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相似文献
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1.
在体外受精过程中,绵羊卵巢卵母细胞体外成熟情况在很大程度上决定着卵母细胞的体外受精率和胚胎发育率.影响卵母细胞成熟的因素很多,主要包括卵泡大小、卵巢的发育阶段、培养基、激素生长因子等.试验从屠宰场采集屠宰后的绵羊卵巢,抽取卵巢表面卵泡中的卵母细胞,选择一级和二级卵母细胞进行体外成熟培养.试验证明,绵羊卵巢卵母细胞体外成熟培养时间以24h为佳,FCS浓度以20%最适宜.试验还发现无菌条件、温度、湿度以及在体外对卵母细胞的操作时间对试验的结果都有很大的影响.通过试验初步探明了适宜绵羊卵母细胞体外成熟的一些基本条件,为全面掌握绵羊卵母细胞体外成熟培养以至整个体外受精技术的完善和规范提供了有益的资料.  相似文献   

2.
研究不同犊牛血清浓度、培养时间和不同类型血清对牛卵母细胞体外成熟的影响。结果表明,添加体积分数为10%,15%和20%的FBS时,各组间卵母细胞成熟率差异不显著(p>0.05);培养时间为16h时卵母细胞成熟率与培养时间为20h和24h时的差异极显著(p<0.01),而培养时间为20h和24h时卵母细胞成熟率差异不显著(p>0.05);培养基添加OCS对卵母细胞成熟的影响效果与添加FBS的无显著差异(p>0.05),二者的卵母细胞的核成熟率均达到80%以上。  相似文献   

3.
绵羊卵母细胞体外成熟的研究   总被引:2,自引:1,他引:2  
研究了FSH/LH浓度、年龄和采卵季节对绵羊卵母细胞体外成熟的影响。结果表明:①FSH/LH能促进绵羊卵母细胞体外成熟,适宜的添加浓度很重妻。本实验条件下,添加量以10μg/ml为宜。②成年绵羊卵母细胞成熟率高于性成熟前绵羊,但无显著差异。③发情季节绵羊卵母细胞较乏情季节易成熟。  相似文献   

4.
目的,探讨不同温度和不同培养时间对绵羊卵母细胞体外培养,成熟和凋亡的影响,选择合适的温度和培养时间为绵羊卵母细胞进行体外成熟提供技术支持。方法:在绵羊死亡30 min之内取出卵巢4~6 h带回实验室,切割法收集卵母细胞。在5%CO_2、饱和湿度等条件相同情况下,分别在36.0℃、37.0℃、37.5℃、38.0℃、38.5℃、39℃下培养24~26 h。实验中获得的结果数据,采用t检验方法进行差异显著性分析。结果:26 h的成熟率高于其他4个时间的成熟率,在培养22 h到26 h过程中,随着培养时间的增加,卵母细胞的成熟率呈增高。但是在26 h过后,随着培养时间增加,卵母细胞的成熟率呈递减趋势,至30 h卵母细胞的成熟率明显低于22 h的成熟率。38.5℃时卵母细胞的成熟率最高,36℃是卵母细胞的凋亡率最高。卵母细胞成熟率的整体趋势是随着温度的上升呈正相关。  相似文献   

5.
屠宰绵羊卵巢卵母细胞的体外培养   总被引:2,自引:0,他引:2  
为了使屠宰绵羊卵巢卵母细胞能够用于体外受精,本文着重探索了使卵巢卵母细胞体外培养成熟的方法和条件。实验结果表明,以TCM-199加10%FCS作为基本培养基,培养24~25小时,可以使绵羊卵巢卵母细胞培养成熟,其成熟率可达55.5%(435/784)。如果在培养液内添加hCG(0.02mg/ml)或LH(0.01mg/ml),并且尽可能保持卵丘细胞的完整,则可以使成熟率提高到76.9%(140/182)~82.9%(112/135)。  相似文献   

6.
猪卵巢卵母细胞的收集和体外成熟培养   总被引:8,自引:0,他引:8  
实验对猪卵母细胞的采集和体外成熟培养(IVM)以及培养液进行研究。结果表明,在卵母细胞的采集过程中,机械破碎法平均每个卵巢所获得的A、B级细胞数(7.00,20.50)要显著多于抽吸法(1.48,2.73)(P<0.05)。但抽吸法中平均每个卵巢所用的时间(1.05min)却显著少于机械破碎法(15.6min)(P<0.05)。NCSU-23与TCM-199两种培养液对卵母细胞体外成熟率无显著差异(P>0.05)。添加10μg/LrpGH比20μg/LrpGH更有利于卵母细胞的成熟(71.5%,45.5%),两者差异显著(P<0.05)。  相似文献   

7.
为了探讨hCG对绵羊卵母细胞体外成熟的影响。从屠宰场获取绵羊卵巢后,采用机械切割法获取卵母细胞,在hCG为0u/L(对照组)、5u/L(低浓度)、10u/L(中浓度)、15u/L(高浓度)的培养液中体外成熟培养24h,计算成熟率。结果表明:hCG对绵羊卵母细胞体外成熟培养无显著影响(P〉0.05)。  相似文献   

