间为10min,污染率仅10．0％-20．0％;桂平种丛生芽最佳诱导培养基为MS＋2．0mg／L6-BA＋0．2mg／LNAA＋10％椰子汁,丛生芽诱导率7．8％;容县种和西林种丛生芽诱导最佳培养基为MS＋1．5mg／L6-BA＋0．2mg／LNAA＋10％椰子汁,丛生芽诱导率分别为23．1％和30．8％。3种材料丛生芽继代增殖最佳培养基为MS＋0．5mg／L6-BA＋0．2mg／LNAA＋10％椰子汁,平均增殖倍数为3～5倍;壮苗生根最佳培养基为1／2MS＋0．5mg／LNAA＋0．2mg／LIBA＋10％香蕉泥,生根率在95．0％以上;以松树皮为移栽基质,移栽成活率在90．0％以上。【结论】以桂平种、容县种和西林种3种野生铁皮石斛后代材料茎段为外植体均可建立以芽繁芽离体培养技术体系;在诱导培养基和继代培养基中增加继代次数,可提高铁皮石斛的诱导率和增殖倍数。     

文心兰的组织培养和移栽管理技术

以文心兰的侧芽为外植体,对侧芽的选择、处理,外植体的消毒方法、培养基的选择等技术进行研究．结果表明：最适合的材料为叶片还未展开的侧芽,二次消毒对文心兰侧芽消毒效果最好。义心兰理想的诱导培养基为MS＋6-BA5．0mg／L＋NAA0．5mg／L＋椰子水100mL／L．增殖培养基为MS＋6-BA2．0mg／L＋NAA0．2mg／L＋椰子水100mL／L,壮苗培养基为MS＋香蕉20g／L,生根培养基为1／2MS＋NAA1．0rng／L＋香蕉50g＋土豆20g／L＋AC2．0g／L。同时通过对炼苗时间、移栽前的处理及移栽后管理方法的综合研究．摸索出一套适合文心兰移栽的方法．移栽成活率达到90％以上．     

白芨组织培养与快速繁殖技术研究

以白芨侧芽和块茎为外植体,采用不同灭菌时间进行灭菌,筛选适宜的外植体和灭菌时间;以MS或1/2MS为基本培养基,附加不同浓度6-BA或NAA进行丛生芽诱导、增殖以及生根培养。结果表明,以白芨侧芽为外植体并采用0.2%升汞消毒灭菌8min的效果较好;侧芽的丛生芽诱导以培养基MS＋1.5mg/L 6-BA＋0.1mg/L NAA的效果较好;继代增殖以培养基MS＋2.0mg/L 6-BA＋0.2mg/L NAA较适合,30d为一个周期,增殖系数为5.0;生根培养基以1/2MS＋1.0mg/LNAA＋0.1mg/L 6-BA为好,生根率为83.3%。     

垂花蕙兰丛生芽途径的组织培养技术研究

以侧芽为外植体,对垂花蕙兰丛生芽途径的组织培养进行研究,结果表明,采用72％乙醇、0.1％升汞和15％次氯酸钠对侧芽进行3次消毒,存活率高达56％,尤其是在春季外植体消毒效果佳;在丛生芽诱导的过程中,6-BA浓度为4.0 mg · L -1时,丛芽诱导率可达100％且丛芽分化较多;在丛生芽增殖过程中,6-BA是影响垂花蕙兰丛生芽增殖的重要因素,6-BA 4.0 mg · L -1处理增殖系数为3.4,丛生芽较健壮,适合丛生芽增殖;培养基1/2MS＋NAA2.0 mg · L -1＋香蕉泥50 g · L -1＋AC1 g · L -1生根壮苗效果较好;苔藓是垂花蕙兰试管苗移栽较好的基质。     

文心兰切花品种南茜的组培生根诱导技术优化

为了建立南茜文心兰切花品种组培苗的生根优化技术体系,以该品种继代培养的丛生芽为材料,研究了培养基种类、激素种类和激素浓度配比对其生根诱导的影响。结果表明:1/2MS培养基添加6-BA细胞分裂素和NAA生长素有利于南茜文心兰的生根诱导,其最佳生根诱导培养基为1/2MS+0.3mg/L6-BA+1.2mg/L NAA+活性炭1g/L,丛生芽接种40d的生根率为98.30%,每株生根3～4条,根长0.5～2.5cm,芽苗生长整齐,平均株高约3.0cm,芽苗基部无侧芽和类原球茎产生。     

