鸡树条荚蒾种子生活力测定

以鸡树条荚蒾为材料,对其种子(种仁)进行TTC染色测定生活力,结果表明:在城市人工栽培条件下,种子的生活力达到98%,种子生命力强,质量优良.在不具有恒温设备的状况下,种子(种仁)的适宜染色时间应延长至48 h或更长一点时间.     

虎舌红种内花粉形态与活力的比较研究

通过扫描电镜观察了虎舌红及其2个新品种红虎舌和绿虎舌的花粉形态特征,并用TTC染色法和离体培养法测定其花粉的活力,比较了虎舌红种内花粉形态及活力的差异,为虎舌红的杂交育种等进一步的开发利用提供依据。结果表明:3种花粉均为N3P4C5型,单粒,等极,辐射对称,椭球形,极面观三裂圆形或三角形,赤道面观椭圆形,萌发孔为3孔沟,沟纵长,直达两极,大部分形成合沟;外壁纹饰为虎舌红呈穴网状,红虎舌呈颗粒状,绿虎舌呈网纹状,依据3种花粉的大小和外壁纹饰的差异,推断出红虎舌的性状较为原始,而绿虎舌的性状较为进化;用TTC染色法和离体培养法对3种花粉的活力大小进行了比较,其结果一致,均为红虎舌>绿虎舌>虎舌红,3种花粉最佳的贮藏方式均为在4℃条件下贮藏。     

合欢种皮结构及其与吸水的关系

【目的】研究合欢种皮结构及其对种子吸水的影响,探索种子的吸水机制,为硬实性种子休眠的解除提供理论依据。【方法】以籽粒饱满、无病虫害的合欢种子为试材,利用体视显微镜和扫描电镜观察种皮结构,并结合染色法和凡士林密封试验,探究合欢种皮结构对吸水的影响。【结果】合欢种子的种皮具有不透水性,采用始温60、70、80℃的热水浸种处理均能有效解除其硬实性,但种子生活力随热水温度的升高而降低。合欢种子呈不规则的扁椭圆形,种皮坚硬,黄褐色,背腹面各有一条向外突出且长轴与种子侧缘平行的椭圆形棱。扫描电镜结果表明,椭圆形棱是种皮表面的一道较宽的裂痕。合欢种子种皮由外到内依次为:表皮层、栅栏层、骨状石细胞层、厚壁细胞层、薄壁细胞层。种子表面有许多大小、形状及深度不同的裂缝。种孔和种脊紧闭,种脐被致密的蜡质所覆盖,维管束由种脐开始平行于种皮表面向其深处延伸。热水处理后,种孔开启,种脊处细胞开裂,种脐处的蜡质减少。凡士林密封实验发现,解除硬实性后,种子各部位均可吸水,但子叶末端区域的吸水量始终最低。吸水4h时,种脐部位的吸水量最大,显著高于其他处理;随后中间部位吸水加快,吸水至24h,种脐部位和中间部位的吸水率差异不显著,均高于子叶末端部位,该差异趋势一直保持至种子吸水饱和。苯胺蓝染色发现,种皮有3种吸水途径:水分最先由种脊进入种皮并沿其内的维管束移动;随后种孔和种脐处也有水分进入;水分还可以透过表皮层,但没有继续向内穿过栅栏层进入种子内部。TTC染色发现,种子的胚根端最先吸水并被染成红色,随后水分由胚根端向种子另一端即子叶末端迁移,在同一水平位置水分由子叶侧缘向中间渗透。【结论】解除合欢种子硬实性的最佳方法是始温70℃的热水处理5min。种脊是合欢种子的初始吸水部位,随后水分也由种孔和种脐进入种胚,并由胚根端向子叶末端迁移。种皮的栅栏层、明线、厚壁细胞层、覆盖于种脐表面的蜡质层和填充于种皮维管束中的蜡质可能均与合欢种子的硬实性有关。     

根系活力检测中保险粉用量的确定

根系活力是常用的反映植株生活力的指标,TTC(2,3,5-三苯基氯化四氮唑)还原法是使用最广泛的方法。但现有研究论文及植物生理学实验指导所介绍的方法中保险粉用量缺乏合理性。本研究旨在分析这种不合理性是否误导现有根系活力相关的研究,并通过试验确定适宜保险粉用量。采用文献计量法对现有文献中的根系活力数值进行分析。保险粉用量试验从0.02～0.20g共7个不同量,各加5mL 5mg·mL~(-1)TTC溶液,生成三苯基月替(TPF)后加乙酸乙酯10mL,研究保险粉用量与日立紫外分光光度计(U-3900H)485nm下吸光值的关系,以确定合适用量。文献计量分析结果表明,现有根系活力测定结果的偏差超出合理范围。试验结果显示,保险粉的用量小于150mg时,与吸光值呈线性相关,超过150mg后,吸光值不再增加。因此,5mL TTC溶液中加入保险粉的最低量应为150mg。     

西南桦花粉活力的快速检测

以离体培养为参照,从TTC、I-KI、醋酸洋红3种方法中筛选出适宜西南桦花粉活力的快速检测方法,应用着色力表示花粉活力.结果表明,在上述3种检测方法中,TTC法的检测结果与萌发法显著一致,应用TTC法检测西南桦花粉活力,其染色液的pH值以7.0为宜;这说明TTC法适合在野外条件下快速检测西南桦花粉的活力.     

