应用ELISA检测鸭瘟抗体

应用ＥＬＩＳＡ间接法测定鸭瘟抗体,具有简单,快捷,特异的优点,小鸭免疫鸭瘟弱毒疫苗２周后抗体水平明显上升,４周达最高峰,用１０００个致死量鸭瘟强毒攻击,抗体效价与免疫保护无明显的相关性。     

应用ELISA检测鸭瘟抗体

应用ＥＬＩＳＡ间接法检测鸭瘟抗体,具有简单、快捷、特异的优点。小鸭免疫鸭瘟弱毒疫苗２周后抗体水平明显上升,４周达最高峰。用１０００个致死量鸭瘟强毒攻击,结果,抗体效价与免疫保护无明显的相关性。     

鸭瘟抗体检测方法研究

将鸭瘟组提病毒经Sephadex G200柱层析纯化后作为包被抗原，以健康鸭IgG提纯后免疫羊，制备羊抗鸭IgG，并用过碘酸钠法进行辣极过氧化物酶标记，建立了检测鸭瘟病毒抗体的间接酶联免疫吸附试验（ELISA）。经对不同血清样品的检测，表明此方法特异性高，重复性好，操作简便，适于大批鸭群抗体水平监测和流行病学调查，为合理免疫和科学预防提供了技术手段。     

间接ELISA检测新型鸭瘟病毒抗体

以50%饱和度的硫酸铵粗提病毒,再经Sephadex G-200过柱层析纯化了新型鸭瘟病毒,以此作为包被抗原,并用自制油苗免疫雏鸭,获得了高效价的血清抗体,又经过各种条件优化,建立了检测血清抗体的间接ELISA方法.经对不同发病日龄和免疫油苗后雏鸭的血清检测,证明该检测方法有很高的敏感性、特异性和重复性,可作为快速诊断该病的一种可靠方法.     

PCR检测鸭瘟病毒的研究

根据鸭瘟病毒DNA聚合酶基因序列，设计、合成了1对引物，以1株鸭瘟病毒疫苗株DNA为模板，进行：PCR扩增，扩增出预期563bp的目的DNA片段。将扩增出的DNA片段克隆到pMDl8—T载体，经Amp／IPTG／X-gal平板筛选，HindⅢ、XbaⅠ双酶切鉴定，获得阳性重组质粒。对重组质粒进行序列测定，与参考序列比较，二者同源性为99．3％。小鹩瘟病毒、鸭肝炎病毒、鹅副黏病毒：PCR扩增均为阴性。用此方法检测人工感染和自然感染鸭瘟的组织(脑、肝、脾)，均能检测到鸭瘟病毒DNA。PCR检测鸭瘟病毒具有高度的特异性、敏感性，能够用于鸭瘟急性及亚临床感染的检测与诊断。     

Dot—ELISA检测鸭瘟病毒的研究

用斑点酶联免疫吸附试验检测15头份鸭中毒人工发病毒雏鸭的粪便，检出率达87％，三次重复检测，符合率达100％，该法简便、快速、准确、经济、易于在基层推广应用。     

安宁河流域鸭瘟、鸭霍乱综合防制研究Ⅰ．鸭瘟母源抗体测定

本试验测定了母鸭免疫后不同时期所产雏鸭的母源抗体及其卵黄吸收情况。结果表明：（１）１～４周龄雏鸭血清中均含母源抗体，在１～３周内可获得不同程度保护。５～８ｄ为母抗高峰期，保护率１００％（６／６），３～４ｄ和１０～１４ｄ的保护率８３．３％（５／６），２０ｄ后保护率不到５０％。（２）同居感染结果，５日龄保护８０％（４／５），１０日龄保护４０％（２／５），１５日龄２０％（１／５），２０，２５日龄均无存活。（３）正常情况（脐带收得好）下，出壳７２ｈ卵黄吸收率达８４．８％，１２０ｈ吸收率９５．１％，１７２ｈ几乎全部（９８．９％）吸收。     

间接ELISA检测鸭病毒性肝炎抗体的研究

本试验以氯仿去脂-滤膜过滤-浓缩层析方法纯化病毒作包被抗原，成功地建立了检测鸡抗鸭肝炎病毒(DHV)血清抗体的间接ELISA方法，经交叉试验和阻断试验表明，该方法具有很高的敏感性和特异性，应用于DHV抗体检测比较有效，为鸭抗DHV血清抗体检测以及进行DHV单克隆抗体筛选提供了依据。     

