牛体外受精胚胎细胞核移植的实验研究

将采自肉联厂屠宰车间的牛卵巢中的卵母细胞置于ＴＣＭ－１９９＋１０％ＥＣＳ（０ｄ）＋ＦＳＨ（１万ＩＵ／Ｌ）＋ＬＨ（５ｍｇ／Ｌ）中培养成熟，用含０．３％透明质酸酶的消化液将卵母细胞周围的卵丘细胞去掉，并以７．５ｍｇ／Ｌ的ＣＢ液处理后，用微吸管吸去透明带内的第一极体及极体下面的部分卵母细胞质，然后将经体外受精并发育至８～１６细胞期胚胎的卵裂球注入去核卵母细胞的卵周隙中，再将移核胚置于电融合槽内进行融合（电场强度为１２００Ｖ／ｃｍ，持续时间为８０μｓ，１次脉冲刺激）。将融合的胚胎移入生长有单层贴壁颗粒细胞的发育培养液（ＴＣＭ－１９９＋１０％牛血清）中培养，观察移核胚的融合率及发育率，部分去核卵母细胞经染色后观察去核率。结果表明：（１）移核胚的融合率为８６．９％（５３／６１）；（２）发育至２～８细胞期的胚胎占培养的移核胚胎总数的２１．３％（１０／４７）；（３）卵母细胞的去核率为６８．２％（４５／６６）。     

牛卵母细胞电激活研究

采用高场强单次脉冲（1600V/cm,80μs）及低场强3次脉冲（400V/cm,20μs,每次间隔20min）刺激体外成熟牛卵母细胞（成熟26h）,激活率分别为86.5%（167/193）和92.7%（101/109）,差异不显著（P>0.05）,其中多原核率分别为8.3%（16/193）和59.6%（65/109）,差异极显著（P<0.01）,但发育率差异不显著（20.6％和23.3％）。实验表明,电脉冲能显著提高牛成熟卵母细胞的激活率;多次电激会造成很大比例的多原核,但对卵母细胞的发育影响不大。     

精子分离的性控犊牛出生

长期以来,很多人试图用分离的X精子和Y精子进行人工授精,以获得理想性别的后代。荧光激活细胞分类器(fluores-cence activated cell sorter)能基于X精子、Y精子DNA含量的微小差异,而将其分离。只是这项技术现在还不能很快分离出足够数量的精子用于人工授精,而只可用于体外受精。这种分离过程似乎对精子没有损害。本试验用此法得到了6头与预测性别相符的犊牛。下一步试验目的是增加分离精子的纯度,提高分离效率,以适应商业化需要。     

牛冻卵体外受精产犊

近年来牛冻胚己商业化应用,如果牛卵母细胞能冷冻保存,则对建立胚胎库及提高遗传改良技术将是很有利的。本试验的目的是建立一种卵母细胞冷冻方法,即一步加入或除去高渗冷冻保护剂来冷冻保存未成熟牛卵母细胞。1 卵母细胞冷冻1.1 未成熟卵母细胞冷冻从屠宰场取回牛卵巢,用生理盐水保存,2小时内带到实验室。从卵巢吸出卵母细胞,用改进的磷酸盐缓冲液(m-PBS)洗两次,在含有 Hepes 缓冲液的 TCM199+10%超排