伯乐树组织培养快繁技术研究

[目的]筛选伯乐树的最佳芽诱导、增殖生根培养基及炼苗基质。[方法]以伯乐树种子无菌萌发的胚芽为外植体，以MS为基本培养基，添加不同浓度的BA、IBA和NAA进行胚芽诱导培养；以不同浓度的琼脂、蔗糖、NAA、BA为因子作正交设计试验，进行继代增殖培养，并附加不同浓度的IBA和NAA进行生根培养。[结果]伯乐树芽诱导最佳培养基为MS＋BA1．0mg／L＋NAA0．1mg／L，出芽率最高，达71．34％，芽体高度为5．30cm；最佳增殖培养基为MS＋BA2．0mg／L＋NAA0．1mg／L＋琼脂1．0％＋蔗糖2．5％．胚芽增殖系数达3．6，芽体高度为3．1cm；最适宜的生根培养基为MS＋IBA3．0mg／L＋琼脂0．8％＋蔗糖3．0％，生根率达到89％；伯乐树试管苗的最适炼苗基质为蛭石25％＋珍珠25％＋河沙50％，移栽成活率可达65％。[结论]建立了伯乐树组织培养快速繁殖技术体系。     

白掌组培快繁技术的研究

以MS为基本培养基，以白掌的茎段或侧芽为外植体，在不同激素成份及浓度水平下，进行组培快繁试验。研究表明：MS BA5mg／L NAA0.5mg/L为最佳诱导培养基，诱导率可达85％以上；继代增殖培养基为Ms BA1mg/L NAA0.1mg／L,增殖系数达3．88；适合生根诱导培养基为1／2MS NAA0.01mg／L，生根率达95％以上。生根苗田间移栽，成活率可达95％以上。     

新铁炮百合和金百合的组织培养与快速繁殖技术

以新铁炮百合和金百合的鳞片为外植体成功获得再生植株,并建立快速无性繁殖系．新铁炮百合鳞片的最佳芽诱导培养基是MS BA1．5-2．0mg／L NAA0．05mg／L;芽增殖培养基是MS BA0．5～1．0mg/L NAA0．05～0．1mg/L;最适蔗糖质量分数为5％;结球培养基为MS BA0．2mg／L NAA0．05mg／L．金百合鳞片的最佳芽诱导培养基是MS BA3．0mg／L NAA0．05mg／L;芽增殖培养基足MS BA1．0-2．0mg/L NAA0．05-0．1mg／L,蔗糖质量分数变化对芽的生长没有明显影响;结球培养丛为MS BA0．2-0．5mg／L NAA0．05mg／L．两种百合均较易生根,采用1／2MS NAA0.2-0．5mg/L培养基可长出健壮的根系,移栽成活率达90％以上。     

索拉亚百合茎尖组织培养研究

以索拉亚百合的茎尖为外植体，成功建立了快速无性繁殖体系。茎尖愈伤组织诱导培养基为：MS BA3mg／L NAA0．3mg／L；愈伤组织最佳芽分化诱导培养基为：MS BA1．5mg／L NAA0．5mg／L；芽继代增殖的最佳培养基为MS BA1．5mg／L IBA0．05mg／L。KT对芽的增殖效果不如BA，IBA的效果明显好于IAA。此外，激素的比例对不定芽的生长也有影响，最关键的因素是IBA的使用浓度，以0．05mg／L左右为宜。生根培养基为：MS IAA0．5mg／L NAA0．5mg／L AC1mg／L生根率达100％，平均生根数为5．88/苗。移栽成活率可达95％。     

白术茎尖的离体快繁研究

[目的]建立白术茎尖的离体快繁体系,筛选最佳培养基。[方法]以白术的茎尖为外植体,设置7种附加NAA、IBA、6-BA不同浓度配比的MS培养基进行茎尖诱导分化与增殖培养,设置5种附加不同浓度NAA的1／2MS培养基进行生根培养,将驯化后的试管苗置于草木灰与草炭土（1：2）的混合基质进行移栽试验。[结果]7种诱导分化与增殖培养基中,MS＋6-BA0．4mg／L＋NAA0．1mg／L的培养基有利于白术芽的萌发,芽成活率达100％;MS＋6．BA0．5mg／L＋NAA0．1mg／L的培养基有利于诱导丛生芽增殖。5种生根培养基中,以1／2MS＋NAA0．1mg／L＋活性炭0．5g／L诱导白术生根的效果最佳,生根率达66．7％。驯化后的试管苗在草木灰和草炭土的混合基质中培养,试管苗成活率高。[结论]该研究为白术实现工厂化育苗及药用次生代谢产物研究提供了试验依据。     

