Gisela大栅桃矮化砧木的微体繁殖及其对根癌农杆菌的抗性

德国Ｇｉｓｅｌａ１、５、７系列矮化砧木在ＭＳ＋ＢＡ１．３２μμｍｏｌ的培养基上能快速，在１／２ＭＳ＋ＩＢＡ１．５μｍｏｌ培养基上生根率可达７０％以上，移栽于温室后的成活率在６０％以上，从温室移栽到大田的成少这６５％。在大田条件下在活６７００余株，成功地进行了微体繁殖。离体条件下测定结果表明，Ｇｉｓｅｌａ５、７对根癌病的抗性高于Ｃｏｌｔ。     

甜樱桃矮化砧木吉塞拉(Gisela)的离体叶片再生植株研究

用甜樱桃矮化砧木吉塞拉（Ｇｉｓｅｌａ）５号、７号（Ｐｒｕｎｕｓ ｃｅｒａｓｕｓ ｘ Ｐ．ｃａｎｅｓｃｅｎｓ）无菌生根苗的叶片作为外植体，进行不定芽再生植株的研究。以ＷＰＭ＋ＢＡ ５～７ ｍｇ／Ｌ＋ＩＢＡ ０．１～１．０ｍｇ／Ｌ做培养基，不定芽再生率高达７０％；吉塞拉５号的再生率明显高于７号；培养基中高浓度的细胞分裂素抑制吉塞拉７号的不定芽再生。不定芽的增殖、生根、温室锻炼、大田移栽均已获得成功，同时观察了植株在大田的生长状况。该成果可用于樱桃转基因育种和多倍体植株培育的研究。     

几种菊花茎尖培养和移栽技术研究

用ＭＳ基本培养基附加植物生长调节剂，进行菊花离体快速繁殖试验．以茎尖为外植体先在附加不同浓度的植物激素的培养基上进行增殖培养，然后将苗移至生根培养基中进行发根培养。结果表明：诱导不定芽最适的增殖培养基为ＭＳ十６－ＢＡ６ｍｇ／Ｌ＋ＧＡ３ｍｇ／Ｌ＋３％糖＋０．７％琼脂；最佳生根培养基为１／２ＭＳ大量元素＋肌醇＋有机物＋１／２Ｆｅ盐＋０．３ｍｇ／ＬＮＡＡ＋１．５％糖；移栽以珍珠岩为过渡基质，过渡期短，成活率高。     

蟆叶秋海棠的叶柄培养和植株再生

以叶柄为外植体,研究了蟆叶秋海棠的离体快繁技术。结果表明：附加ＢＡ０．５～２．５ｍｇ．Ｌ＾－１和ＩＡＡ０．１ｍｇ．Ｌ＾－１的ＭＳ培养基可诱导叶柄外植体可产生大量不定芽。采用ＭＳ＋ＢＡ０．５ｍｇ．Ｌ＾－１＋ＩＡＡ０．１ｍｇ．Ｌ＾－１的培养基进行继代培养,每４～６周可扩大增殖１０倍左右。在无激素的ＭＳ培养基中,试管苗６天即可生根,并且根系粗壮。幼苗移栽成活率约９０％。     

猕猴桃的组织培养和快速繁殖

１ 植物名称 金魁猕猴桃（Ａｃｔｉｎｉｄｉａ ｄｅｌｉｃｉｏｓａｖａｒ．Ｊｉｎ Ｋｕｉ）２ 材料类别 嫩茎３ 培养条件 培养基：①ＭＳ＋ＺＴＷ．０ｍｓ／Ｌ；②ＭＳ＋ＺＴ１．０ｍｐ／Ｌ；＠ ＭＳ＋６ＢＡ２．０ｍｇ／Ｌ＋ＮＡＡ ０．１ｍｇ／Ｌ；④１／２ＭＳ＋ＩＢＡ０．５～０．７ｍｇ／Ｌ。 蔗糖（市售白砂糖）浓度①～③培养基为３．０％，④培养基为 ２．０％；琼脂浓度为 ０．６５％～０．７０％，ｐＨ５．８～６．０，培养温度 ２５～２８℃，每天光照 １３ｈ，光照强度 １５００～２０００ １Ｘ。４ 生长与分化情况４．１ 愈伤…     

蟆叶秋海棠的叶柄培养和植株再生

以叶柄为外植体,研究了蟆叶秋海棠的离体快繁技术。结果表明：附加ＢＡ０．５～２．５ｍｇ·Ｌ－１和ＩＡＡ０．１ｍｇ·Ｌ－１的ＭＳ培养基可诱导叶柄外植体产生大量不定芽。采用ＭＳ＋ＢＡ０．５ｍｇ·Ｌ－１＋ＩＡＡ０．１ｍｇ·Ｌ－１的培养基进行继代培养,每４～６周可扩大增殖１０倍左右。在无激素的ＭＳ培养基中,试管苗６天即可生根,并且根系粗壮。幼苗移栽成活率约９０％。     

