猪流行性腹泻的诊断

猪流行性腹泻在仔猪中以高发病率、高死亡率为特征,已经逐渐成为影响猪养殖业的一个非常严重的疾病。因此,在养殖过程中如何快速而准确地诊断猪流行性腹泻尤为重要。目前,许多有效的诊断方法已经被应用于该病的诊断中。本文旨在系统地阐述猪流行性腹泻的临床、病理和实验室学的诊断方法,为养殖场对于该病的诊断和后续的预防提供一定的理论参考。     

猪流行性腹泻病毒引起仔猪腹泻的诊断

为了对贵州省某猪场发生的仔猪腹泻疫情进行病原学诊断,采用细菌分离培养、PCR及RT-PCR方法分别对采集的病料进行了细菌、猪流行性腹泻病毒及其他3种病原检测。结果显示,猪流行性腹泻病毒检测样品中出现651 bp目的条带,其他几种病原检测均为阴性,细菌分离培养未见细菌生长。结果表明,此次仔猪腹泻疫情的主要病因为猪流行性腹泻病毒感染。     

猪流行性腹泻的诊断与防控

猪流行性腹泻(Porcine Epidemic Diarrhea,PED)是养猪生产中的常见病,发病率高,致死率也很高,给养殖场带来的损失巨大。笔者根据多年的兽医临床经验,对PED的临床症状、病理变化以及诊断方法做了详细的分析,并提出了有效的防控措施,和同行业者共同探讨。     

猪流行性腹泻的防控

猪流行性腹泻又称流行性病毒性腹泻,是由猪流行性腹泻病毒引起猪的一种高度接触性急性肠道传染病。介绍了该病的病原、流行特点、临床症状、病理变化、诊断、发病机理、防控措施。     

猪流行性腹泻的防控

猪流行性腹泻又称流行性病毒性腹泻,是由猪流行性腹泻病毒引起猪的一种高度接触性急性肠道传染病.介绍了该病的痛原、流行特点、临床症状、病理变化、诊断、发病机理、防控措施.     

猪流行性腹泻的诊断和防治

猪流行性腹泻是常见病，具有较强的季节性，由猪流行性腹泻病毒引起，该病的发病时间快，传播迅速，不论是种猪，还是仔猪都有可能感染，是一种急性肠道传染病，在感染的初期，症状或许不是很明显，但是后期大多伴有水样腹泻。为了更好地防治该疾病，就需要加强对疾病的研究。本文分析了猪流行性腹泻的诊断方法，在此基础上提出了猪流行性腹泻的防治对策，以期对养殖户以及畜牧兽医有所帮助和启发。     

RT—PCR快速诊断猪流行性腹泻

猪流行性腹泻病毒(PEDV)属于冠状病毒,是一种猪肠道病原性腹泻病毒.其感染猪表现的临床症状与猪传染性胃肠炎(TCE)十分相似.虽然通过细胞培养可以进行病毒分离、诊断PEDV感染,但是PEDV只能在Vero细胞中繁殖,而且通常需要胰蛋白酶参与的情况下盲传数代,因此,有必要建立一种病原鉴别诊断方法.     

猪两种腹泻病毒混合感染的病原诊断

对我省流行的疑似猪病毒性腹泻进行了病原诊断，通过细菌培养、ＲＮＡ电泳和电镜形态观察等辅助诊断和免疫萤光特异性诊断，确诊该病病原为猪传染性胃肠炎病毒（ＴＧＥＶ）与猪流行性腹泻病毒（ＰＥＤＶ）的混合感染，混合毒代号为ＴＰＶ３。     

猪流行性腹泻的鉴别诊治

笔者从病原学、临床、流行病学、病理学、血清学诊断和综合防制措施几个方面,对猪流行性腹泻的诊治作了系统阐述,并将PED与仔猪的其他典型腹泻病症进行了类症鉴别.     

