水稻幼穗发育期硒与硅共施效应

水培试验表明，Se和Si共施提高水稻开发期、灌浆末期剑叶叶绿素含量、灌浆末期叶片老化指数。0.1～0.3μg／mlSe加Si使黄熟期剑叶可溶性蛋白含量增加.Se和Si共施使灌浆期剑叶可溶性糖含量降低，而收割时其含量增加，株高、穗长、每穗实粒数、千粒重、谷产量以及结实率提高.主茎幼穗长1.5～2.5cm时开始水培的植株，0.3μg／mlSe与Si共施.千粒重及每穗谷产量最高.     

硅对镉胁迫下水稻幼苗培养液指标及其生物量的影响

通过溶液培养,研究不同浓度Si(0、30、80、130、180 mg·L-1SiO2)在4.0 mg·L-1Cd2 浓度胁迫下对水稻幼苗培养液中的Si、Cd含量、pH值及其下降值、根系细胞K 外流量和根、茎叶干重的影响.结果表明,大量的Si可通过在水稻体外(培养液中)与Cd相结合,形成了Si-Cd络合物,从而束缚了Cd的活性,使培养液中有效Cd含量明显下降.降低了Cd对水稻幼苗的毒性.最终抑制水稻对培养液中镉的吸收.此外,随着培养液中SiO2浓度的加入,根系细胞K 外流量极显著(P＜0.01)降低,培养液中的pH值下降,说明si可以减轻Cd对水稻根系细胞质膜的伤害,使细胞质膜透性下降,从而保护了水稻细胞膜不受Cd的破坏.进而增加了水稻幼苗根、茎、叶的生物量.     

硅浓度对纤细角毛藻和三角褐指藻生长及叶绿素荧光特性的影响

在温度为23±1℃,盐度为31,光照强度为100μmol/m2.s的条件下,用含有不同硅浓度(0、12、24、48、96和384μmol/L)的培养基对中国海洋大学微藻种质库保存的纤细角毛藻(Chaetoc-eros gracilis)和三角褐指藻(Phaeodactylumtricornutum)进行培养,研究两种硅藻一次性培养过程中,不同硅浓度对其细胞密度、叶绿素含量以及PSⅡ最大光能转化效率(Fv/Fm)的影响。单因子方差分析结果表明,硅浓度对两种硅藻的生长及光合作用均有显著影响(P<0.05)。纤细角毛藻的细胞密度、叶绿素含量和Fv/Fm比值均随着起始硅浓度的增加而增加,在96μmol/L处达到最大值,其后随着起始硅浓度的增加,上述指标反而下降。三角褐指藻的细胞密度、叶绿素含量和Fv/Fm比值均随着起始硅浓度的增加而增加,在384μmol/L处达到最大值。多重比较结果表明,纤细角毛藻和三角褐指藻生长和进行光合作用的最适硅浓度分别为96和384μmol/L。     

苜蓿草粉对3种金属材料的软磨料磨损试验

以‘甘农3号'紫花苜蓿为磨料,在磨损试验机上对45#钢、9SiCr钢、60Si2Mn钢试样进行磨料磨损试验.在相同试验条件下,通过测定材料的硬度、韧度、磨损质量,观察材料显微组织,对比分析了3种金属材料抗苜蓿草粉的磨损性能.结果表明:9SiCr钢具有高的强韧性,单磨程平均磨损量为2.19 mg,抗苜蓿软磨料的磨损性能最...     

不同氮磷硅含量和接种密度对三角褐指藻生长的影响

通过均匀设计试验研究N、P、Si含量与接种密度对三角褐指藻生长的动态关系。结果显示 ,8d藻生长率和 8d密度差不受N含量 (质量浓度 1.0～ 89.4mg/L)影响 ,但随P含量 (质量浓度 0 .1～ 2 8.6mg/L)和Si含量 (质量浓度 0 .5～ 2 0 .1mg/L)增加而增加。当P质量浓度 2 8.6mg/L、Si质量浓度 2 0 .1mg/L ,接种密度分别为 8.4× 10 4 ml- 1和 143.1× 10 4 ml- 1时 ,藻生长率和密度差可达 0 .778d- 1和 869.7× 10 4ml- 1。 11d藻生长率主要受接种密度的影响 ,N质量浓度起次要作用 ,P和Si质量浓度对藻生长率无影响。当N质量浓度 89.4mg/L ,接种密度 8.4× 10 4 ml- 1时 ,藻生长率可达 0 .4 92d- 1。     

