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1.
本文以德昌杉无性系种子园为研究材料,对38年生30个无性系870个分株的胸径、树高和冠幅进行生长量统计分析,以及从异速生长指数上分析不同无性系间生长量上的差异。30个无性系的胸径、树高和冠幅的均值分别为28.24 cm、19.18 m和5.18 m,其变异系数的均值分别为0.29、0.19和0.24;胸径-树高、胸径-冠幅异速生长关系分析显示德昌杉的在胸径生长量上分配的速率明显高于树高和冠幅,表明无性系间胸径、树高和冠幅的异速生长轨迹发生了显著变化;胸径-冠幅和胸径-树高之间的SMA斜率在不同无性系间,无相同的SMA斜率,除16和28号无性系的胸径-树高外,差异均显著(P<0.05),30个无性系间没有一致的生长量分配速率。无性系间异速生长关系的差异导致不同的生长量分配模式进一步体现了环境对各构件生长的生态可塑性和无性系间生长性状存在着丰富的遗传变异,为德昌杉优良无性系的早期选择提供了可能性。  相似文献   
2.
为更好了解黄葛榕、榕树和异叶榕叶绿体基因组密码子的使用模式,利用Codon W、CUSP、EXCEL等软件对其叶绿体编码基因的密码子使用偏好性进行系统分析。结果表明,3种榕属植物的第3位碱基以A/T为主且GC3的含量远低于GC1和GC2;并且大部分的ENC值都在40以上,说明3种榕属植物的密码子偏好性较弱;中性绘图、ENC-plot和PR2-plot绘图分析表明,3种榕属植物的密码子偏好性不仅受选择的影响,还受突变等多重因素的影响;此外,还确定了3种榕属植物的最优密码子,且都以A/U结尾。该研究结果可为榕属植物叶绿体基因组后续的外源基因改良奠定基础。  相似文献   
3.
【目的】从云南栘叶片中提取高质量的总DNA,并建立稳定的SSR-PCR反应体系。【方法】以云南栘幼嫩叶片为材料,采用尿素法、改良尿素法、SDS法、CTAB法、MAGEN试剂盒法和磁珠试剂盒法提取总DNA,从中筛选提取云南栘总DNA的最佳方法;利用L16(45)的正交设计试验优化影响云南栘SSRPCR扩增体系的影响因子,建立云南栘SSR-PCR反应体系。【结果】改良尿素法为云南栘总DNA的最佳提取方法,提取的总DNA质量浓度、总量和A260/A280分别为382.64 ng/μL、38.26μg和1.87,且琼脂糖凝胶电泳的条带清晰明亮,说明DNA完整性好、质量浓度高。优化后的SSR-PCR扩增反应体系为:模板DNA30 ng,Taq DNA聚合酶0.5 U,引物1.25μmol/L,Mg2+2.0 mmol/L,dNTPs 2.5 mmol/L,10×PCR buffer 2.5μL,补水至25μL。【结论】改良尿素法能够从云南栘中提取高质量的总DNA,所建立的SSR-PCR反...  相似文献   
4.
\t\t\t\t\t目的\t\t\t\t\t建立云南栘\t\t\t\t\tPurpose\t\t\t\t\tTo establish the optimal SRAP-PCR reaction system in Docynia delavayi and selection of SRAP-PCR polymorphism primer combinations.\t\t\t\t\t\t\t\t\t\t\t\t\t\t\t\t\t\tMethod\t\t\t\t\tThe improved CTAB method was used to extract DNA from young leaves of D. delavayi from three natural populations of Muli, Lancang and Yingjiang. In order to establish the SRAP-PCR reaction system applied to D. delavayi, the orthogonal design L16(45) was used to optimize five important influencing factors such as Taq DNA polymerase, Mg2+, dNTPs, template DNA and primers. And the primer combinations with high SRAP-PCR polymorphism were screened from 100 primer combinations.\t\t\t\t\t\t\t\t\t\t\t\t\t\t\t\t\t\tResult\t\t\t\t\tThe optimal reaction system for the SRAP-PCR of D. delavayi as (25 μL): Taq DNA polymerase 0.5 U, Mg2+ 2.5 mmol/L, dNTPs 0.25 mmol/L, template DNA 80 ng, primers 0.8 µmol/L. In addition, the effect degrees of the factors on the SRAP-PCR reaction were in the order of dNTPs