水榆花楸微型繁殖技术的研究

[目的]研究水榆花楸的微型繁殖技术。[方法]以带侧芽的水榆花楸茎段为外植体,研究不同外植体消毒时间、基本培养基及植物生长调节剂种类和浓度对水榆花楸侧芽诱导、丛生芽增殖及生根的影响。[结果]外植体的最佳消毒时间为7 min;侧芽的最佳诱导培养基为MS+KT 2.0 mg/L+IBA 0.2 mg/L;丛生芽的最佳增殖培养基为MS+KT 2.5 mg/L+IBA 0.1 mg/L;最佳生根培养基为1/2MS+IBA 0.5 mg/L。[结论]该研究为水榆花楸苗木的大规模工业化生产提供了技术支持。     

蝴蝶兰花梗离体培养中褐变的控制研究

该文以蝴蝶兰花后带腋芽花梗节为外植体,比较了附加不同激素的MS培养基以及不同培养条件对控制外植体褐变的影响。结果表明,采用1/2MS＋BA3.0mg/L＋NAA2.0mg/L＋10%椰子汁的配方对控制花梗褐变及诱导丛生芽效果最为显著。     

紫花月季组织培养与快速繁殖研究

[目的]建立适宜的紫花月季[Rosa chinensis Jacq.var.semperflorens（Curtis）Koehne]无性繁殖体系。[方法]以紫花月季茎为外植体,对适合月季丛生芽诱导的培养基和切取外植体的方式进行优化筛选。[结果]芽诱导的最适培养基为MS＋1.0mg/L6-BA＋0.2mg/L GA3;丛生芽增殖的适宜培养基为MS＋3.0mg/L6-BA＋0.1mg/L NAA;再生芽在MS＋0.5mg/L NAA培养基中生根效果最好。1个侧芽在经历21d丛生芽诱导和28d芽增殖培养后,可获得90多个再生芽。[结论]该研究可为实现紫花月季育苗的规模化和产业化生产提供参考。     

香根草外植体的选择及植株再生试验

为建立香根草组织培养及植株再生体系,分别选取生长健壮无病虫害的植株茎杆、根、叶和幼嫩芽不同部位进行外植体选择及愈伤组织诱导,以及香根草外植体消毒方法和激素处理及培养基对丛生芽诱导的影响试验.结果表明,茎杆、根、叶作为外植体,诱导不出愈伤组织.幼嫩芽是最佳香根草外植体的选择.0.1％升汞对各部位处理效果成功率在65％以上,幼嫩芽消毒浸泡8 min成功率达88％.在MS＋6-BA 1.5 mg/L＋NAA 0.1 mg/L的培养基上培养25 d幼芽愈伤组织诱导率为100％.在MS＋6-BA 0.8 mg/L＋NAA 0.2 mg/L培养基上培养20 d诱导丛生芽效果最好,增殖系数为6.4.生根培养基选用1/2 MS＋NAA 0.3 mg/L＋IAA 0.1 mg/L为最佳,生根率达90％以上.     

文心兰茎尖诱导丛生芽高频率植株再生

以文心兰茎尖为外植体,通过基本培养基(MS、1/2MS、1/2 N6)、植物激素(6BA、NAA)、培养条件(有机添加物、糖、培养物状态)等关键因子对文心兰丛生芽诱导、增殖、生根各培养阶段影响的试验,探讨了文心兰以丛生芽途径再生植株的关键技术.结果表明:茎尖诱导丛生芽较适培养基配方为1/2 MS+6BA 2.0 mg·L-1 +NAA 0.1 mg·L-1,诱导率为84.6%;丛生芽在MS+6BA 2.0 mg·L-1 +NAA 0.1 mg·L-1 +蔗糖30 g·L-1培养基中增殖效果较好,增殖系数为5.5;株高2.0～3.0 cm的试管苗是丛生芽增殖的最佳培养材料;生根培养基适宜配方为1/2MS+IBA0.5 mg·L-1 +苹果汁100 g·L-1 +活性碳0.5 g·L-1 +蔗糖20 g·L-1,生根率为100%.     

