桑树四倍体的诱导及其应用

采用物理的辐射处理 ,化学的秋水仙碱处理和生物的杂交等技术方法 ,培育出桑四倍体材料 98份。其中用杂种实生幼苗秋水仙碱诱导的四倍体中 ,有些有较高的产叶量 ,可直接应用于生产 ;而大多数人工诱导的桑四倍体 ,则用作培育三倍体的亲本。诱导和利用人工四倍体资源 ,与二倍体桑杂交 ,以及无性固定三倍体或配制三倍体杂优组合 ,仍是桑树多倍体育种的主攻方向。     

奶牛乳房炎的免疫预防

乳房炎是危害奶牛业的三大疾病之一,是奶牛的常见病和多发病,发病率高达20％～70％。它导致产乳量降低、乳品质下降、奶牛淘汰率升高,甚至引起人的感染。本文介绍奶牛乳房炎的病原、防御机制、疫苗种类及效能评价,以期为奶牛乳房炎疫苗的进一步研制提供借鉴和参考。     

马蹄金子叶的愈伤诱导与植株再生研究

以不同植物生长调节剂组合和不同基本培养基,探讨了马蹄金子叶离体培养的方法和影响因素.结果表明,不同植物生长调节剂组合的培养基对愈伤组织的诱导频率有显著影响,出愈率为16%～100%;以MS或B5培养基作诱导愈伤组织的基本培养基效果较好;将子叶接种到MS+1.0 mg/L 2,4-D+0.2 mg/L 6-BA的诱导培养基中诱导愈伤组织,再用MS+0.1 mg/L2,4-D+2.0 mg/L 6-BA+3.0 mg/L AgNO3作分化培养基出苗效果最佳,愈伤组织分化频率高达20.7%.     

基因工程防御素对保育猪生长性能的改善作用

保育猪自身免疫系统不健全,断奶后抗病力差,对疾病易感性高。因此,提高保育猪自身抵抗力,降低断奶应激,控制腹泻,提高仔猪育成率和生长速度,对于提高养猪效益具有重要意义。     

赤峰地区敖汉苜蓿冻害及其防御技术

敖汉苜蓿在赤峰地区受冻害程度有4种类型;全株未受冻;根颈上端受冻受黑,下端仍能再生新芽;全部根颈和根的部分受冻变黑,已不能再生新芽;全株受冻死亡。引起冻害的主要原因是播种期偏晚,在播种当年生长期短,根颈入土浅。结果表明,越冬前苜蓿必须具有2个以上分枝,根颈入土深>5cm以上,根颈膨大,直径>0.3cm以上者方能减轻或避免受冻。适时早播,施种肥,延长生长期促进幼苗生长,在封冻前对平作进行浅耕覆土或深开沟磨平等措施,均能增加根颈保温层,有效提高苜蓿越冬率。     

新西兰兔肌内和皮下前体脂肪细胞原代培养与诱导分化的研究

为建立新西兰兔前体脂肪细胞的体外培养模型,比较新西兰兔肌内和皮下前体脂肪细胞分化过程中相关基因的差异表达,实验采集 1 日龄新西兰兔背最长肌和皮下脂肪组织,采用胶原酶消化方法,分别从 2 种组织中分离前体脂肪细胞,进行细胞原代培养,绘制细胞生长曲线,并对肌内和皮下前体脂肪细胞诱导分化,利用 RT-PCR 检测相关基因的表达变化。结果表明:细胞在分离后 2 h 已经贴壁,24 h 时呈现出短梭形的细胞形态,第 2 天细胞变成长梭形,第 3 天进入对数生长期。肌内和皮下前体脂肪细胞在诱导分化后均被油红O 染色,皮下前体脂肪细胞的脂质积累在诱导分化的第 2 天显著高于肌内前体脂肪细胞(P<0.05);荧光定量结果表明,肌内和皮下前体脂肪细胞 CCAAT 增强子结合蛋白(C/EBPα)基因的表达趋势在诱导分化过程中相同,肌内前体脂肪细胞过氧化物酶体增殖激活受体(PPARγ)第 4 天的表达量显著高于第 6 天,而皮下前体脂肪细胞 PPARγ表达量差异不显著;肌内前体脂肪细胞脂蛋白脂肪酶(LPL)表达量在第 0天和第 2天差异不显著,而皮下前体脂肪细胞第 2 天显著高于第 0 天(P<0.05);肌内前体脂肪细胞脂肪酸合酶(FAS)基因第 0、2、4 天的表达量差异不显著,而皮下前体脂肪细胞第 2、4 天显著高于第 0 天(P<0.05)。本研究成功构建了新西兰兔肌内和皮下前体脂肪细胞的体外培养和诱导分化模型,并发现皮下前体脂肪细胞分化早于肌内前体脂肪细胞,为进一步研究新西兰兔前体脂肪细胞的分化机制和脂肪沉积奠定基础。     

影响中苜2号苜蓿愈伤组织诱导的主要因素分析

以MS为基本培养基,采用L16(45)正交试验设计,研究不同外植体类型及植物生长调节物质对中苜2号愈伤组织生长情况、诱导率的影响,筛选适合中苜2号愈伤组织诱导的最佳外植体类型和最优激素配比.结果表明.以下胚轴为外植体诱导的愈伤组织生长状况良好,诱导率高,为诱导愈伤组织的最佳外植体;2,4-D浓度是影响愈伤组织诱导率的最主要因素,其次是外植体类型;诱导中苜2号愈伤组织的最佳培养基为:MS+2,4-D 0.2mg/L+NAA 0.01mg/L+6-BA 1mg/L+KT 0.2mg/L.     

噻二唑苯基脲对桑树愈伤组织诱导的影响

以2个主栽桑树品种为材料,探讨了噻二唑苯基脲(TDZ)等植物生长调节剂对桑树愈伤组织诱导的影响。结果表明,TDZ能够显著促进桑树愈伤组织的产生和生长。叶柄、幼茎愈伤组织诱导最佳培养基为MS+0.5mg/L TDZ+0.2 mg/L NAA;子叶愈伤组织诱导最佳培养基为MS+0.2 mg/L TDZ+0.2 mg/L NAA。