花生除草剂药害解毒试验研究

在水稻—花生轮作区,稻田过量施用除草剂二氯喹啉酸后,土壤中残留的二氯喹啉酸可抑制后茬花生的生长。为减缓二氯喹啉酸对花生生长的影响,研究三十烷醇、碧护(赤·吲乙·芸薹,0. 135%赤霉素,0. 000 52%吲哚乙酸,0. 000 31%芸薹素内酯,德国阿格福莱农林环境生物技术股份有限公司)对花生二氯喹啉酸药害的解毒效果。田间试验表明,喷施解毒剂三十烷醇、碧护对花生二氯喹啉酸药害具有较好的缓解作用,产量分别增加31. 7%、40. 1%,但仍不能彻底消除残留药害。鉴于目前尚缺乏有效的针对二氯喹啉酸药害的解毒剂,建议在水稻—花生轮作区尽量避免对前茬水稻田使用含有二氯喹啉酸成分的除草剂。     

二氯喹啉酸的残留现状及治理对策研究进展

二氯喹啉酸是水稻田防除稗草常用的除草剂之一,由于存在代谢周期长、易对后茬敏感作物产生药害的问题,有必要开展二氯喹啉酸残留现状及治理对策研究.本文梳理了二氯喹啉酸在土壤、作物及水域中的残留现状,分析了微生物降解技术、解毒剂补救法、吸附法以及高级氧化技术处理二氯喹啉酸残留的机制与途径,并对其去除技术的未来发展情况进行了展望...     

稗草对二氯喹啉酸抗性研究进展

生长素类除草剂二氯喹啉酸在我国使用了20多年,目前,稻田稗草对二氯喹啉酸产生了抗性,抗二氯喹啉酸稗草逐渐成为我国南北稻区的防除难题。稗草抗二氯喹啉酸机理比较复杂,从稗草感知二氯喹啉酸到产生氰化物的过程是通过生长素信号通路到乙烯信号通路传导的,期间发生了复杂的基因调控和相关酶的从头合成。最新研究认为,稗草主要通过提高氰化物解毒酶——氰丙氨酸合成酶(β-CAS)的活性和控制有毒氰化物的产量产生抗药性。本文综述了二氯喹啉酸的除草机理与稗草对二氯喹啉酸抗性这两个密切相关问题的研究进展。     

低分子量有机酸对二氯喹啉酸在土壤中吸附-解吸的影响

采用高效液相色谱仪及批量平衡试验方法,研究了乙酸、苹果酸、酒石酸、草酸、丁二酸和柠檬酸6种低分子量有机酸对麻沙泥和第四纪红土红壤吸附-解吸二氯喹啉酸的影响。结果表明:低分子量有机酸可推迟二氯喹啉酸在土壤中的吸附平衡时间,其吸附动力学过程可用准二级动力学方程描述。Linear和Freundlich方程能较好地拟合二氯喹啉酸在供试两种土壤中的吸附等温线;二氯喹啉酸在麻沙泥中的吸附能力(lg Kf值)从大到小依次为苹果酸柠檬酸草酸=乙酸丁二酸酒石酸,在第四纪红土红壤中为苹果酸丁二酸乙酸草酸柠檬酸酒石酸;低分子量有机酸浓度对二氯喹啉酸解吸的影响因有机酸种类和供试土壤的不同而差异较大,6种供试有机酸均促进了第四纪红土红壤对二氯喹啉酸的解吸,且其解吸率均明显高于麻沙泥对二氯喹啉酸的解吸率,但在麻沙泥中呈现不同的影响模式。     

湖南稻区稗草对二氯喹啉酸的抗药性研究

对湖南部分稻区稗草生物型对二氯喹啉酸的抗性水平进行监测。琼脂法测定结果表明,湖南安乡稗草生物型已对二氯喹啉酸产生了明显的抗性,2001年安乡稗草生物型IC₅₀结果显示,其最高相对抗性倍数高达63.80;常德市郊、汉寿县、长沙县高桥镇和春华镇的稗草生物型对二氯喹啉酸的抗药性正在形成,IC₅₀相对抗性倍数比值为2.15-2.78;而其他地区稗草生物型尚未对二氯喹啉酸产生抗性。茎叶喷雾法测定表明,在室内即便是使用高浓度400 mg／L二氯喹啉酸也不能很好地控制安乡稗草生物型;田间使用浓度为6倍于田间推荐用量(1 350 g／hm²)的二氯喹啉酸不能有效防治安乡稗草生物型,而用田间推荐量(225 g／hm²)的二氯喹啉酸可有效的防治敏感性稗草生物型。以上结果表明湖南安乡稗草生物型已对二氯喹啉酸产生极明显的抗药性。     