团花树组培快繁技术研究

以团花树带腋芽的茎段为试材进行脱毒快繁，结果表明：MS＋BA0．5mg／L＋KT0．05mg／L诱导培养基对腋芽的萌发效果最好；将诱导出来的萌发芽接种到MS＋BA1．0mg／L＋NAA0．05mg／L分化培养基上，增殖率最高，达3．23；最佳的生根培养基为1／2MS＋IBA0．5mg／L＋NAA0．1mg／L，生根率100％，移栽成活率90％以上。     

食用仙人掌的离体培养及其快繁技术

本研究了食用仙人掌的离体培养所需的适宜培养基及其移栽技术，适宜的培养基为：不定芽诱导，2／3MS BA0．5mg／L NAA0．05mg／L，在诱导分化过程中．有些产生淡黄色颗粒状愈伤组织，从愈伤组织中分化出芽，有些直接分化出丛生芽；继代增殖，同诱导分化培养基相同，继代培养30d．平均增殖系数为4．0，分化率达100%；生根培养基为1／2MS NAA0．2mg／L，培养一周后，开始生根，20d后，生根率达100％，平均每颗生根4颗。当根长达5cm时．移栽到石英砂．成活率达95％．再移栽到花盆，成活率也达96％。     

紫薇组培快繁技术研究

以紫薇的当年生嫩枝茎段为外植体进行组织快繁试验,结果表明：紫薇的最佳诱导培养基为MS＋NAA0．1mg／L＋BA0．8mg／L增殖培养基为MS＋BA1．0mg／L＋NAA0．4mg／L,生根培养基为1／2MS＋IBA0．5mg／L,生根率可达到100．0％。     

银荆相思组织培养及快繁技术研究

以无菌种子萌发的子叶、茎尖和茎段及当年生半木质化带腋芽茎段为外植体,MS为基本培养基,附加BA0．5～1．0mg／L NAA0．1mg／L的培养基,有利于子叶及茎尖的诱导培养,诱导率可达85％,附加BA2．0～3．0mg／L NAA0．2mg／L时,则有利于带腋芽茎段的诱导培养,诱导率80％;附加BA2．0mg／L 2,4-D0、2～0．4mg／L时,有利于不定芽的分化和增殖生长,月增殖系数为4．0;生根适宜的培养基为1／2 MS NAA0．2mg／L,生根率达75％。     

I-72杨再生体系的建立

以水培I-72杨（Populus euramericana San Martino）的叶片和叶柄为外植体,探讨了I-72杨植株再生的方法。结果表明：I-72杨愈伤组织诱导和不定芽分化的最佳培养基为MS＋BA 0．5mg／L＋NAA0．1mg/L,愈伤组织诱导率为97．0％,不定芽分化率为91．1％;在诱导培养基中添加Vc（150 mg／L）能有效地抑制叶片的褐变,褐变降低率达25．0％;不定芽在MS＋BA 0．3mg／L＋NAA 0．05mg／L培养基中继代增殖系数为6．3;添加0．8mg／L GA3对继代培养中不定芽的伸长和增殖有显著效果;在生根培养基1／2MS＋NAA 0．05mg／L＋IBA0．2mg／L上,生根率达93．5％。     

神灯白掌组织培养的研究

以 MS为基本培养基 ,在不同激素成份及浓度水平下 ,诱导神灯白掌茎尖 ,进行组培试验 .研究表明 :适合茎尖诱导培养基为改良 MS+ 6 - BA1 .5～ 3 .0 mg·L-1+ NAA0 .5～ 1 .0 mg·L-1,诱导率为 90 % ;适合不定芽增殖培养基为改良 MS+ 6 - BA 0 .5～ 2 .5mg· L-1+ NAA 0 .5～1 .5mg· L-1,芽年增殖系数达 4.2 1 2 ,适合生根诱导培养基为 1 /2 MS+ NAA 1 .0 mg· L-1或 1 /2 MS+ IBA1 .0 mg· L-1,生根率可达 90 %以上 .选择继代一级芽苗直接移植于基质中 ,进行瓶外发根培养 ,成活率可达 85%以上 ,是加快工厂化育苗速度及降低组培苗成本的有效途径     