间接ELISA检测番鸭细小病毒抗体

鸭细小病毒病是由鸭细小病毒（Duck parvovirus,DPV）引起的一种急性病毒性传染病,以雏鸭易感,临床主要表现为气喘、脚软和渗出性肠炎,死亡率约50%～80%,在世界各养鸭地区都有分布,其预防和控制已直接关系到水禽养殖业的持续稳定发展[1]。临床和实验室试验证实番鸭细小弱毒疫苗是预防控制该病最有效措施,而对细小病毒特异性抗体的监测是评价疫苗免疫效果及鸭群合理制定免疫程序的关键[2]。目前国内已经报道[3]的检测番鸭细小病毒抗体的方法有血清微量中和试验、微量点凝试验、胶乳凝集反应、琼脂扩散试验,     

检测鸭呼肠孤病毒抗体间接ELISA方法的建立

RT—PCR扩增鸭呼肠孤病毒（Duckreovirus,DRV）的dB基因,克隆到pET-32a（＋）表达载体,再转化大肠杆菌Transetta（DE3）;含有重组质粒pET—σB的大肠杆菌经IPTG诱导,获得大小为55000的以包涵体形式表达的σB重组蛋白。Westernblotting显示,σB重组蛋白能够与兔抗DRV多抗血清特异性结合。以高亲和NI—NTA树脂在变性条件下纯化、梯度尿素复性的σB重组蛋白为包被抗原,建立了检测DRV抗体的间接ELSIA方法。分别以间接ELSIA方法和血清中和试验对DRV感染鸭血清和SPF鸭血清进行检测,两者的符合率为100％。该间接ELSIA方法对鸭瘟病毒、鸭病毒性肝炎病毒和禽流感病毒阳性血清均无交叉反应。     

鸭瘟病毒抗体间接ELISA检测试剂盒的研制

将鸭瘟病毒（DPV）CHv株经过鸭胚成纤维细胞增殖、反复冻融、差速离心和蔗糖密度介质离心制备纯化抗原,建立了用于检测鸭血清中抗DPV特异性IgG抗体的间接ELISA方法,并对其进行了标准化研究,确定了最佳工作条件,研制了相应的检测试剂盒并对盒内各组分的保存条件、质量控制以及试剂盒的特异性、重复性进行了研究。结果显示,4.75μg/孔的纯化DPV抗原包被反应板可获得良好的特异性和敏感性,1∶100稀释的待检血清样品反应后D405 nm值换算为抗体效价的标准直线方程为y=1.573＋3.552x（r=0.953,n=40）。试剂盒在4℃保存3个月或-20℃保存10个月后各项性能都很好。应用该试剂盒对皮下注射、口服和滴鼻免疫DPV弱毒的20日龄樱桃谷鸭血液中抗DPV特异性IgG抗体效价进行了测定,皮下免疫鸭于第6 d,口服和滴鼻免疫鸭于第9 d可在血清中检测到DPV特异性抗体,且至第60 d时依然可检测到高效价抗体。证实,该试剂盒可用于鸭瘟的血清流行病学调查和鸭场免疫抗体水平的监测。     

一种“新型鸭瘟”的报道

鸭瘟是由疱疹病毒科的鸭瘟病毒引起的一种急性败血性传染病,是危害养鸭业的二类传染病之一.前几年,很少爆发大型鸭瘟,而且及时的预防措施一般能防止鸭瘟的流行和发生.2000年以来,一种新型鸭瘟已在我省的几个地区流行,且呈爆发性,其临床症状及剖检变化与传统鸭瘟相同,但该病主要侵害1月龄以下的雏鸭,成年鸭很少发病,常规的鸭瘟疫苗不能预防该病的发生,且发病后用鸭瘟抗血清治疗无效.根据对这几个地区的流行病学调查,该病的发病率可达70%～100%,死亡率高达50%～80%.由于目前对该病无有效的防治措施,因而给我省的养鸭业造成了重大的经济损失.现就这一“新型鸭瘟”(暂命名)的临床症状、剖检变化、病原分离与培养、电镜观察及国内研究进展作一综述.     