牡丹离体快繁技术研究

以“洛阳红”和“姚黄”等品种为试材,对牡丹的离体快繁技术进行了研究。结果表明：牡丹芽培养的适宜外植体是２月份取材的休眠芽。附加ＢＡｌｍｇ．Ｌ＾－１和ＧＡ０．５ｍｇ．Ｌ＾－１的改良ＭＳ培养基对牡丹芽的增殖和生长最有效。１／２ＭＳ＋ＩＢＡ１ｍｇ．Ｌ＾－１培养基有利于牡丹试管苗生根。在较低温度下,以腐殖土作基质,牡丹试管的移栽成活率达４８％。     

牡丹离体快繁技术研究

以“洛阳红”和“姚黄”等品种为试材,对牡丹的离体快繁技术进行了研究。结果表明：牡丹芽培养的适宜外植体是２月份取材的休眠芽。附加ＢＡ１ｍｇ·Ｌ－１和ＧＡ０．５ｍｇ·Ｌ－１的改良ＭＳ培养基对牡丹芽的增殖和生长最有效。１／２ＭＳ＋ＩＢＡ１ｍｇ·Ｌ－１培养基有利于牡丹试管苗生根。在较低温度下,以腐殖土作基质,牡丹试管苗的移栽成活率达４８％。     

西瓜子叶离体培养获得再生植株

３个西瓜品种在无菌培养下，用５天左右苗龄的子叶作为外值体，在ＭＳ＋５．０ｍｇ／ＬＢＡ＋０．５ｍｇ／ＬＩＡＡ培养基上分化出营养胚，分化率达５０％以上。营养胚芽在ＭＳ＋０．２ｍｇ／ＬＫＴ培养基中增长，在ＭＳ＋０．１ｍｇ／ＬＮＡＡ培养基中生根，成为完整植株。上述离体培养程序，是生物基因转移工程的最佳配套方法。     

刺梨试管繁殖技术研究

用刺梨茎进行试管繁殖，采用的培养基有３种；１．繁殖无菌试管苗及继代繁殖用ＭＳ＋１．５％蔗糖＋０．５％琼脂粉＋０．５ｍｇ／ｋｇＢＡ；２．促进继代繁殖丛芽伸长生长用ＭＳ＋１．５％蔗糖＋０．５％琼脂粉＋１ｍｇ／ｋｇＢＡ＋０．２ｍｇ／ｋｇＩＡＡ；３．诱导试管苗生根用１／２ＭＳ＋１．５％蔗糖＋０．５琼脂粉＋２ｍｇ／ｋｇＩＡＡ。经过无菌培养物的建立、抗黄化苗的筛选、继代繁殖、丛芽伸长培养、诱导生根、试管苗移栽     

埃斯(Ace)苹果的离体培养及繁殖

埃斯（Ａｃｅ）苹果的离体培养及繁殖１植物名称苹果品种埃斯。２材料类别多年生树茎尖生长点。３培养条件（１）起始培养基：ＭＳ＋６－ＢＡ３．０ｍｇ／Ｌ＋ＮＡＡ０．０５ｍｇ／Ｌ＋ＣＨ３００ｍｇ／Ｌ＋３％食用绵白糖；（２）增殖培养基：ＭＳ＋６－ＢＡ１．５ｍｇ／...     

芦荟的组织培养

以美国“翠叶”芦荟（Ａ．ｂａｒｂａｄｅｎｓｉｓ Ｍｉｌｌ）为试材，研究芦荟的组培快繁，结果表明，无菌材料的获得以ＭＳ＋ＢＡ３＋ＮＡＡ０．２为最佳。快速快殖阶段以ＭＳ＋ＢＡ１＋Ａｄ５＋ＮＡＡ０．２＋５０ｇ／Ｌ蔗糖为最佳，既有利于芽苗增殖，又有利于芽苗长高。生根培养用１／２ＭＳ＋ＢＡ０．１＋ＩＢＡ２－３，１０～１５ｄ内可长出３～４条根。     

厚环乳牛肝的原生质体分离与再生

探讨了外生菌根菌耳环乳牛肝（Ｓｕｉｌｌｕｓｇｒｅｖｉｌｌｅｉ）的原生质体制备及再生条件。用ＭＹＧ培养基培养菌丝７天、宋用１．５％Ｌｙｗａｌｌｚｙｍｅ，以０．６ｍｏｌ甘露醇为稳渗剂，在酶解液ｐＮ值５．５，温度３１℃，酶解４ｈｒ的条件下，每０．１ｇ湿菌丝的原生质体产量这６×１０￣６／ｍｌ。用ＳＯ培养基培养菌丝能提高原生质体产量，但再生率下降。综合产量和再生率考虑以ＭＹＧ培养菌丝效果较好。     

酸枣叶片不定植株的诱导

从酸枣实生苗叶片获得再生不定植株，在ＷＰＭ附加ＴＤＺ２．０ｍｇ．ｌ＾－１和ＩＡＡ０．５ｍｇ．ｌ＾－１的培养基上获得了４７．６％的不定梢再生率。不定梢转移到培养基ＭＳ＋ＢＡ０．５ｍｇ．ｌ＾－１上增殖，在１／２ＭＳ＋ＩＢＡ０．３ｍｇ．ｌ＾－１＋蔗糖２％培养基上诱导生根，仅获得１３．１％的生根经。     