二氯喹啉酸降解菌的分离鉴定及降解特性分析

采用富集培养技术从长期施用二氯喹啉酸的土壤中分离得到1株能够降解二氯喹啉酸的细菌,将其命名为J3,通过生理生化特性和16s rDNA同源性序列分析,鉴定其为产碱菌属(Alcaligenes sp.)。在二氯喹啉酸初始质量浓度为100 mg/L、接种量为4%、pH 7、30 ℃条件下,接种后第6天,菌株J3对二氯喹啉酸的降解率可达到70%以上;在25 ℃、接种量为4%条件下,其生物修复作用可使受二氯喹啉酸(25%田间推荐剂量)药害盆栽烟草的恢复率达到69%。     

三种稗草对二氯喹啉酸的敏感性研究

辽宁省沈阳、东港两市稻田的长芒野稗、水田稗、无芒野稗对二氯喹啉酸都产生了一定程度的抗性。产生抗性后,很难用二氯喹啉酸进行有效地防除。     

二氯喹啉酸对水稻秧苗的药害及预防措施

农户在秧田使用二氯喹啉酸时,因安全使用技术掌握不到位,极易产生药害.本文主要介绍水稻秧苗二氯喹啉酸药害症状、产生原因,并提出预防措施.     

我国南方稻区稗草对二氯喹啉酸的抗药性测定

用琼脂法对2000年和2001年采收的29个稗草生态型对二氯喹啉酸的抗性水平进行了测定。结果表明:广东花都稗草对二氯喹啉酸最为敏感,其抑制中浓度IC50是0.148 0 mg/L;湖南安乡稗草对二氯喹啉酸的抗性极为明显,2000年和2001年样本IC50值分别是7.458和13.80 mg/L,其相对抗性比分别为50.4和93.2;2000年采收的湖南常德稗草也对二氯喹啉酸表现出高抗,其相对抗性比值是4.47,黄梅、汉寿、常德(b)、高桥4地稗草也表现出抗性,其相对抗性比值分别为2.37、3.12、2.44和2.20;其他22个稗草生态型对二氯喹啉酸仍未表现出抗性。     

我国长江中下游稻区稗草对二氯喹啉酸的抗药性研究

用琼脂法测定了长江中下游稻区43个稗草(Echinochloa crusgalli)对二氯喹啉酸的抗药性水平。2003年采自浙江绍兴的稗草对二氯喹啉酸最为敏感,其EC50为0.326 8 mg/L,以其为敏感稗草。2003年采自浙江陶堰和浙江塘下的稗草对二氯喹啉酸的抗药性处于极高抗水平,抗性比分别达到718.48和695.84。采自湖南安乡(2004年)和浙江杭州(2003年)的稗草也产生了高水平抗药性,抗性倍数分别为62.21倍和41.22倍。采自浙江皋埠(2003年)的稗草对二氯喹啉酸的抗药性还处于低水平抗性阶段,其抗性比为6.41。而其余37个稗草对二氯喹啉酸的EC50为0.495 3~1.315 mg/L,抗性比为1.52~4.02,表明这些地方稗草尚处于对二氯喹啉酸敏感或敏感性正在下降阶段。     

湖南稻区稗草对二氯喹啉酸的抗性研究

利用整株测定法,测定湖南省主要稻区29个稗草生物型对二氯喹啉酸的抗性。结果表明,湖南省隆回县的生物型稗草对二氯喹啉酸最敏感,其EC50为76.388 3 g a.i./hm2,为敏感生物型。湖南省益阳芷湖口镇和湖南省长沙望城县(直播田)的生物型稗草对二氯喹啉酸的EC50分别为1 567.164 g a.i./hm2和2 477.542 g a.i./hm2,抗药性指数分别达20.52和32.43,表明这两种生物型稗草的抗药性处于高水平抗性。其中10个生物型稗草的EC50为155.931 8～375.114 g a.i./hm2,抗药性指数为2.02～4.91,表明这些生物型稗草已产生抗性。而其余16个生物型稗草的EC50为84.020 3～151.596 g a.i./hm2,抗药性指数为1.10～1.98,表明这些地方稗草的敏感性正在下降。     