岩性对毛竹林土壤硅形态的影响

采取发育于5种不同岩性类型（花岗闪长岩、花岗岩、玄武岩、凝灰岩和页岩）的毛竹Phyllostachys edulis林不同土层（0-20cm和20-40cm）的土样,运用逐级化学提取技术,研究不同岩性条件下发育的土壤中硅的形态以及影响硅转化的因素,为不同岩性类型土壤有效硅调控提供科学参考。结果表明：④不同岩性类型土壤中总二氧化硅质量分数从大到小顺序依次为凝灰岩〉花岗闪长岩〉页岩〉花岗岩〉玄武岩,而且不同岩性之间二氧化硅质量分数差异性较大;②不同岩性类型下发育的毛竹林土壤有效硅质量分数及相对百分比顺序为玄武岩〉花岗岩〉页岩〉花岗闪长岩〉凝灰岩,有效硅主要来源于无定形硅的转化,与土壤中总二氧化硅的质量分数相关性不大;⑧岩性能够影响土壤中总硅数量以及各种硅形态的整体分布。     

硅钙镁钾肥对桑树生长、桑叶产量及品质的影响

通过田间小区试验,研究不同用量硅钙镁钾肥对桑树生长发育及桑叶产量、品质的影响。结果表明：相对于农民习惯施肥,配施硅钙镁钾肥能够显著增加春、夏、秋三季桑树的新稍数和平均枝长,同时明显提高了桑叶净光合速率（Pn）和SPAD值,硅钙镁钾肥处理的桑树单株叶片数和百叶重均明显提高,最终提高了三季的桑叶产量,全年桑叶产量较对照提高4．47％～14．61％,差异性显著。此外,配施硅钙镁钾肥能够提高桑叶品质,桑叶中蛋白质、氨基酸、油脂及还原糖含量显著高于对照处理。综合研究结果,建议桑园生产硅钙镁钾肥施用量以75k-667m2为宜。     

壳聚糖/SiO2杂化材料的制备

采用溶胶－凝胶法，以偏硅酸钠为无机前驱体，戊二醛为交联剂，制备壳聚糖／SiO2杂化材料。结果表明，当SiO2,戊二醛的质量分别为15％，0．1％－0．5％时，制得的杂化材料具有良好的力学性能。     

外源硅缓解库拉索芦荟盐胁迫伤害效应的细胞生理学分析

为探索硅(Si)增强微咸水长期灌溉下库拉索芦荟(Aloe veraL.)耐盐性的机制,研究了盐(NaCl 100mmol.L-1)胁迫下加Si(2.0 mmol.L-1)处理30 d对库拉索芦荟叶同化组织细胞中矿质离子分布、叶绿体超微结构和腺苷三磷酸(ATP)酶活性的影响。X-射线能谱微域分析结果表明,盐胁迫下加Si,芦荟叶同化组织细胞中钠离子(Na )和氯离子(Cl-)相对含量显著下降,伴随着钾离子(K )相对含量显著升高、钾钠比(K /Na )显著增大。同时,加Si利于保持芦荟叶绿体正常形态,保护光合层片精细结构,显著缓解盐胁迫对其光合细胞器的伤害。利用电镜-细胞化学技术首次表明,提高浇灌溶液中可溶性Si含量水平,明显增强盐胁迫下芦荟叶同化组织细胞中胞间连丝、质膜和液泡膜ATP酶活性。外源Si增强盐胁迫下芦荟叶同化组织细胞中ATP酶活性是其改善叶同化组织细胞中的离子分布、缓解芦荟盐胁迫伤害效应的重要机制。     

Silicon pools and fluxes in soils and landscapes—a review

Silicon (Si) is the second‐most abundant element in the earth's crust. In the pedosphere, however, huge spans of Si contents occur mainly caused by Si redistribution in soil profiles and landscapes. Here, we summarize the current knowledge on the different pools and fluxes of Si in soils and terrestrial biogeosystems. Weathering and subsequent release of soluble Si may lead to (1) secondarily bound Si in newly formed Al silicates, (2) amorphous silica precipitation on surfaces of other minerals, (3) plant uptake, formation of phytogenic Si, and subsequent retranslocation to soils, (4) translocation within soil profiles and formation of new horizons, or (5) translocation out of soils (desilication). The research carried out hitherto focused on the participation of Si in weathering processes, especially in clay neoformation, buffering mechanisms for acids in soils or chemical denudation of landscapes. There are, however, only few investigations on the characteristics and controls of the low‐crystalline, almost pure silica compounds formed during pedogenesis. Further, there is strong demand to improve the knowledge of (micro)biological and rhizosphere processes contributing to Si mobilization, plant uptake, and formation of phytogenic Si in plants, and release due to microbial decomposition. The contribution of the biogenic Si sources to Si redistribution within soil profiles and desilication remains unknown concerning the pools, rates, processes, and driving forces. Comprehensive studies considering soil hydrological, chemical, and biological processes as well as their interactions at the scale of pedons and landscapes are necessary to make up and model the Si balance and to couple terrestrial processes with Si cycle of limnic, fluvial, or marine biogeosystems.