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采用流式细胞仪技术,以白花泡桐、台湾泡桐、楸叶泡桐及鄂川泡桐的幼嫩叶片为材料,用LB01解离液获得细胞核悬浮液,并用碘化丙啶(Propidium Iodide,PI)荧光染料进行细胞核染色,建立了一套适于不同品种泡桐倍性及白花泡桐基因组大小测定的方法。利用该方法,以不同品种泡桐的已知二倍体为对照,测得不同品种泡桐四倍体植株的相对荧光强度是二倍体的倍数范围均在2±0. 13,符合四倍体细胞核DNA含量的特征;以已知基因组大小的芝麻(Sesamum indicum)和番茄(Solanum lycopersicum)为内标,测得白花泡桐二倍体(B2)的基因组大小为528. 24 Mb,白花泡桐四倍体(B4)的基因组大小为1 019. 94 Mb。 相似文献
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植物生长调节物质对泡桐丛枝病株幼苗形态和叶片蛋白质含量变化的影响 总被引:10,自引:4,他引:6
利用患丛枝病的豫杂一号泡桐组织培养苗,研究了植物生长调节物质对其幼苗形态和蛋白质变化的影响.结果表明,植物生长素类物质在一定程度上可以减轻豫杂一号泡桐丛枝病发病的症状,但不同种类的生长素对其减轻的程度存在一定的差异.ABA减轻效果甚微.此外,经植物生长调节物质处理的患丛枝病豫杂一号泡桐幼苗叶片蛋白质凝胶电泳中出现了在对照幼苗叶片中观察不到pI 6.3,31 kD的蛋白质(多肽).这意味着植物生长调节物质处理对患丛枝病泡桐苗木的基因表达产生了影响. 相似文献
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以豫杂一号泡桐为材料,通过对影响AFLP技术体系的各主要因素的研究,建立了适于泡桐AFLP分析的技术体系.结果表明最佳酶切体系(20μL)为500 ng模板DNA,3 U的Pst 1和Mse I,在37℃下双酶切3 h;20μL最佳连接体系中为酶切产物15 μL,0.25 μmol·L-1Pst I接头,2.5 μmol·L-1 Mse I接头,1 μL 10×T4 Buff-er,2 U T4连接酶,22℃连接18 h;20 μL最佳预扩反应体系中5 μL稀释10倍的连接产物,100 μmol·L-1dNTP,2 U Taq酶,250 μmol.L-1 Pst I和Mse I引物(P+AGT/M+AGT),2 μL 10×PCR Buffer.20 μL最佳选择性扩增反应体系中5 μL稀释20倍预扩增产物,100 μmol·L-1dNTP,2 U Taq酶,350 μmol·L-1 Pst I和Mse I引物(P+AGT/M+AGT),2 μL 10×PCR Buffer.最后,筛选出了97对适宜于泡桐AFLP分析的引物. 相似文献
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以豫杂一号泡桐健壮组培苗为研究材料,从低温锻炼时间、预处理时间、装载液处理时间、玻璃化液处理时间及液氮保存时间5个方面研究其茎尖玻璃化法超低温保存方法。结果表明,豫杂一号泡桐茎尖玻璃化法超低温适宜的保存方法为,2 cm的茎尖在附加0.4 mol·L-1甘油和0.3 mol·L-1蔗糖的MS培养基上预培养2天,然后剥取2~3 mm的茎尖,用装载液(MS+2 mol·L-1甘油+0.4 mol·L-1蔗糖)装载60 min,再用玻璃化溶液(PVS2)于0℃下处理1.5 h,换1次玻璃化溶液后迅速投入液氮,保存l h后于40℃水浴中化冻70 s,再转到室温下用去装载液(MS+1.2 mol·L-1蔗糖)洗涤2次,每次10 min。以TTC法检测,豫杂一号泡桐茎尖成活率最高可达85.74%,保存效果较好。 相似文献
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金丝楸茎段的组织培养及植株再生技术研究 总被引:5,自引:8,他引:5
以金丝楸幼嫩茎段为材料研究其组织培养和植株再生技术.结果表明,金丝楸组织培养的基本培养基为WPM,幼嫩茎段诱导芽的适宜培养基为WPM IBA0.3mg·L-1 BA5mg·L-1,幼芽形成根的适宜培养基为1 2MS NAA0.5mg·L-1,该研究结果为金丝楸的细胞工程和基因工程操作及新品种的快速繁育奠定了基础. 相似文献
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构树不同无性系间叶片营养成分及叶形的变化 总被引:2,自引:0,他引:2
以3个构树(Broussonetia papyrifera(L.)Vent.)无性系的叶片为试验材料,对其营养成分和叶片形态进行了测定和分析,揭示了其变化规律及其相关性。结果表明:花皮构树(构树1号)的粗蛋白质量分数最高,与红皮构树(构树2号)和白皮构树(构树3号)差异显著;粗纤维、粗灰分和钙的质量分数最低,钙、磷比也最低。3个构树无性系叶片中均含有17种氨基酸,其中花皮构树的氨基酸总量最大。构树不同无性系间叶片的面积、长度、宽度和叶柄长度无显著差异。粗蛋白质量分数、磷质量分数和氨基酸质量分数与叶面积、叶片长度呈正相关,而与叶柄长度呈负相关;粗纤维质量分数、钙质量分数和粗灰分质量分数与叶柄长度呈正相关。可见,花皮构树的叶片营养价值较好,其叶片更适合做畜禽饲料。 相似文献
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先前大量的研究表明植物与病原体博弈进化的过程中,病原体配备了一系列的进攻之“矛”,而同时植物也配备了一套复杂有效的防御之“盾”,植物的免疫系统可大致分为PTI和ETI两个层面。即PAMPs或DAMPs诱导的免疫反应PTI是植物抵御病原菌的第1层反应,由病原体释放的效应子(effectors)引发的免疫反应ETI是植物的第2层防卫反应。植物所配置的各种类型的受体在植物免疫及生长发育等过程中启着重要作用。而模式识别受体(Pattern Recognition Receptor,PRR)在PTI反应中发挥重要作用,研究就PRR的结构分类,对病原的识别,信号传导,转录表达以及调控下游免疫的方面展开讨论。 相似文献