广东道地中药何首乌的组织培养

以广东德庆何首乌为试材,研究叶片的愈伤组织诱导分化及茎尖的增殖快繁技术。结果表明:以MS为基本培养基,2,4-D是诱导愈伤组织的必需激素,1～2 mg/L有利于叶片愈伤组织诱导;分化培养基BA1～2 mg/L+NAA0.5～1 mg/L浓度组合分化能力低,未分化成芽;培养基BA2 mg/L+NAA0.5 mg/L对茎尖不定芽的诱导效果较好;生根培养基1/2 MS,生根率100%。     

长白山野生梅花草组培快繁技术研究

用长白山野生梅花草嫩叶为外植体,进行了组织培养研究,建立了无性繁殖体系。结果表明:适于愈伤组织诱导培养基为改良MS+BA 1.0 mg/L+NAA 0.5 mg/L,愈伤组织诱导率达65%;适于不定芽分化的培养基为改良MS+BA 1.0 mg/L+KT 1.0 mg/L+NAA 0.3 mg/L,不定分化效率达11.2个/g;适于生根诱导的培养基为1/2MS+NAA 0.05 mg/L+IBA 0.05 mg/L,生根达97.2%;适于练苗的基质组合为1/2珍珠岩+1/2蛭石,苗木成活过90%以上。     

一品红组培苗快繁技术的研究

以一品红带芽茎段、叶片为外植体,研究了不同激素浓度配比的MS培养基对愈伤组织、芽的分化及增殖和试管苗生根的不同效应。结果表明:最佳愈伤组织诱导培养基为MS+BA0.2mg/L+NAA 0.5mg/L+蔗糖30g/L+琼脂7.5g/L(pH 5.6),诱导率达到92.5%;芽的分化最佳培养基为MS+BA 2.0mg/L+NAA 0.2mg/L+蔗糖30g/L+琼脂7.5g/L,不定芽的诱导率达到83.3%;芽的增殖培养基为MS+BA 1.0mg/L+NAA 0.2mg/L+蔗糖30g/L+琼脂5g/L,增殖系数为10.8;而最佳生根培养基为1/2MS+BA 0.2mg/L+NAA 0.5mg/L+蔗糖30g/L+琼脂7.5g/L,每芽生根数平均为3.5条。该研究结果为一品红组培苗的工厂化生产提供了可靠的技术指标。     

萱草再生体系技术建立的研究

以萱草的根茎为材料,进行愈伤组织诱导和分化,试管苗的生根、移栽和移植的研究,建立萱草再生体系技术。结果证明:MS+BA0.4mg/L+NAA0.1mg/L+2,4-D0.1mg/L是愈伤组织诱导培养的理想培养基;MS+NH_4H_2PO_450mg/L+BA1.0mg/L+NAA0.1mg/L是愈伤组织增殖继代培养的理想培养基;MS+AgNO_30.5mg/L+GA_30.5mg/L+BA0.5mg/L+NAA0.1mg/L是愈伤组织分化培养的理想培养基;1/2MS+NAA0.1mg/L+IAA0.2mg/L是不定芽生根培养的理想培养基。在河沙中试管苗易移栽成活;移植到花坛中的试管苗根系发达、生长旺盛。     

白花紫露草的组织培养与植株再生体系的建立

以白花紫露草嫩茎为材料,进行了愈伤组织诱导、分化、试管苗生根、试管苗移栽所需条件的研究。结果表明：1/2MS＋BA 0.5 mg/L＋NAA 0.2 mg/L是诱导愈伤组织的理想培养基;MS＋BA 1.0 mg/L＋2,4-D 0.5 mg/L是诱导愈伤组织形成,同时具有分化能力愈伤组织的理想培养基;1/2MS＋BA 0.2 mg/L＋NAA 0.1 mg/L是诱导愈伤组织和不定芽分化的理想培养基;1/2MS＋IAA 0.3 mg/L是生根培养的理想培养基;以炉灰渣为试管苗的移栽扦插基质,移栽成活率为98%,扦插成活率为91%。     

紫丁香离体再生体系研究

以紫丁香枝条为材料,对紫丁香离体培养及再生体系进行研究,探讨不同激素组合对紫丁香无菌芽诱导、愈伤组织的产生、分化、增殖以及生根的影响。结果表明:适合紫丁香无菌芽和各种外植体形成愈伤组织、分化和增殖的培养基为:MS+BA 1.0 mg/L+NAA 0.1 mg/L;生根培养基为:MS+BA 0.5 mg/L+NAA 0.1 mg/L。     

番茄真叶愈伤组织诱导及植株再生研究

对番茄外植体诱导愈伤组织、愈伤组织分化和根的诱导条件进行研究.结果表明:适合外植体形成愈伤组织的培养基为MS+BA 1.0 mg/L+NAA 0.1 mg/L;适合愈伤分化的培养基为MS+BA 3.0 mg/L+IAA 0.2 mg/L;适合生根的培养基为1/2MS+IAA 0.1 mg/L.     

