低温处理对大蒜茎尖离体培养芽形成及生长的影响

为克服大蒜茎尖离体培养增殖率低的问题，对准备切取茎尖组织进行离体培养的大蒜种球以及切取的带有1，2片叶原基的大蒜茎尖组织(外植体)进行了低温处理，结果表明，低温处理促进了大蒜茎尖离体培养时芽的形成及生长。对外植体的低温处理比对种球的低温处理效果好，60d低温处理后，外植体低温处理区的新芽形成数是种球低温处理区的10倍，平均每个茎尖形成新芽22．2个；种球低温处理和外植体低温处理并用时。没有产生累加效应，相反，外植体低温处理的效果，被种球低温处理削弱。     

大蒜花序轴离体培养的研究

以大蒜花序轴为外植体,研究了不同品种、不同生长阶段花序轴离体培养的差异和不同ｐＨ值、激素组成对花序轴培养的影响以及继代培养基种类、激素组成及糖原条件。结果表明,取未熟花序轴为外植体,其繁殖系数可高达７６;花序轴培养适宜条件为Ｂ５＋ＢＡ２．０ｍｇ／Ｌ,ＮＡＡ０．１ｍｇ／Ｌ,ｐＨ６．５;花序轴培养效率存在品种间差异;继代培养条件为ＭＢ＋ＢＡ２．０ｍｇ／Ｌ,ＮＡＡ０．１ｍｇ／Ｌ,ＧＡ３０．０５ｍｇ／Ｌ,     

大蒜茎尖的组织培养

以离体的大蒜茎尖为培养材料,对培养基、激素水平及培养方法进行实验,结果显示:以B5培养基为基本培养基,激素水平以6-BA1.0mg/L+2,4-D0.25mg/L对不定芽的诱导有明显效果,光照处理和温度处理对不定芽的诱导影响不明显。     

依主梨树茎尖离体培养

 本文报道利用依主梨树茎尖、侧芽进行离体培养的实验过程.春、秋季取成年依主梨树一年生枝条的顶芽或侧芽作实验材料,其中秋季芽先用赤霉素打破休眠,经剥离、消毒后接种于诱导生长和分化的培养基上,生长约一个月后转入增殖培养基,40天后将增殖后伸长的芽条用于生根,其余小芽则继续增殖;生根的梨苗则进行移栽.通过实验,MS/2(大量元素)+MS(微量元素)+铁盐+有机成分(简称培养基A),附加6-BA 2mg/L、NAA 0.2mg/L、GA₃ 1～3mg/L适于芽生长和分化;而附加6-BA 1.5mg/L、NAA 0.2mg/L、QA₃ 2mg/L是优良增殖培养基;附加IBA 10mg/L处理8天的二步生根法较好;生根的试管苗已移栽定植成活.     

番木瓜茎尖离体培养研究

番木瓜(Carica papayaL.)是一种重要的热带亚热带水果。以番木瓜茎尖为试验材料,研究番木瓜茎尖离体培养的影响因素。试验结果表明,茎尖在MS BA 0.5 mg/L NAA 0.1 mg/L ADS 40 mg/L GA31.0 mg/L的培养基上生长较好,增殖系数每4周可达6.8倍,将该无菌芽继代到MS IBA 1.5 mg/L 活性碳(AC)2.0 g/L的生根培养基上,可正常生根并形成完整植株。     

大蒜蒜瓣离体繁殖研究

以山东苍山大蒜蒜瓣为外植体进行离体培养,在MS+KT_1.0+NAA_0.005(单位:mg/l,下同)培养基上,外植体可直接分化出新梢.新梢在MS+KT_1.0+IBA_1.0+NAA_2.0培养基上进行2次继代增殖,然后在B₅+BA_1.0培养基上进行1次继代增殖,繁殖系数依次为7.6,6.5,4.0.共经160～180天,单瓣蒜累积繁殖系数可达1640.新梢在MS+NAA_0.1+BA_0.1培养基上生根率可达87.5%.在MS+NAA_2.0+BA_0.05培养基上,小鳞茎发生率可达85.7%.采用有根单鳞茎试管苗移栽,成活率为92%.细胞学观察表明,该途径保持了原材料的遗传稳定性.     