QuEChERS-液相色谱-串联质谱法测定模拟稻田环境中水、土壤和水稻植株中二氯喹啉酸残留

采用液相色谱-串联三重四极杆质谱建立了稻田土壤、稻田水和水稻中二氯喹啉酸残留的检测方法。样品经V (甲酸) : V (乙腈) = 2 : 98溶液提取，采用 C₁₈和PSA分散固相萃取净化。以0.1%甲酸水溶液- 甲醇为流动相梯度洗脱，经反相液相色谱柱实现目标化合物的分离。采用电喷雾正离子模式串联质谱法检测，多反应监测模式定性，外标法定量。结果表明:在0.01~1 mg/L范围内，二氯喹啉酸的质量浓度与对应的峰面积间呈良好线性关系 (r ≥ 0.999)，方法定量限为 0.0125~0.05 mg/kg。当二氯喹啉酸在水稻土壤和植株中的添加水平为0.05、0.2和1 mg/kg，在田水中的添加水平为0.0125、0.05和0.25 mg/kg时，其平均回收率为85%~112%，相对标准偏差 (RSD, n = 6) 为1.1%~9.3%。采用盆栽模拟试验，于水稻苗期喷施二氯喹啉酸，施药剂量为有效成分375 g/hm2，施药后21 d采样测定结果表明:二氯喹啉酸在水稻植株中消解速率较快，消解率可达94%；而在稻田水和土壤中消解缓慢，消解率分别为33%和45%。本研究建立的方法具有操作简单、灵敏度高、分析时间短和重现性好等优点，适用于稻田土壤、稻田水和水稻植株中二氯喹啉酸残留的检测。     

对比分析不同方法提取土壤中的二氯喹啉酸

本文采用4种常用方法分别对福建田土中添加的二氯喹啉酸进行了提取,并采用高效液相色谱法对其添加回收率进行了测定,对比分析表明,当二氯喹啉酸添加浓度为1.25μg/g时,方法二即氢氧化钠溶液提取、乙酸乙酯净化法回收率最高,约为70%,且杂质峰较小,基线平稳,峰形较对称;重复性高,两次生物学试验的平均回收率无显著差异,均略高于70%。方法一即乙腈磷酸水溶液提取、氯化钠净化法,回收率较高,但杂质峰较高,基线不平稳。方法三即硼砂甲醇溶液提取、二氯甲烷净化法,虽然杂质峰小、基线平稳、峰形较好、但回收率低,约为50%。方法四即甲醇磷酸水溶液直接提取法,因提取液难以在旋转蒸发仪中浓缩,因此未继续检测。综合结果表明,方法二最适用于福建省水稻田二氯喹啉酸的提取。     

Resistance of barnyardgrass (Echinochloa crus-galli) to atrazine and quinclorac

Two populations of Echinochloa crus-galli (R and I) exhibited resistance to quinclorac. Another population (X) exhibited resistance to quinclorac and atrazine. The R and I populations were collected from monocultures of rice in southern Spain. The X population was collected from maize fields subjected to the application of atrazine over several years. The susceptible (S) population of the same genus was collected from locations which had never been treated with herbicides. The quinclorac ED₅₀ value (dose causing 50% reduction in shoot fresh weight) for the R and I biotypes were 26- and 6-fold greater than for the S biotype. The X biotype was 10 times more tolerant to quinclorac than the S biotype and also showed cross-resistance to atrazine, being 82-fold more resistant to atrazine than the R, I and S biotypes. Chlorophyll fluorescence and Hill reaction analysis supported the view that the mechanism of resistance to atrazine in the X biotype was modification of the target site, the DI protein. Quinclorac at 20 mg litre^-1 did not inhibit photosynthetic electron transport in any of the test biotypes. The quinclorac I₅₀ values (herbicide dose needed for 50% Hill reaction reduction) of the S population was over 50000-fold higher than the atrazine I₅₀ value for the same S population, indicating that quinclorac is not a PS II inhibiting herbicide. Propanil at doses greater than 0·5 kg ha^-1 controlled all the biotypes. © 1997 SCI     

Quinclorac does not inhibit cellulose (cell wall) biosynthesis in sensitive barnyard grass and maize roots

The effect of the auxin herbicide quinclorac on cellulose, callose, and (1→3),(1→4)β-glucan deposition in newly produced cell walls of meristematic root tip cells was examined in maize and barnyard grass. Particularly, the developing cell plate of dividing cells was investigated as a site of de novo cellulose biosynthesis. A cellulose-binding domain of a bacterial cellulase and monoclonal antibodies against the hemicellulose constituents were used for specific labelling in fluorescence microscopic examination. Root-treatment of plants with 100 μM quinclorac in maize and 10 μM quinclorac in barnyard grass decreased cell division activity in root tips and root elongation. Quinclorac did not induce the swelling of root tips into a club shape and a glassy appearance of tissue, which are typical symptoms for the action of cellulose biosynthesis inhibitors such as dichlobenil. During 24 h of treatment, no effects of quinclorac on cellulose deposition at the cell plates and parental walls of meristematic root cells were found. In contrast, 10 μM dichlobenil inhibited cellulose deposition in cell plate formation within 4 h of treatment. Concerning the hemicellulose constituents, increased staining for callose in areas of cell plates and parental cell walls was observed 24 h after treatment with 10 μM quinclorac. Concomitantly, (1→3),(1→4)β-glucan deposition in cell walls decreased. The latter may be an indirect effect of quinclorac through a stimulated production of cyanide from ethylene biosynthesis. In contrast with previous reports, no evidence that quinclorac, directly or indirectly inhibits cellulose biosynthesis in roots of susceptible grasses was found.