甘蔗幼叶组织培养中培养基的优化

对不同激素浓度质量组合对甘蔗愈伤组织的诱导、不定芽的分化和生根的效果进行研究。结果表明:MS+2,4-D 2.0 mg/L培养基对诱导愈伤组织和继代增殖较适宜;MS+NAA0 mg/L+BA 1.0 mg/L培养基对愈伤组织分化不定芽的效果为佳;1/2MS+NAA 0.5 mg/L+IBA 1.0 mg/L培养基对生根较好。通过这3个培养基培养出的甘蔗组培苗长势良好,表现为叶面积适宜、干物质积累多等方面。     

连香树再生体系的建立

对连香树进行无菌苗萌发和植株再生进行了研究.结果表明:以5～6月为最适取材季节;最佳外植体为当年生枝条顶芽下第3～4腋芽;腋芽诱导的适宜培养基为MS+BA1.0 mg/L+NAA 1.0 mg/L;适宜无菌播种的培养基为1/2MS+BA 0.5 mg/L+NAA 0.1 mg/L;适宜增殖培养基为MS+BA 0.5 mg/L+NAA 0.2 mg/L;适宜诱导愈伤的培养基为MS+BA 0.5 mg/L+NAA 0.5 mg/L;诱导分化的适宜培养基为MS+BA 1.0 mg/L+NAA 0.5 mg/L;生根培养基为1/2MS+NAA 0.5 mg/L.     

大花蕙兰组培快繁技术研究

以大花蕙兰茎尖为外植体,进行组织培养,结果表明,生长点可诱导形成愈伤组织及再生植株.经试验筛选出各培养阶段最适宜的培养基为:愈伤组织诱导培养基:MS BA1.5～2 mg/L;分化培养基:MS BA1.5mg/L NAA 0.5mg/L;生根培养基:1/2MS(大量元素减半) NAA1.5mg/L 0.5%活性炭.     

红莲子草耐寒无性系选育研究

为满足人们观赏栽培的需求,以能越冬的红莲子草嫩茎为材料,进行愈伤组织诱导、低温处理、冷冻处理、复冻处理,愈伤组织分化、试管苗生根与继代增殖培养,以及试管苗移栽和定植的研究,建立起红莲子草耐寒无性系。结果证明：MS＋BA0.4mg/L＋2,4-D1.0mg/L＋NAA0.5mg/L＋蔗糖30g/L为嫩茎愈伤组织诱导和耐冻愈伤组织继代增殖培养的理想培养基;1/2MS＋蔗糖30g/L是复冻后增殖培养的愈伤组织分化的理想培养基;N6＋NAA0.1mg/L＋IAA0.4mg/L＋蔗糖15g/L是生根培养和生根继代增殖培养的理想培养基;移植到水库岸边的试管苗保持了红莲子草的所有生物学性状,且连续3年正常越冬。     

枣幼胚愈伤组织诱导和胚状体发生

以陇东马牙枣盛花后50～60d的幼胚为试材,采用三步培养法诱导胚状体。结果表明:诱导愈伤组织适宜的培养基为Nitsch培养基上附加BA 1.0mg/L+2,4-D 1.5mg/L+蔗糖30g/L+琼脂4.0g/L。诱导胚状体培养基宜选用,MS+BA 1.0mg/L+IBA 0.2mg/L+LH0.5mg/L+VC 0.1mg/L+蔗糖30g/L+琼脂4.0g/L,并获得完整植株。     

番茄离体培养及快繁殖技术研究

以番茄种子为试材,采用正交实验方法配制不同的培养基,研究不同浓度的6-BA、NAA、IBA对不定芽诱导及丛生芽增殖的影响.结果表明:愈伤组织诱导的适宜培养基为:MS+6-BA 2.0mg/L+IBA 0.3 mg/L+蔗糖30 g/L;不定芽诱导适宜培养基为:MS+6-BA3.0 mg/L+NAA 0.1 mg/L+蔗糖30 g/L;丛生芽增殖的适宜培养基为:MS+6-BA 1.0mg/L+NAA 0.01 mg/L+蔗糖30 g/L;生根培养基为:1/2 MS+NAA 0.6mg/L+蔗糖30 g/L.     

袋鼠花的组织培养

 对袋鼠花( Anigozanthos) 组织培养研究表明: 外植体消毒以0. 1 %升汞溶液浸泡, 7～8 min 为宜; 不同浓度激素对其愈伤组织形成、分化以及根的形成有不同的影响, 随着62BA 浓度的增加, 愈伤组织的诱导率有增加的趋势; 生长素与分裂素的比例决定着愈伤组织的分化; 小苗在1/ 2 MS 培养基上生根最好, 6-BA 对其生根有抑制作用。各培养阶段最适培养基: (1) 愈伤, MS + 6-BA 1 mg/L + NAA 0. 1 mg/L +3 %活性炭; (2) 芽诱导, MS + 6-BA 0. 5 mg/L + NAA 0. 5 mg/L ; (3) 生根, 1/ 2 MS + IBA 0. 2 mg/L。     

红掌愈伤组织增殖分化条件的优化

以红掌愈伤组织为材料,研究影响红掌愈伤组织增殖和分化以及芽增殖的因素。结果表明:以MS+6-BA1.0 mg/L+KT 0.3 mg/L+蔗糖30 g/L+琼脂8 g/L为红掌愈伤组织增殖和分化的最佳培养基,培养到8周绝对生长速度达到910.31%、分化率达到100%,到150 d时分化指数达到24.17;在芽增殖培养试验中,以1/2 MS+6-BA2.0 mg/L+NAA 0.5 mg/L+KT 0.1 mg/L+蔗糖30 g/L+琼脂8 g/L为适宜培养基。在培养方式上,液体培养优于固体培养。     

苜蓿高频再生体系的建立

以10个品种苜蓿无菌苗的子叶和下胚轴为外植体,研究了不同培养基、不同激素种类和配比对愈伤组织诱导率及分化率的影响。结果表明:国产苜蓿下胚轴外植体愈伤组织分化率最高;愈伤组织诱导最适培养基为MS盐+UM维生素+2mg/L 2,4-D+0.25mg/L KT+2g/L水解酪蛋白+6g/L琼脂+30g/L蔗糖;愈伤组织最适分化培养基为MS+0.5mg/L KT+0.1mg/L NAA;最适生根培养基为1/2MS。