建莲茎尖离体培养研究初报

选用不同品种的“建莲”地下茎茎尖为外植体进行离体再生研究 .结果表明 :对“建莲”地下茎茎尖培养 ,品种间存在一定差异 ;筛选出了适合于“建莲”地下茎茎尖离体培养的分化培养基 ,即 MS+2 mg·L- 1 ZT+0 .5 mg· L- 1 GA3;增殖培养基为 MS+3 mg· L- 1 BA+0 .5 mg· L- 1 NAA;生根培养基为 MS+0 .5 mg· L- 1 BA+0 .1 mg· L- 1 IBA+1 .0 mg· L- 1 NAA,并对已生根的试管芽苗进行了成功的移栽     

非洲菊茎尖离体培养技术研究

以非洲菊品种‘F53’的茎尖作为外植体进行离体培养技术研究,为建立以茎尖为外植体的非洲菊高频、高效、稳定的工厂化育苗技术体系奠定基础。结果表明,适宜于不定芽诱导的培养基为MS+6-BA2mg/L+NAA1mg/L+KT0.5mg/L+蔗糖25g/L;增殖培养基为MS+6-BA0.5mg/L+KT0.5mg/L+蔗糖20g/L;最适生根培养基为1/2MS+IBA0.1mg/L+蔗糖15g/L。     

蒙古栎茎段的离体培养

以水培萌发的健壮茎段为外植体,研究了离体条件下培养基及激素对蒙古栎器官发生和植株再生的影响。结果表明,在培养基中添加0.2 g·L-1PVP能有效地抑制茎段褐化,在茎段初代培养中,以1/2MS基本培养基添加0.2 mg·L-16-BA培养效果最好,启动时间早,芽平均高3.00 cm,最高的可达5.20 cm。茎段增殖培养,以1/2MS+6-BA0.15 mg·L-1+KT0.15 mg·L-1效果最好,平均茎芽长接近3.00 cm,平均增殖系数为3.33;高质量浓度的6-BA对茎芽生长不利,基部高度愈伤化,出现玻璃化现象。茎段最佳生根培养基为MS+NAA0.02 mg·L-1+IBA0.05 mg·L-1,生根率达到62.5%。     

李茎尖离体培养与植株再生

以欧洲李(Prunus domestica cv.'Tardicots')和樱桃李(Prunus cerasifera)试管苗为材料,建立了茎尖离体培养与植株再生体系.结果表明:欧洲李最适宜的培养基为MS+6-BA 0.5 mg/L+IBA 0.05 mg/L,0.1～0.2 mm的茎尖培养成苗率为64.16%,0.35～0.45 mm的茎尖培养成苗率为85.5%;樱桃李最适宜的培养基为LP+6-BA 0.5 mg/L+IBA 0.05 mg/L,0.1～0.2mm的茎尖培养成苗率为64.53%,0.35～0.45 mm的茎尖培养成苗率为84.7%.     

长柄扁桃茎尖离体培养研究

[目的]探索长柄扁桃茎尖离体培养技术。[方法]以长柄扁桃试管苗茎尖为材料,接种于QL培养基上,比较不同激素组合对长柄扁桃增殖的影响;将试管苗茎尖接种于不同浓度IBA和1g/L活性炭（AC）的1/2MS培养基暗培养6d,然后转入不含任何激素的1/2MS培养基中,比较不同浓度IBA对长柄扁桃诱导生根的影响。[结果]在QL培养基中分别添加0.2mg/L6-BA和0.6mg/LIBA的增殖效果较好,增殖倍数可达3.96;在1/2MS的培养基中添加30mg/LIBA诱导生根较好,生根率达93.3%。[结论]长柄扁桃试管苗茎尖适宜于增殖的培养基为QL＋6-BA0.2mg/L＋IBA0.6mg/L,试管苗茎尖诱导生根的适宜培养基为1/2MS＋IBA30mg/L＋活性炭1g/L。     