利用丛生芽增殖途径对大花蕙兰进行离体快繁

以大花蕙兰的侧芽为外植体,研究了利用丛生芽途径快速繁殖大花蕙兰的技术。结果表明：通过丛生芽增殖途径也能达到快速繁殖大花蕙兰的目的,在1／2MS＋6-BA3．5mg·L-1＋NAA0．2mg·L-1＋卡拉胶8g·L-1＋蔗糖30g·L-1＋φ=10％的椰子水（CW）或w=10％的香蕉匀浆的培养基上,丛生芽增殖较快,以40d为1个继代周期,1年最少可增殖9次,以每个培养周期增殖3．6倍计,1个芽1年可繁殖出3．69≈10万株苗;在丛生芽增殖培养过程中,会出现褐化现象,但并未对大花蕙兰丛生芽的增殖产生不良影响;添加妒=10％的CW或W=10％的香蕉匀浆有利于提高丛生芽的增值率及其生长势;试管苗在1／2MS＋NAA1．0mg·L-1＋AC1g·L-1＋卡拉胶8g·L-1＋蔗糖30g·L-1＋φ=10％的CW的培养基上生根良好,生根率为86．1％;试管苗移栽在水苔上的成活率达92．5％。     

莫氏兰的组织培养

以花芽为外植体进行莫氏兰的组织培养研究.结果表明:莫氏兰化芽接种在MS+6- BA 5.0 mg·L-1+NAA0.5 mg·L-1的培养基中,40 d后可分化成原球茎或丛生芽;原球茎在MS +6-BA3.0 mg·L-1+NAA 0.3mg· L-1+φ =10％的椰子水的培养基上,增殖效果最好;小芽在1/3MS+花...     

红星凤梨组织培养与快速繁殖

以红星凤梨为试材,研究了生长调节物质、外植体类型、抑菌剂等对离体不定芽再生的影响。在MS＋TDZ2．0mg·L^-1＋NAA0．5mg·L^-1培养基上,腋芽、顶芽和叶片均可以诱导再生不定芽,腋芽和顶芽的不定芽再生频率相差不大,均为37．2％-53．3％,但叶片不定芽再生频率较低,仅为2．8％-13．3％MS＋0．2—0．5mg·L^-1 TDZ＋0．05mg·L^-1 NAA＋100g·L^-1椰子水为适宜的不定芽增殖培养基;试管苗生根的适宜培养基为MS＋IBA2．0mg·L^-1＋100g·L^-1椰子水;不定芽继代培养时,在灭菌后的培养基中加入25—50mg·L^-1青霉素G钠能有效控制内生菌的污染。     

宿根福禄考组织培养快速繁殖技术

以宿根福禄考茎尖和茎节作外植体进行离体快速繁殖,结果显示：无菌芽诱导的适宜培养基为MS＋1．0mg．L^-1BA＋3％糖＋6．5g·L^-1琼脂粉,茎节在该培养基上无菌芽的诱导率为87．9％;丛芽增殖适宜培养基为MS＋0．5mg．L^-1BA＋3％糖＋6．5g·L^-1琼脂粉,增殖率为6．8;生根的适宜培养基为1／2MS＋0．3mg·L^-1IBA＋0．3mg·L^-1NAA＋2％糖＋6．5g·L^-1琼脂粉,试管苗能在该培养基上分化出良好的根系,生根率达91．7％。     

激素和添加物对大花蕙兰组培快繁的影响

为了实现大花蕙兰优良个体的快速繁殖,本文采用外源激素配合肌醇与椰汁的方法研究了大花蕙兰茎段的不定芽分化、增殖及试管苗的生根。结果表明：MS＋6-BA1．5mg／L＋NAA0．5mg／L＋肌醇100mg／L＋活性炭1g／L＋蔗糖3％有利于大花蕙兰不定芽的分化,并可实现一步成苗;在1／2MS＋6-BA0.3mg／L＋NAA...     