杜仲组培快繁的研究

研究了植物生长调节剂、基本培养基、采样时间对杜仲腋芽诱导和生长的影响,并对丛芽增殖培养基中植物生长调节剂浓度和生根培养基类型进行了筛选。结果表明,最佳取材时间为4月中旬至6月下旬;以MS为基本培养基,在添加0.05mg/LNAA+0.5mg/LBA或者0.1mg/LIBA+0.5mg/LBA的培养基中,腋芽的诱导和生长较好;继代增殖培养以MS+0.5mg/LBA+0.01mg/LNAA的培养基丛芽数量最多,增殖系数最高;在White培养基上生根率可达57.5%。     

红花白千层茎段离体培养研究

【目的】对红花白千层进行离体培养,为红花白千层的工厂化育苗提供技术支持。【方法】以红花白千层茎段为外植体,探讨不同激素组合对不定芽诱导、丛生芽增殖、生根诱导的影响。【结果】带茎段的萌发腋芽进行增殖培养,可直接诱导形成不定芽,并可形成丛生芽。在MS培养基中添加6．BA0．1～2．0mg／L＋NAA0．01mg／L和6．BA0．1-1．0mg／L＋IBA0．01mg／L组合,芽增殖系数均呈先升高后降低的趋势;培养基MS＋6．BA0．5mg／L＋IBA0．01mg／L最适宜芽增殖,增殖系数达2．2倍。在1／2MS培养基中添加0．1-0．5mg／L的NAA或IBA后,芽苗生根率明显提高,分别为100．0％和56．0％-90．0％,平均生根数为12．6～14．8和3．1-4．8条,以NAA的生根效果明显优于IBA。适宜的生根培养基为1／2MS＋NAA0．1～0.3mg／L。在培养基中添加300mg／L活性炭均不利于芽增殖和生根诱导。以泥炭为栽培基质,采用常规管理的试管苗移植成活率可达99．0％。【结论】茎段离体培养是红花白千层快速繁殖的有效途径。     

甜瓜黄醉仙子叶再生体系的初步建立

[目的]选出最适宜诱导甜瓜黄醉仙子叶愈伤组织和不定芽的培养基,以及适宜其不定芽伸长和生根的培养基。[方法]以甜瓜黄醉仙子叶为外植体,研究添加不同浓度BA和IAA激素组合的MS培养基对其愈伤组织和不定芽诱导及不定芽伸长的影响,以及添加不同浓度IBA激素组合的MS培养基对其生根的影响。[结果]最适宜诱导甜瓜黄醉仙子叶愈伤组织培养基是MS+0.5 mg/L BA+2.0mg/L IAA和MS+1.0 mg/L BA+2.0 mg/L IAA,最适宜其子叶不定芽诱导的培养基是MS+0.5 mg/L BA+0.5 mg/L IAA,不定芽伸长的最适宜培养基是MS+1.0 mg/L IAA,生根的适宜培养基是1/2MS+1.0 mg/L IBA。[结论]初步选出一套完整适宜甜瓜黄醉仙子叶再生体系建立的培养基。     

哈密瓜顶芽的诱导及植株的再生

为获得一套哈密瓜快速繁殖的方法,以哈密瓜无菌苗幼嫩的顶芽为外植体,研究不同激素配比对顶芽诱导、增殖和生根的影响。结果表明,顶芽在不添加激素的培养基中没有诱导出丛生芽,在添加激素6-BA和NAA的激素中的诱导率达到91%,哈密瓜幼嫩顶芽诱导不定芽的最适培养基为1/2MS+ 6-BA 2.0 mg/L+ NAA 0.5 mg/L。哈密瓜组培苗在不添加激素的培养基中没有根形成,添加激素NAA的生根培养基中生根率达到96%,最佳生根诱导培养基为1/2MS+ NAA 1.0 mg/L。     