药用植物珍珠梅腋芽茎段的离体培养

以珍珠梅的腋芽茎段为外植体,探索不同杀菌时间、不同培养基、不同激素配比和浓度对珍珠梅离体培养的影响.结果表明,用0.1%HgCl2溶液,加入Tween-20,灭菌5 min处理,外植体染菌率较低,为4.8%;初代培养基以MS+6-BA0.6 mg/L的萌芽率最好,达100%,增殖倍数最高,为3.7;珍珠梅继代培养适宜的培养基为MS+6-BA0.6 mg/L+NAA0.2 mg/L,其萌芽率、增殖倍数分别为82.4%,3.7;生根培养基以1/4MS+IBA0.2 mg/L+IAA0.2 mg/L较好,生根率、平均根数分别为85%,8,且多为实生根.     

野生毛葡萄茎段离体培养和生产应用研究

用不同植物生长调节剂对都安野生毛葡萄茎段腋芽进行离体培养,结果ＢＡ１．０￣２．０ｍｇ／Ｌ与ＫＴ１．０ｍｇ／Ｌ配比诱导出不定芽的效果理想;ＢＡ１．０￣２．０ｍｇ／Ｌ与ＩＡＡ０．０２ｍｇ／Ｌ配比,ＩＢＡ０．４－１．０ｍｇ／Ｌ与ＢＡ０．１￣０．２ｍｇ／Ｌ配比对继代和生根培养的效果最佳。采用河沙和塘泥假植毛葡萄组培苗成活率高。     

红叶乌桕茎段离体培养的研究

以带芽茎段、茎尖做外植体,建立了红叶乌桕的组织培养和再生体系。结果表明:①外植体用升汞分两次共处理8 min,污染率低;②启动培养以MS+6-BA 1.0 mg/L+2,4-D 0.05 mg/L+NAA 0.1 mg/L为最佳配方;③接种后先进行暗培养1周,启动较快;④继代培养以MS+6-BA 1.0 mg/L+IBA 0.1 mg/L,其月增殖系数为6.17;⑤生根诱导以1/2MS+NAA 1.0 mg/L+IBA 0.1 mg/L效果最好,其生根率为87.6%;⑥生根苗移栽到珍珠岩∶蛭石∶河沙=3∶2∶1的育苗基质中,成活率为83.2%。     

地胆草腋芽茎段的离体培养研究

为了探索地胆草组织培养的方法,试验以无菌的地胆草腋芽茎段为外植体,研究6-BA和NAA不同激素水平配比对地胆草芽的诱导和继代增殖的影响。结果表明,适宜于地胆草芽诱导分化的培养基配方为MS+6-BA 1.5 mg/L+NAA 0 mg/L,繁殖系数为2.6倍,适宜于地胆草芽继代增值的培养基配方为MS+6-BA 0 mg/L,繁殖系数为2.3倍。     

日本菟丝子茎段的离体培养

就不同消毒方法和不同培养基对日本菟丝子(Cuscuta japonica)茎段消毒与组培效果的影响进行了研究.结果表明,于100 mLφ(乙醇)=75%中浸泡20 s后用无菌水冲洗2次,500 mLω(HgCl2)=1%中加入0.2 mL吐温-80浸泡4 min后再用无菌水冲洗4次,对日本菟丝子茎段消毒的效果最佳;MS+NAA 1.0 mg/L+活性炭(Activated carbon,AC)0.1 mg/L或1/2 MS+NAA 1.0 mg/L+AC 0.1 mg/L是其茎段最佳培养基.利用该培养基组培获得的菟丝子藤蔓出现类似吸器的突起,在培养瓶内能开出正常的花朵,但未观察到有根的生成,也没有出现自然状态下的自身缠绕现象.