Identification of duck plague virus by polymerase chain reaction

A polymerase chain reaction (PCR) assay was developed for detecting duck plague virus. A 765-bp EcoRI fragment cloned from the genome of the duck plague vaccine (DP-VAC) virus was sequenced for PCR primer development. The fragment sequence was found by GenBank alignment searches to be similar to the 3' ends of an undefined open reading frame and the gene for DNA polymerase protein in other herpesviruses. Three of four primers sets were found to be specific for the DP-VAC virus and 100% (7/7) of field isolates but did not amplify DNA from inclusion body disease of cranes virus. The specificity of one primer set was tested with genome templates from other avian herpesviruses, including those from a golden eagle, bald eagle, great horned owl, snowy owl, peregrine falcon, prairie falcon, pigeon, psittacine, and chicken (infectious laryngotracheitis), but amplicons were not produced. Hence, this PCR test is highly specific for duck plague virus DNA. Two primer sets were able to detect 1 fg of DNA from the duck plague vaccine strain, equivalent to five genome copies. In addition, the ratio of tissue culture infectious doses to genome copies of duck plague vaccine virus from infected duck embryo cells was determined to be 1:100, making the PCR assay 20 times more sensitive than tissue culture for detecting duck plague virus. The speed, sensitivity, and specificity of this PCR provide a greatly improved diagnostic and research tool for studying the epizootiology of duck plague.     

PCR用于鸭瘟病毒诊断的研究

根据鸭瘟病毒UL6和UL7基因序列,设计合成了一对引物,以2株疫苗株、1株强毒株和1株山东分离株DNA为模板,进行PCR扩增,得到预期690bp的目的片段.将扩增的目的片段克隆到pMD18-T载体,经Amp平板筛选,HindⅢ、BamHⅠ双酶切鉴定,获得阳性重组质粒.对重组质粒进行序列测定,与参考序列比较,山东分离株与参考序列的同源性为99.7%,其余3株DPV与参考序列的同源性均为100%.应用PCR可检测人工感染和自然感染鸭瘟的组织中的鸭瘟病毒,表明PCR检测鸭瘟病毒具有很高的特异性、敏感性,该法能够用于鸭瘟急性及亚临床感染的检测与诊断.     

地高辛标记核酸探针检测鸭瘟病毒

鸭瘟是鸭、鹅和其他雁形日禽类的一种急性、热性、啦血性传染病．特，征足流行广泛，传播迅速．发病率高和死亡率大。由于鸭瘟引起死亡、淘汰和产蛋下降，给发病地区的商品鸭和产蛋鸭造成很大的经济损失，目前．国内检症、诊断该病常用的方法有病毒分离、琼脂扩散试骑、酶联免疫吸附试验等。国内尚未见地高辛标记核酸探针检测鸭瘟病毒的报道。     

Detection of duck plague virus by reverse passive hemagglutination test

A reverse passive hemagglutination (RPHA) test was developed to detect duck plague virus (DPV). The technique used sheep erythrocytes stabilized with formaldehyde and pyruvaldehyde and coated with immunoglobulin G (IgG) containing anti-DPV antibody prepared from antiserum produced in sheep. Optimum coating of stabilized erythrocytes occurred at 25 C and pH 4.0 with a concentration of IgG of 20-40 micrograms/ml and a 90-min incubation period. The coated cells were stable for 40 days when stored at 4 C or for at least 4 months (the longest period tested) when frozen at -70 C or -196 C. The RPHA test was conducted at 25 C and read after 3 hours. The high specificity of the test is indicated by the absence of cross-reactions with heterologous virus strains, with specimens prepared from normal duck livers, and with normal chicken embryo chorioallantoic fluid, as well as by the inhibition of hemagglutination only with DPV antiserum. The RPHA test detected six strains of DPV in all virus-containing specimens as well as the immunofluorescence (IF) test did; however, conventional plaque assays (PA) failed to detect virus in five specimens that contained three non-plaque-forming strains of DPV. The mean quantity of DPV that could be detected in the RPHA test was 25 plaque-forming units or 65 fluorescent units per ml. Although the RPHA test was less sensitive than either the PA or the IF test, there was a positive correlation in the titers of DPV antigens between all three tests. The RPHA test is a rapid, simple procedure that is sufficiently sensitive for diagnostic detection of DPV in acute infections, especially in tissues of ducks dying of the disease.