1 - MCP处理抑制切花菊叶片衰老的研究

500 nl/L1-MCP熏气6 h能很好地延长切花菊品种优香的瓶插寿命,推迟叶片的乙烯释放高峰,抑制外源乙烯的伤害效应,有效降低了外源乙烯引起的失水、叶片萎蔫及黄化现象。     

刺五加扦插繁殖及其生理的初步研究

刺五加[Acanthopanax senticosus (Rupr.et Maxim)Harms.]是具有“扶正固本”功效的珍贵药用灌木。近年来,其开发利用速度大大增加,据统计,仅1981年黑龙江省的采掘量就达2,000吨。由于主要利用其根茎和根部,因此长期过量采掘,势必造成资源的破坏与枯竭。为此,必须科学地开发利用,以保护资源,促进天然更新,     

文心兰茎尖诱导原球茎的影响因子研究

以文心兰无菌幼苗茎尖为试材,研究了基本培养基、植物生长调节剂、碳源、培养基pH值及茎尖放置方式对原球茎诱导的影响。结果表明:1/2MS为原球茎诱导的适宜培养基,0.1 mg/L TDZ最适合原球茎诱导且无不定芽分化、诱导率达80%,30 g/L蔗糖是原球茎诱导的适宜碳源,培养基pH值为5.2时原球茎诱导效果最佳,茎尖竖直放置比水平放置更有利于原球茎诱导。     

超声波预处理对3种切花瓶插品质改良的初步研究

比较研究了超声波、超声波配合预处理液脉冲等处理对于切花菊、香石竹和切花月季品质的影响。结果表明 :用超声波预处理可显著增加切花花枝鲜重 ,推迟鲜重始降天数 ,增大最大花径 ,延长瓶插寿命。其中以预处理液配合超声波脉冲处理 2 0min左右的整体品质最佳。     

月季切花采后衰老机理及贮鲜技术研究

综述月季切花采后衰老过程中水分、碳水化合物、蛋白质等大分子物质以及内源激素、细胞 pH值、花色等生理生化变化 ,并概述了采前水、温、光、营养、采收时间等因子及采后贮藏保鲜条件对切花月季观赏品质及瓶插寿命的影响。     

梅花‘南京红须’花色色素花色苷的分离与结构鉴定

梅花‘南京红须'花色色素的2种主要花色苷可用甲醇-乙酸-水(10:1:9)提取,再用纸层析和柱层析纯化.特征性颜色反应、薄层层析、纸层析、紫外-可见光谱、高效液相色谱、气相色谱、核磁共振谱和快原子轰击质谱分析表明:2种花色苷分别是花青素-3-氧-(6"-氧-α-吡喃型鼠李糖基-β-吡喃型葡萄糖)苷和花青素-3-氧-(6"-氧-没食子酰-3"-氧-β-吡喃型葡萄糖基-β-吡喃型葡萄糖)苷.花青苷除决定‘南京红须’的紫红花色外,还可能强化‘南京红须’在寒冷环境中的生存能力.     

二"莲"切花研发从五方面入手

荷花切花应用始于南北朝,初源于佛前、宫廷供花及文人墨客休闲插花。古人常用发丝缠基、填泥封口或沸水烫基等方法保鲜。但因极易失水萎蔫,至今尚无理想的采后技术以满足市场需求。要尽快将荷花、睡莲(二“莲”)及其他可作为陪衬花材的水生花卉切花,切叶推向国内外市场,     

超声波对蓝睡莲湿藏期间水分状况和膜稳定性的影响

 本文研究了超声波与保鲜剂复合(UW + PS) 处理及超声波(UW) 预处理对蓝睡莲(Nymphaea caerulea) 切花6 d湿藏期间水分状况及膜稳定性有关指标的影响。结果表明: 与对照相比, 两组超声波预处理均延长了切花瓶插寿命; 改善了切花的水分状况, 表现为促进了花枝鲜质量增加率及吸水量与失水量之平衡, 提高了水分吸收效率和花茎不同部位的水势; 超声波还有效地阻止了O₂ ^·产生速率和MDA含量的上升, 提高了抗氧化酶CAT和SOD的活性。超声波与保鲜剂复合处理(UW + PS) 总体优于单独超声波处理, 表现了UW和PS的加合效应。     

N - 月桂酰乙醇胺对香石竹切花瓶插效应的影响

 研究N - 月桂酰乙醇胺〔NAE (12∶0) 〕对香石竹切花‘Red Barbara’瓶插效应的影响。结果表明, 5 μmol/L NAE (12∶0) 处理使‘Red Barbara’切花瓶插寿命延长了2 d ( P < 0.05, n = 30) , 其有效作用是显著延长了开放期的持续时间, 但对开放前期及初萎后的发育衰老进程影响不大。NAE (12∶0)处理还显著降低了该切花开放期花瓣离子渗漏率的上升幅度, 延缓丙二醛积累速率。讨论了NAE (12∶0) 处理的效应, 其作为信号脂质可降低开放期花瓣的膜脂过氧化作用, 保护膜系统的完整性。     

小菊悬浮细胞培养与植株再生研究

 以小菊‘七月红’品种为试材, 进行了细胞悬浮培养及植株再生诱导的探讨。结果表明, MS+ 1.0 mg·L ^-1 2, 4-D + 0.2 mg·L ^-1 6-BA培养基适合从试管苗茎段有效诱导生长迅速、质地疏松的愈伤组织。获得的愈伤组织在MS + 0.5 mg·L ^{- 1} 2, 4-D + 0.2 mg·L ^{- 1} 6-BA液体培养基中振荡培养, 建立细胞悬浮培养体系。悬浮细胞的生长曲线呈上升的半抛物线型, 细胞生长大致分缓慢生长期(0～2 d) 、对数生长期(2～10 d) 和停滞期(10 d以后) ; 随着悬浮细胞生长, 培养液pH值迅速下降。悬浮细胞固液双层培养表明, 在培养基MS + 0.2 mg·L ^{- 1} KT + 0.2 mg·L ^{- 1} 2, 4-D上植板率最高; 4℃低温2 h处理能促进悬浮细胞生长, 提高植板率; 随着继代次数增加植板率呈下降趋势。培养1个月后, 形成了直径约0.2 cm的愈伤组织, 将其转到MS + 2 mg·L ^-1 6-BA + 0.1 mg·L ^{- 1} NAA培养基后, 继代4次, 分化后出芽; 分化芽在培养基MS + 0.5 mg·L ^-1 NAA上诱导生根, 形成小植株。