白兰花组织培养技术的初步研究

以白兰花半木质化的侧芽为外植体,用两种灭菌剂配合使用比单一使用效果要好,污染率从100%下降到20%以下;最佳芽诱导培养基为1/2MS+6-BA1.0mg/L+2,4-D0.1mg/L+KT0.5 mg/L+椰子水5%+蔗糖30g/L+琼脂5.8 g/L;最佳增殖培养基为MS+6-BA1.0mg/L+NAA0.1mg/L+KT0.1mg/L+GA30.1mg/L+蔗糖6%+琼脂粉5.8g/L.     

玉林大蒜茎尖脱毒与繁殖技术研究

以带1～3个叶原基、不同大小的玉林大蒜鳞茎尖为外植体,在附加不同激素配比（1.0～2.0mg/L 6-BA、0.1～0.5mg/L NAA）的MS和B5培养基上进行培养,结果表明：芽初代诱导的适宜培养基为B5＋1.5mg/L 6-BA＋0.5mg/L NAA,出芽率为96%;芽增殖的适宜培养基为B5＋0.5mg/L 6-BA＋0.05mg/L NAA,增殖倍数为4.5,增殖效果最佳。ELISA法病毒检测结果表明,选取剥离0.5～0.6mm带有1～2个叶原基的茎尖进行培养,试管苗脱毒率达90%以上,脱毒效果明显。     

马铃薯根组织培养与植株再生

利用马铃薯温室生长幼芽和组培根组织进行了以MS为培养基、附加不同种类和浓度生长素和细胞分裂素组成的8种培养基,在散光和黑暗条件下培养诱导愈伤组织,在3种分化培养基上培养分化再生植株的试验。结果表明,青薯5号和青薯8号温室生长幼芽根组织接种MS＋2,4-D 2mg/L＋BAP 3mg/L＋NAA 0.5mg/L＋蔗糖30g/L＋琼脂7g/L培养基上散光条件下培养45-90d产生愈伤组织,诱导率为0.024%;青薯5号愈伤组织接种1/2MS＋2,4-D 0.5mg/L＋BAP 2mg/L＋KT 2mg/L＋GA30.5mg/L＋ZT0.2mg/L＋蔗糖20g/L＋琼脂7g/L培养基上培养80d分化出再生植株,分化率为6.25%,再生植株切成一叶茎段接种于MS＋BAP 0.1mg/L＋IAA 10mg/L＋GA30.1mg/L＋白糖30g/L＋琼脂6g/L培养基上培养3周长成株高8-10 cm、叶7-10片、叶色深绿和根系发达的小植株。     

青岛大花脱毒种苗快繁技术研究

【目的】探讨啤酒花品种青岛大花脱毒苗植株再生技术,以期获得青岛大花脱毒苗快速繁殖的便捷途径。【方法】以青岛大花脱毒苗的单芽茎段为外植体,分别以不同水质（自来水、凉开水、蒸馏水、当地井水）、不同前茬和简易营养液处理（带芽根茬、带芽根茬＋简易营养液、新鲜培养基）及不同激素组合进行芽诱导和植株再生。【结果】在芽诱导及植株再生培养过程中,以当地井水进行外植体培养的效果较好,虽然其诱导芽数、新增芽数、增殖倍数稍低于对照蒸馏水,但生根茎段数、生根率、平均根长、茎粗和株高均最高,其次为凉开水处理;自来水处理的生根茎段数、诱导芽数、新增芽数、增殖倍数、株高等均明显低于蒸馏水对照。在前茬培养基上添加10mL简易培养液对外植体培养20d,其诱导芽数、新增芽数、增殖倍数、株高均明显高于新鲜固体培养基处理,且叶色均浓绿。在不同激素组合中,随着6-BA、IAA浓度的增加,单芽茎段的诱导芽数、生根率、增殖倍数呈先降低后增加的趋势,其中以原继代培养的激素组合6一BA0．1mg／L＋IAA0．2mg／L的诱导芽数、生根率、增殖倍数最高,其次为激素组合6-BA0．01mg／L＋IAA0．02mg／L。【结论】在外植体诱导和植株再生培养中,可用当地井水、凉开水作为培养基介质取代蒸馏水;继续利用前代培养基并留茬、再适量添加简易培养液对外植体进行培养,可有效提高脱毒苗的增殖倍数,且再生苗质量不受影响;可使用含低浓度激素组合（6-BA0．01mg／L＋IAA0．02mg／L）进行脱毒试管苗芽诱导和植株再生培养,从而节省生产成本。