利用PCR-DGGE技术分析肉牛阴道菌群结构

利用PCR-DGGE技术明确肉牛阴道菌群结构并比较黄体期和卵泡期肉牛阴道菌群结构差异。选择7头肉牛,分别采集黄体期和卵泡期阴道分泌物,提取细菌总DNA,采用巢式PCR分别对细菌16SrDNA的V3区进行扩增,将PCR产物进行变性梯度凝胶电泳(denatured gradient gel electrophoresis,DGGE)。对DNA指纹图谱特异性条带切胶回收并进行克隆测序,通过BLAST与已知序列对比,鉴定细菌菌种,分析比较黄体期和卵泡期肉牛阴道菌群结构。结果显示:健康肉牛阴道内存在阴道气球菌(Aerococcus vaginalis str.)、绿色气球菌(Aerococcusviridans str.)、睡眠嗜血杆菌(Haemophilussomnus str.)、多动物链球菌(Streptococcus pluranimalium str.)、嗜冷杆菌(Psychrobactermarincolastr.)、大肠杆菌(Escherichia coli O157:H7str.)和鞘氨醇单胞菌(Sphingomonasroseiflavastr.)等。     

巧治生猪5种恶习

利用激素制剂人为地控制母猪发情周期的进程,使之在预定的时间内集中发情,将有利于推广人工授精。在母猪分散或交通不便的农村,也能普遍采用人工授精;在大型猪场采用同期发情,使母猪配种、妊娠、产仔和仔猪的培育在时间上相对集中,便于更合理地组织生产,有效地进行饲养管理,降低生产成本和费用;此外,同期发情也可使乏情母猪出现周期性发情,使其具有正常的繁殖力。因此,在养猪生产中采用同期发情技术,将会有力地提高养猪生产水平。在生产实践中,可以采用两种不同的方法来控制母猪的同期发情。 (一)诱发母猪排卵 目前常用于诱发卵泡发育和排…     

母牛黄体期的生理特点

<正>母牛排卵后,膜细胞和颗粒细胞间的基膜裂解,继而无血管的颗粒细胞层被含有膜细胞和血管的结缔组织所代替,颗粒细胞和膜细胞分化形成黄体细胞,产生孕酮、雌激素、催产素和松弛素,即为黄体期。血管进一步分支,从而为成熟黄体的代谢供给足够的血量。组成黄体的细胞中,内皮细胞占一半以上,且在黄体溶解过程中发挥关键的作用。对母牛而言,使卵泡黄体化的激素主要是促黄体素(LH)。正常条件下,黄体在LH存在下维持     

Bad基因在黄体期绵羊生殖器官中表达的比较研究

以黄体期小尾寒羊和萨福克羊为研究对象,采用免疫组织化学技术,针对Bad基因在母羊生殖器官卵巢,输卵管和子宫中的表达与定位进行初步研究,在卵巢中Bad基因均在多数黄体细胞中表达;在输卵管宫管结合部、峡部和壶腹部的分泌细胞Bad基因均有不同程度的表达,未发现纤毛细胞Bad阳性细胞;子宫内膜腺体小泡表达Bad阳性,子宫内膜子叶、基质的阳性细胞数极少,阳性细胞呈轻度着色,显弱阳性.利用计算机图像分析技术测量小尾寒羊和萨福克羊Bad基因表达的阳性细胞率和平均光密度,Bad基因在这两种绵羊组织中的表达规律大体相似,也存在一些明显的差异:萨福克羊的黄体细胞较小尾寒羊中的细胞凋亡更明显,萨福克羊输卵管伞部和壶腹部上皮Bad阳性细胞率均高于小尾寒羊,小尾寒羊子宫内膜子叶和基质Bad阳性细胞率和平均先密度均显著高于萨福克(P＜0.01).结果表明,小尾寒羊和萨福克羊生殖器官中细胞凋亡的差异与Bad基因表达的差异,可能是造成两者繁殖力高低差异的基础.     

计算机管理结合发情控制冷配的技术研究

以养殖条件近似的四个乡镇作为基础母牛群,其中2个乡镇采用不进行直肠检查,而以计算机管理发情控制冷配方式作为试验组,另2个乡镇采用上门寻找空怀牛,再进行直肠检查的方式作为对照组。对照组中,功能性黄体、持久黄体的母牛分别采用0.2 mg、0.4 mg的PG(氯前列烯醇法),卵巢静止的母牛采用1 000IU PMSG(孕马血清)。试验组则由计算机进行判断。试验结果表明,通过计算机管理实施发情调控冷配后,可对正常母牛的有效黄体期准确判断,省去直肠检查;对产后因哺乳、管理不善等引起的乏情母牛,不通过直肠检查即可尽早发现、及时治疗,缩短产犊间隔,又获得了较高的受胎率。     

为什么要同步发情

这篇文章的标题中蕴含着一个简单的问题,而1篇2页文章就可以轻松解答。发情时又究竟会发生什么?什么是同期发情且所有的养殖场都适用吗?     