基于TTC自交一代家系的粳稻品质性状遗传分析

运用3倍体的遗传模型对粳稻丙8979和C堡为亲本产生的TTC自交一代家系稻米品质进行了遗传分析.结果表明,垩白米率性状存在显著的上位性效应,糙米率、精米率、精米粒长、精米粒宽、长宽比、糊化温度、胶稠度、直链淀粉含量8个品质性状存在极显著的上位性效应,垩白大小性状未检测到显著的上位性,其遗传变异主要由加性、显性效应所引起,且加性变异分量起着主要作用.     

大花蕙兰和墨兰花粉活力测定及贮藏研究

[目的]快速测定大花蕙兰和墨兰花粉活力,保证人工杂交育种有效开展。[方法]以大花蕙兰和墨兰花粉为材料,用离体培养法和TTC染色法分别测定花粉活力,同时进行不同温度贮藏试验。[结果]TTC染色法所测得的花粉活力均略高于离体培养法,TTC对花粉染色12 h即可达到较好的观察效果;-20和-80℃冷藏花粉1年后仍保持较高活力。[结论]TTC法操作简便,需时短,可作为大花蕙兰和墨兰花粉活力测定便捷、有效的方法。-20℃低温、干燥条件可作为大花蕙兰和墨兰花粉保存的简易方法。     

四唑染色法快速测定任豆种子生活力的研究

根据四唑(2,3,5-Triphenyl Tetrazolium Chloride,缩写TTC)染色法测定种子生活力的原理,研究不同四唑溶液浓度,不同染色温度和不同染色时间对任豆种子生活力测定的影响,摸索出测定任豆种子生活力的最佳条件.结果表明,溶液浓度,染色温度,染色时间三者之间存在一定的关系,通过改变三之者中的一者或两者可以达到改变其它两者或一者的目的,因此,可根据实际需要来确定测定条件.比较四唑染色法测定任豆种子生活力的不同条件,本文提出:温度为25℃,浓度为0.5%,染色时间为7h是测定任豆种子生活力的最佳条件.     

3种阔叶树种子生活力四唑法测定研究

本文对山玉兰、厚朴、黄山栾树这3种阔叶树种子生活力四唑测定法进行了研究,探讨各种种子适宜的预处理方法和四唑溶液浓度.结果表明:除黄山栾树种子外,另外2种种子需要全部去除种皮;在25℃测定条件下,测定山玉兰和厚朴种子生活力的最佳处理浓度为0.5%的四唑,黄山栾树用0.1%浓度的四唑;在种子生活力测定时,低质量的种子容易加大实验误差,并对所采用四唑溶液的浓度和种子预处理方法产生影响.     

Comparison and improvement of methods for determining soil dehydrogenase activity by using triphenyltetrazolium chloride and iodonitrotetrazolium chloride

The triphenyltetrazolium chloride (TTC) method described by Thalmann (1968) and the iodonitrotetrazolium chloride (INT) method described by Spothelfer-Magaña and Thalmann (1992), used for measuring soil dehydrogenase activity, have been modified to overcome some methodical short-comings. Absorption maxima of 485 nm for triphenylformazan dissolved in acetone, 491 nm for iodonitrotetrazolium formazan (INTF) dissolved in tetrahydrofuran and 455 nm for INTF dissolved in N,N-dimethylformamide are recommended for measuring wavelengths. Extracting triphenylformazan twice with acetone is less toxic and proved to be at least as efficient as extraction with a mixture of 90% acetone and 10% carbon tetrachloride (Thalmann 1968 method). Tetrahydrofuran and dimethylformamide were equally good in extracting INTF from soils, but the former was less toxic. Anaerobic incubation resulted in the formation of higher amounts of triphenylformazan and INTF as well as reduced standard error. Both TTC and INT reduction showed high reproducibility and good differentiation of the microbial activity of six soils. For several reasons (more easily determined substrate dose depending on different soil types, better reduction, shorter incubation time), INT reduction seems to be a more suitable method of measuring soil microbial activity than TTC reduction.