8.
FSH对绵羊卵母细胞体外核成熟的影响   总被引:2,自引:1,他引:1  
为了探讨FSH对绵羊卵母细胞核成熟的影响,本试验将绵羊卵母细胞体外成熟24 h,并在成熟过程中的4个不同时间段内添加FSH,统计各个时间段卵母细胞的生发泡破裂(germinal vesicle break down, GVBD)及第一极体排出情况。结果显示:①在体外成熟培养的前4 h或前8 h添加FSH,经体外成熟的卵母细胞其生发泡破裂率与不添加FSH组无显著差异;②在体外成熟的4~24 h或8~24 h添加FSH,其第一极体排出率与不添加FSH组有极显著差异。说明,在本试验条件下,FSH对绵羊卵母细胞体外成熟具有显著的促进作用,是在减数分裂的恢复后到减数分裂完成之间的某一阶段起的促进作用。  相似文献   

9.
为了检测绵羊卵母细体外成熟前后的线粒体分布变化,将成熟过程不同阶段的卵母细胞用活体细胞线粒体跟踪试剂盒(GENMED kit)对线粒体进行染色,之后用碘化丙啶(Propidium Iodide,PI)对细胞核进行染色,最后用激光共聚焦显微镜观察线粒体分布情况以及相应的细胞核所处的发育时期.结果:生发泡期(Germinal Vesicle,GV)的卵母细胞线粒体呈周边分布;生发泡破裂期(Germinal Vesicle Breakdown,GVBD)、第一次减数分裂中期(Metaphase Ⅰ,MⅠ中期)的卵母细胞呈半周边分布;第一次减数分裂末期(M Ⅰ Anaphase,MⅠ后期)的卵母细胞线粒体基本呈均匀分布,但是线粒体簇较小,着色较浅;第二次减数分裂中期(Metaphase Ⅱ,MⅡ期)的卵母细胞线粒体呈均匀分布,而且细胞质中央的线粒体簇变大,着色变深.结论:线粒体分布随着绵羊卵母细胞体外成熟阶段的进展,由细胞周边向均匀、由疏松向致密呈波动变化,这种变化有可能作为一种判定绵羊卵母细胞胞质成熟的有效参考指标.  相似文献   

10.
对不同的培养液(M199、mDPBS、TYH)和培养液添加物对小鼠C级卵母细胞体外发育和成熟的影响进行了研究。结果表明,mDPBS培养液的培养效果(GVBD:19.8%,PBI:12.3%)好于(P〈0.05)M199培养液(GVBD:13.3%,PBI:8.9%)和TYH培养液(GVBD:12.3%,PBI:7.4%);mDPBS中添加丙酮酸钠和FCS(GVBD:100%,PBI:86.3%)明显优于(P〈0.01)单纯添加丙酮酸钠(GVBD:42.9%,PBI:23.8%),也明显优于(P〈0.01)添加丙酮酸钠+BSA(GVBD:63.2%,PBI:53.8%);就A、B和C级3种卵母细胞相比,C级卵母细胞的成熟发育最佳,GVBD的发生率为100.0%,PBI的排出率为86.2%。  相似文献   

11.
不同条件对牛卵母细胞体外成熟的影响   总被引:4,自引:0,他引:4  
本研究分析了卵巢不同离体时间(<3h、4~5h、>6h),不同培养时间(18~22h、23~24h、>30h),不同成熟培养液(添加FSH、HCG、FCS)以及不同培养温度(34℃、36℃、38.5℃)对卵母细胞体外成熟的影响。结果表明,小于3小时离体时间成熟率、受精率(78.83%、58.0%)高于其它组;培养时间大于30小时组成熟率高于其它组(93.81%),但受精率低于其它组(23.0%);添加HCG与FCS组成熟率、受精率(89.4%、78.95%)大于FSH组;培养温度以38.5℃为佳,成熟率与受精率(87.2%、73.6%)皆高于另二组,差异显著。  相似文献   

12.
13.
本试验主要从采集方法和性周期阶段2方面对绵羊卵母细胞体外成熟的影响进行了探讨。结果表明:不同采卵方法的采卵效果存在差异,卵裂率切割法显著高于抽吸法(27.9%,49.5%;P<0.05);A、B级卵母细胞成熟率极显著高于C级(75.3%,64.4%,29.1%,P<0.01),卵裂率A、B级均显著高于C级(42.5%,35.8%,16.0%,P<0.05);从卵泡期和黄体期卵巢采集到的卵母细胞的体外成熟率和卵裂率分别为66.7%、62.9%;38.2%、34.4%,没有显著差异 (P>0.05)。  相似文献   