湖羊黄体期卵泡颗粒细胞的基因表达谱分析

卵泡颗粒细胞对卵母细胞的营养支持、保护以及卵泡生长发育、成熟、闭锁、维持黄体功能等起着至关重要的作用。为研究湖羊黄体期卵泡颗粒细胞的基因表达及其信号网络,提取湖羊黄体期卵泡颗粒细胞RNA,采用Illumina测序技术进行测序,并结合GO分析和KEGG通路分析对基因功能分类、参与的生物过程及信号网络进行了研究。试验共获得了17 627个可匹配基因的表达情况,发现了多个与繁殖、消化吸收及代谢相关基因的高表达,如CYP19A1、IL1A、IL1B、UCP2、STAR等基因。经过GO分析和KEGG通路分析,15 278个基因分别注释到三大类60个功能组,在biological process这一大类中发现了与繁殖、发育、代谢、调节和免疫等相关的功能组,有6 361个基因注释到了312个KEGG通路,发现了与生殖生物学、消化吸收、代谢等过程相关的信号通路,并对相关功能组和通路进行了分析。本试验揭示了湖羊黄体期卵泡颗粒细胞的基因表达特点及其参与的信号通路,为深入研究绵羊卵泡发育的调控机制及湖羊高繁性状关键基因的挖掘提供了参考。     

黄体期注射PGF2α对母羊血清生殖激素及相关细胞因子的影响

旨在研究黄体期不同阶段注射前列腺激素(PGF2α)对育成母羊生殖激素和生殖相关细胞因子的影响。本研究选择健康、体况良好、体重相近、发情周期正常的湖羊育成母羊60只,用“孕酮栓(MAP)+PMSG”法进行发情周期同步化处理后,选择发情正常的48只母羊随机均分为6组。发情当天记为第0天,黄体前期试验组、中期试验组和末期试验组母羊分别在第6(黄体前期)、11(黄体中期)、16天(黄体末期)注射1 mL PGF2α(0.1 mg),黄体前期对照组、中期对照组和末期对照组母羊分别在第6、11、16天注射1 mL生理盐水,每次注射后0.5、1、2、3 h采血,用于血液指标检测。结果表明,所有试验组和对照组母羊于注射后的0.5~3 h间血清中FSH、LH、PRL、P₄、E₂水平以及TNF-α、IL-1β、IL-6、IFN-β无显著变化(P＞0.05);母羊在黄体期不同阶段注射PGF2α对0.5、1、2、3 h血清中FSH、LH、PRL及IL-1β、IFN-β无显著影响(P＞0.05),前期试验组注射后3 h P₄水平显著低于前期对照组,E₂和IL-6水平显著高于前期对照组(P＜0.05),前期试验组注射后2和3 h TNF-α水平显著高于前期对照组(P＜0.05);中期试验组注射后1 h P₄水平显著低于中期对照组(P＜0.05)。黄体前期注射PGF2α后,前期试验组0.5~ 3 h内FSH、E₂、TNF-α、IL-6整体水平显著高于前期对照组(P＜0.05),P₄整体水平显著低于前期对照组(P＜0.05),对LH、PRL、IL-1β和IFN-β无显著影响(P＞0.05);黄体中期注射PGF2α后,中期试验组0.5~3 h内E₂整体水平显著高于中期对照组(P＜0.05),P₄整体水平显著低于中期对照组(P＜0.05),对FSH、LH、PRL、TNF-α、IL-1β、IL-6和IFN-β无显著影响(P＞0.05);黄体末期注射PGF2α对生殖激素与相关细胞因子没有显著性影响(P＞0.05)。本研究结果表明,PGF2α对黄体的溶解作用存在阶段性差异,母羊在黄体前期对PGF2α的短期应答反应强于黄体中、末期,且黄体前期时,卵巢可以响应PGF2α为卵泡发育营造更佳的发育环境。     

DAPI检测黄体期绵羊生殖器官中细胞凋亡的比较研究

以黄体期小尾寒羊和萨福克羊为研究对象,采用DAPI原位荧光标记技术,对高繁殖力品种小尾寒羊和低繁殖力品种萨福克羊成年母羊主要生殖器官(卵巢、输卵管、子宫)进行细胞凋亡的确认与定位。结果表明:小尾寒羊和萨福克羊卵巢中黄体细胞有凋亡现象,黄体后期萨福克羊的细胞凋亡较小尾寒羊明显;在萨福克羊黄体期输卵管各部位上皮中发现有极少数分泌细胞具有凋亡特征,而在小尾寒羊未检测到凋亡细胞,两品种羊输卵管上皮下结缔组织有少数凋亡细胞,小尾寒羊和萨福克羊子宫内膜的基质与腺体内皮中均检测到大量凋亡细胞。细胞凋亡是母羊生殖器官变化的重要调节机制,可能与造成两者繁殖力高低差异有关。     

奶牛的同期发情技术

<正>同期发情又称同步发情,即通过利用某些外源激素处理,人为地控制并调整一群母牛的发情周期,使其在预定的一定时间内集中发情,以便有计划地组织配种。它不仅有利于人工授精技术的推广,而且还能为胚胎移植创造条件。一、同期发情的机理母牛的发情周期根据卵巢的形态和机能大体可分为卵泡期和黄体期两个阶段。卵泡期是指在周期性黄体退化继而血液中孕酮水平显著下降之后,卵巢中的卵泡迅速生长发育、成熟,进入排卵时期。而在黄体期内,由于在黄体分泌的孕酮作用下,卵泡的发育成熟受到抑制,在未受精的情况下,黄体维持一定的时间(一般是十余