花叶万年青的组织培养

以“夏雪”品种为试材,研究花叶万年青的组培快繁,结果表明,无菌材料的获得以ＭＳ＋ＢＡ５＋ＩＢＡ０．２为最佳。快速繁殖阶段以ＭＳ＋ＢＡ５＋Ａｄ１－１０＋ＩＢＡ０．１－０．２＋３０ｇ／Ｌ糖为最佳,６－ＢＡ与ＩＢＡ的比值在１０～５０倍为宜。生根前一代用ＭＳ＋ＢＡ１－５＋ＩＢＡ０．１－０．２＋３０ｇ／Ｌ糖组合有利于芽苗长高,生根培养用１／２ＭＳ＋ＩＢＡ１＋６－ＢＡ０．１,在快繁阶段,接种物切块先固体培养７～１０ｄ,再转入同配方的液体培养基更有利于芽苗增殖。     

苹果矮化砧木M9的幼胚培养

Ｍ９的杂种幼胚需７０ｄ以上的发育期才具备发芽能力；在ＭＳ＋ＢＡ２．０ｍｇ．１＾－１＋ＧＡ３２．０ｍｇ．１＾－１琼脂培养基上，８０ｄ胚龄的幼成苗率达５０．１％；摘除子叶促进了幼胚的成苗；６０ｄ、４℃低温处理可将幼胚成苗率为１１．７％提高到６８．９％。     

酸枣叶片不定植株的诱导

从酸枣实生苗叶片获得再生不定植株，在 ＷＰＭ附加 ＴＤＺ ２．０ ｍｇ· ｌ~(－１)和 ＩＡＡ０．５ ｍｇ· ｌ~(－１)的培养基上获得了４７.６％的不定梢再生率。不定梢转移到培养基ＭＳ＋ＢＡ ０．５ ｍｇ·１~(－１)上增殖，在１／２ＭＳ＋ＩＢＡ０．３ｍｇ·１~(－１)＋蔗糖２％培养基上诱导生根，仅获得１３．１％的生根率。     

西瓜高效组织培养再生体系的初步研究

以不同基因型材料的西瓜品种为试材，用ＭＳ、Ｍｉｌｌｅｒ、Ｎ６与不同激素配比的培养基，初步建立了西瓜离体组培再生体系。结果表明，不同浓度的ＭＳ培养基均可长出无菌苗，但随着ＭＳ培养基营养元素浓度的增大，无菌苗生长发育受到延迟和抑制作用加强，其中以 １／２ ＭＳ＋ ０．５～２ ｍｇ／Ｌ ＢＡ＋ ０． ｍｇ／Ｌ ＮＡＡ长出的无菌苗作外植体诱导愈伤组织最快，改良的 ＭＳ（ＭＳＩ＋ ２ ｍｇ／Ｌ ＢＡ＋０．１ｍｇ／ＬＮＡＡ）是西瓜愈伤组织诱导的最适培养基，改良的ＭＳ（ＭＳＩ＋２ｍｇ／ＬＢＡ＋０．１ｍｇ／ＬＮＡＡ＋５ ｍｇ／ＬＡｇＮＯ３）是外植体诱导分化不定芽的最适培养基，离子束等物理因子处理愈伤组织发现对诱导分化不定芽具有刺激和促进作用。     

花叶万年青的组织培养

以“夏雪”品种为试材,研究花叶万年青的组培快繁,结果表明,无菌材料的获得以ＭＳ＋ＢＡ５＋ＩＢＡ０．２为最佳。快速繁殖阶段以ＭＳ＋ＢＡ５＋ＡＤ（１－１０）＋ＩＢＡ（０．１－０．２）＋３０（Ｇ／Ｌ）糖为最佳,６－ＢＡ与ＩＢＡ的比值在１０～５０倍为宜。生根前一代用ＭＳ＋ＢＡ（１－５）＋ＩＢＡ（０．１－０．２）＋３０（Ｇ／Ｌ）糖组合有利于芽苗长高,生根培养用１／２ＭＳ＋ＩＢＡ１＋６－ＢＡ０．１,在快繁阶段     

金边富贵竹的茎段培养及试管繁殖

以金边富贵竹带腋芽的茎段为外植体进行试管繁殖，筛选出各培养阶段适宜的培养基分别为：（１）腋芽萌生，ＭＳ＋ＢＡ２．０－２．５ｍｇ／Ｌ＋椰子水１０％；（２）丛生芽分化民代，ＭＳ＋ＢＡ３．０－３．５ｍｇ／Ｌ＋ＮＡＡ０．０２ｍｇ／Ｌ；（３）生根，ＭＳ＋ＩＢＡ２．０－３．０ｍｇ／Ｌ＋ｇａ３１．５ｍｇ／Ｌ＋活性碳０．５％。