14.
在体外受精过程中,山羊卵巢卵母细胞体外成熟情况在很大程度上决定着卵母细胞的体外受精率和胚胎发育率.影响卵母细胞成熟的因素很多,主要包括卵泡大小、培养基、激素、培养时间等.试验对不同培养时间对山羊卵母细胞体外成熟的影响进行探讨,现报道如下.  相似文献   

15.
本实验采集的屠宰绵羊卵母细胞分两批。一批分别以10~15℃,20~25℃,30~35℃运输;另一批分别采用16~18h,20~22h,24~26h,28~30h的体外成熟时间进行实验。卵母细胞由长距离运输运回实验室,经体外受精观察其体外培养发育情况,从而为确立长途运输卵巢体外培养的条件提供必要的实验依据。实验结果显示:在不同运输温度的卵母细胞中,温度为20~25℃时卵母细胞能够进行较好的发育,卵母细胞的成熟率为64.86%,囊胚率为34.58%;在不同体外成熟时间的卵母细胞中,时间为20~22h时卵母细胞能够较好的发育,卵母细胞的成熟率为62.79%,囊胚率为31.70%。  相似文献   

16.
猪卵母细胞体外成熟作为一种很重要的胚胎生物技术,具有重要的理论和实际意义。本文综述了猪卵母细胞体外成熟培养的发展历程、体外培养影响因素以及优化策略,为猪卵母细胞成熟培养提供参考依据。  相似文献   

17.
细胞经过一系列的生长发育最终形成有受精能力的成熟卵母细胞的过程。IVM技术是随着上世纪动物胚胎体外生产 (IVP)技术的产生和发展而兴旺起来的。利用卵母细胞IVM技术已经先后在牛(1982 )、绵羊 (1985 )、山羊 (1985 )和猪 (1989)上获得试管后代[13] 。现在世界上日本、美国、英国、丹麦、新西兰和澳大利亚等许多发达国家都已成立了专门的动物胚胎体外生产公司。我国IVM的研究起步较晚 ,但发展迅速 ,已先后在小鼠 (1986 )、人 (1985 )、绵羊 (1989)、牛 (1989)、猪 (1990 )上获得了IVP后代[2 ] 。尤其在牛的IVM -IVP的研究上已接…  相似文献   

18.
从屠宰场采集的卵巢567枚,用抽吸法获COCs2851枚,其中适宜体外成熟培养的A、B级COCs1129枚,获可用COCs2.0枚/卵巢;繁殖季节的卵巢平均回收COCs数、COCs可用率和平均可用卵数分别为5.8枚、49.2%、2.9枚,均较非繁殖季节高(分别为4.7、34.5%、1.6),山羊发情较为集中的秋季卵巢卵母细胞的回收数和可用数均较其他季节高。对2种来源的屠宰场卵母细胞进行体外成熟培养,结果显示来源于“烫毛+烤皮”屠宰方式的卵母细胞体外成熟率为84.5%;来源于“屠宰+烫毛”,不经过烤皮处理的屠宰场卵母细胞体外成熟率为90.4%,二者无显著性差异(P〉0.05),说明屠宰时经高温处理羊只的卵巢卵母细胞也能在体外培养中继续发育成熟;试验采用的成熟液和培养体系较适合山羊卵母细胞的体外成熟。  相似文献   

19.
本文着重探讨了牛卵母细胞的体外成熟培养,对卵子的发生、卵母细胞体外成熟的原理进行了阐述,叙述了从卵母细胞的回收、选择到成熟等步骤。本实验采用磷酸缓冲液(PBS)冲洗卵巢、吸卵,以含有FSH、LH、雌二醇等成分的成熟液对卵母细胞进行体外成熟培养,使卵丘细胞扩散,第一极体排出,卵母细胞达到成熟。  相似文献   

20.
试验采用梯度LH与E2的作用浓度比较卵母细胞的体外成熟率,并采用添加7.0μg/mLLH、1.3μg/mLE2研究季节性对绵羊卵母细胞体外成熟及胚胎发育能力的影响。结果表明:①LH与E2的作用浓度对非繁殖季节(5月)卵母细胞成熟率影响差异不显著(P>0.05),但以添加LH7.0μg/mL、E21.3μg/mL组卵母细胞成熟率较好。②LH与E2的作用浓度对繁殖季节(12月)卵母细胞成熟率影响差异不显著(P>0.05),以LH10.0μg/mL与E21.3μg/mL时卵母细胞成熟率较好。③湖羊和其他季节性发情绵羊卵母细胞的成熟率在繁殖季节(72.08%vs69.82%)与非繁殖季节(67.89%vs65.79%)差异不显著(P>0.05),但以繁殖季节的成熟率较高。④湖羊的卵母细胞在非繁殖季节与繁殖季节胚胎卵裂率(72.28%vs75.43%)、桑葚胚率(36.14%vs34.97%)差异不显著(P>0.05),繁殖季节囊胚率比非繁殖季节囊胚率偏高(16.18%vs14.40%)。  相似文献   

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