有髯鸢尾“常春黄”的组织培养及快速繁殖

通过对有髯鸢尾“常春黄”的花苞离体组织培养试验,研究了消毒时间及激素浓度对外植体、不定芽分化和诱导生根的影响。结果表明：用0.1%的HgCl2溶液处理外植体9 min效果较好;增殖培养基MS＋BA3.0mg/L,对不定芽分化效果最好,生根培养基MS＋NAA 0.3 mg/L,对诱导生根效果最好。     

濒危药材金线莲愈伤组织诱导及分化成苗研究

[目的]建立有效的濒危药材金线莲的再生体系,为其工厂化生产奠定技术基础。[方法]选取福建金线莲的叶片、茎片、带节茎段、不定芽为外植体,建立无菌体系,而后以愈伤组织的诱导率为指标,采用正交设计优化不同外植体各阶段(愈伤组织的诱导和分化)培养基中激素的种类及浓度。[结果]在试验的福建金线莲4种外植体中,不定芽的愈伤组织诱导率最高,可达96.67%,其最适培养基配方为MS+0.5 mg/L NAA+4.0 mg/L BA+0.3 mg/L KT。在此培养基上,诱导的愈伤组织在分化培养基MS+0.5 mg/L NAA+2.0 mg/L BA和增殖培养基MS+0.2 mg/L NAA+2.0 mg/L BA上继代形成了无根试管苗。[结论]该研究建立的无菌繁殖体系,解决了前人所指出的金线莲愈伤组织诱导率极低的瓶颈问题,组培成苗的效率有较大提高。     

欧洲花楸茎段植株再生繁育技术

建立了欧洲花揪的快繁再生体系。结果表明,诱导不定芽的最佳培养基为MS＋6-BA1．0mg／L＋NAA0．1mg／L＋蔗糖30．0g／L＋琼脂8．0e／L;适宜不定芽增殖的培养基为MS＋6-BA2．0mg／L＋NAA0．2mg／L＋蔗糖30．0r／L＋琼脂8．0g/L;最佳生根培养基为1／2MS＋NAA0．3mg／L＋蔗糖10．0g／L＋琼脂8．0g／L。     

BA、NAA在柽柳离体快繁中的应用

[目的]研究BA、NAA对柽柳丛生芽的诱导、增殖和不定根形成的影响。[方法]将柽柳嫩枝条切成1.5～2.0 cm的小段,接种于诱导培养基MS＋BA 0～6.00 mg/L＋NAA 0～0.50 mg/L上诱导不定芽。[结果]BA、NAA浓度为0时,99%的外植体都在基部茎节产生了1～2条长度为1～5 cm的白色根,侧根稀疏,但均无丛生芽产生,枝叶生长不良。BA浓度为2.00 mg/L、NAA浓度为0 mg/L时最适合诱导不定芽。NAA浓度不变时,随着BA浓度的增加,柽柳丛生芽发生提前,增殖系数也逐渐升高,但茎的分化逐渐受到抑制。MS＋BA 0.50 mg/L＋NAA 0.01 mg/L适合丛生芽增殖。NAA浓度为0.50和1.00 mg/L时,主侧根发生不明显,并且在无根苗基部有愈伤组织产生。采用MS培养基进行柽柳生根培养时,NAA的适宜添加浓度为0.05 mg/L。[结论]该研究为柽柳的组织培养提供了试验依据。     

大花蕙兰原球茎的诱导、增殖及植株再生研究

从大花蕙兰(Cymbidium hybridum)试管苗取材,诱导原球茎,建立植株再生体系,分析了不同激素及其浓度对原球茎诱导、增殖和植株生根的影响.结果表明,不定芽比叶片更容易诱导出原球茎;生长素NAA对原球茎的诱导效果好于2,4-D,最适合原球茎诱导的激素组合为1.0 mg/L BA+1.0 mg/L NAA;原球茎增殖培养基中添加1.0 mg/L BA+0.5 mg/L NAA增殖效果较好,增殖系数可达7.90;最适生根培养基为1/2 MS+0.5 mg/L NAA+30 g/L蔗糖.