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以绒毛白蜡幼嫩茎段为外植体,对其组培快繁技术进行研究。结果表明,最佳诱导培养基为MS+6-BA 0.5 mg·L(-1)+NAA 0.05 mg·L(-1),诱导率为93.5%;最佳增殖培养基为MS+6-BA 0.5 mg·L(-1)+NAA 0.5 mg·L(-1),增殖系数为5.1;最佳生根培养基为1/2WPM+IBA 1.0 mg·L(-1),生根率为90.12%,驯化成活率为89.8%。该研究为绒毛白蜡工厂化育苗和遗传转化品种改良奠定基础。 相似文献
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《林业实用技术》2014,(11)
以南蛇藤无菌苗子叶、上胚轴及幼根为材料,比较研究不同激素配比条件下不同外植体愈伤组织的诱导、分化及植株再生。结果表明:上胚轴是诱导产生胚性愈伤组织的最佳外植体;愈伤组织诱导的最佳培养基为MS+6-BA(0.5mg/L)+NAA(0.51.0mg/L);愈伤组织分化的最佳培养基为MS+6-BA(0.5mg/L)和MS+6-BA(2.0mg/L)+IBA(0.11.0mg/L);愈伤组织分化的最佳培养基为MS+6-BA(0.5mg/L)和MS+6-BA(2.0mg/L)+IBA(0.10.5mg/L);芽增殖最佳培养基为MS+6-BA(1.00.5mg/L);芽增殖最佳培养基为MS+6-BA(1.02.0mg/L)+NAA(0.1mg/L),增殖系数平均达7.05;最佳生根培养基为1/2MS+NAA 0.1mg/L,生根率达88%。 相似文献
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《山东林业科技》2017,(3)
以红叶腺柳(Salix chaenomeloides‘Variegata’)带芽茎段诱导出的侧芽为试验材料,研究了不同细胞分裂素、生长素、添加物、抗褐化剂及降低激素浓度等因素对红叶腺柳试管苗继代增殖及高生长的影响。结果表明,适宜的丛生芽增殖培养基为:WPM+6-BA1.0mg·L~(-1)+NAA0.1mg·L~(-1);利于试管苗伸长培养基为:WPM+6-BA0.5mg·L~(-1)+NAA0.1mg·L~(-1)+活性炭1.0g·L~(-1),添加抗褐化剂活性炭,并采用1.0mg·L~(-1)6-BA与0.5mg·L~(-1)6-BA交替使用的方法 ,在保持红叶腺柳高繁殖率的同时促进试管苗高生长,抑制茎尖坏死、玻璃化、褐化等不良现象。 相似文献
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中涡1号杨树叶片再生体系的建立 总被引:2,自引:0,他引:2
以中涡1号杨树叶片为材料,对其再生体系建立进行研究。结果表明:叶片的最佳消毒方法为使用75%的酒精消毒15s,0.1%的HgCl2消毒4min;适宜的诱导愈伤培养基为MS+6-BA0.2mg/L+NAA1.0mg/L;适宜的诱导分化培养基为MS+KT0.1mg/L+NAA0.1mg/L+6-BA1.0mg/L+蔗糖25g/L;生根的最佳培养基为1/2MS+IBA0.6mg/L;无菌苗叶片最佳不定芽诱导培养基为MS+6-BA1.0mg/L+NAA0.2mg/L。 相似文献
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以赛黑桦休眠枝萌发的腋芽为外植体,研究了不同种类和不同浓度植物激素对赛黑桦外植体诱导、愈伤组织诱导、不定芽增殖和生根等环节的影响。结果表明:(1)外植体芽的诱导培养以WPM+6-BA0.5 mg·L~(-1)+NAA0.1 mg·L~(-1)为最佳培养基;(2)愈伤组织诱导以WPM+6-BA1.0 mg·L~(-1)+NAA0.02 mg·L~(-1)为最佳培养基;(3)在芽增殖培养中以WPM+6-BA0.1 mg·L~(-1)+NAA0.02 mg·L~(-1)增殖效果最好,增殖系数达4.0;(4)生根培养以WPM+NAA0.05 mg·L~(-1)效果最佳,生根率91.7%;(5)生根苗移栽成活率达90%以上。 相似文献
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以植物园洋丁香茎段为试验材料,利用组织培养技术,筛选出诱导分化、继代增殖和生根的最佳培养基。结果表明:芽继代增殖培养基为:1/3MS+2,4D0.05(mg/L)+IBA2.0(mg/L)+NAA0.2(mg/L),最佳壮苗培养基为1/3MS+6-BA0.2(mg/L)+IBA1.0(mg/L)。最适合的生根培养基为MS+NAA0.2(mg/L)+IBA2.0(mg/L)+GA0.5(mg/L)。 相似文献
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以矮沙樱桃幼嫩茎段为外植体进行组织培养试验,筛选出适合矮沙樱桃外植体诱导培养基为MS+6-BA0.8 mg.L-1(单位下同)+IAA1.2,愈伤组织诱导培养基为MS+6-BA1.0+NAA0.1,继代芽分化培养基为MS+6-BA0.8+IAA1.5+NAA0.05,生根培养基为1/2MS+IBA0.5+根皮苷5,以草炭∶蛭石∶珍珠岩=2∶1∶1为移栽基质效果最好。 相似文献
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本实验以大花萱草‘红运’的花蕾为外植体建立了再生体系,并实现了规模化组培生产。实验结果表明:0.1%升汞对花蕾灭菌5min成活率达80%,效果最好;适宜的不定芽诱导培养基为MS+6-BA1.0mg/L+NAA0.05mg/L;适宜的增殖培养基为MS+6-BA1.0mg/L+NAA0.1mg/L;适宜的生根培养基为1/2MS+NAA0.2mg/L。组培苗在培养过程中必须及时进行转接,适宜的转接周期为28d。 相似文献