2008-2018年我国猪流行性腹泻病毒混合感染分析

为了解我国猪流行性腹泻病毒混合感染的地区分布情况、季节性特征和混合感染病原类型,基于中国知网、NCBI等数据库,对2008-2018年间我国猪流行性腹泻病毒混合感染病例进行统计.结果显示,全国18个省市地区统计样本数量共计6951份,其中猪流行性腹泻病毒阳性样本数3345(48.12%)份,混合感染阳性样本数1325(19.06%)份;我国中部地区猪流行性腹泻病毒混合感染率高于其他省市;冬季(12~2月)为猪流行性腹泻病毒混合感染多发季节;细菌和病毒是猪流行性腹泻病毒混合感染的主要病原,在与细菌的混合感染中,主要混合感染病原类型为大肠杆菌,在与病毒的混合感染中,可以与猪圆环病毒2型、猪轮状病毒、猪瘟病毒、猪传染性胃肠炎病毒、猪伪狂犬病毒、猪嵴病毒、猪Delta冠状病毒和猪繁殖与呼吸综合征病毒进行混合感染,混合感染主要以二重混合感染(15.41%)为主,三重混合感染和四重混合感染分别占总样本数的3.25%和0.40%.本文归纳了近10年我国猪流行性腹泻病毒混合感染的基本特征,为了解猪流行性腹泻病毒混合感染及提高疫病综合防控水平提供了一定的参考.     

猪流行性腹泻病毒M基因的表达及鉴定

为了更好的研究近两年在我国爆发的猪流行性腹泻(porcine epidemic diarrhea,PED)疫情,本实验室收集不同发病地区的临床样品进行猪流行性腹泻病毒(Porcine epidemic diarrhea,PEDV)RT-PCR检测,并挑选8个阳性样品对其M基因进行扩增,克隆和测序。序列比对的结果显示,8个分离株与14个参考株之间的核苷酸以及氨基酸同源性分别是96.5%～99.9%和96.0%～100%,表明目前流行的PEDV其M基因是相对保守的。同时,我们将ZZ-1株的M基因克隆于原核载体pGEX-6p-1,转入菌株BL21中后获得了大量表达,重组蛋白大小约为50 kDa。利用PEDV阳性猪血清对纯化后的重组M蛋白进行Western blot分析,结果表明重组表达的M蛋白与临床阳性猪血清具有良好的免疫反应性。     

TaqMan荧光定量PCR检测猪流行性腹泻病毒方法的建立与初步应用

根据GenBank中公布的猪流行性腹泻病毒Ⅳ基因序列,设计了一对特异性引物和探针,扩增长度为186bp的片段。以克隆Ⅳ基因的质粒作为阳性标准品,建立了一种快速检测猪流行腹泻病毒含量的TaqMan荧光定量PCR方法。该方法在10^9-10^1copies／μL范围内具有良好的线性关系,可检测到初始模板中10copies／μL的质粒DNA,以猪圆环病毒、猪乙脑病毒、猪瘟病毒、猪繁殖与呼吸综合征病毒、猪伪狂犬病毒和猪细小病毒为模板时,均检测不到荧光信号,而重复性实验中其变异系数均小于2％,表明此方法具有很好的特异性和重复性。应用此方法对采集的60份,陆床样品进行检测,其阳性检出率为92％,而用常规RT-PCR方法进行检测,阳性检出率仅为80％。表明荧光定量RT-PCR方法的敏感性明显高于常规PcR检测方法。     

3种致猪腹泻病毒的多重RT-PCR检测

试验建立了用于检测猪流行性腹泻病毒(PEDV)、猪传染性胃肠炎病毒(TGEV)与猪轮状病毒(PRV)的三重RT-PCR方法,以调查猪群中腹泻病毒感染情况.通过该方法对采自广东省规模化猪场的95份临床疑似病毒性腹泻病料进行了检测,结果表明,猪流行性性腹泻病毒阳性率为33.7%,猪传染性胃肠炎病毒阳性率为4.2%,猪轮状病毒阳性率为20%;猪流行性性腹泻病毒和猪轮状病毒混合感染率为8.4%,猪流行性腹泻病毒和猪传染性胃肠炎病毒混合感染率为2.1%.     

猪流行性腹泻病毒ORF3和M基因的克隆与序列分析

为了解福建省猪流行性腹泻病毒(Porcine epidemic diarrhea virus,PEDV)毒株ORF3和M基因变异情况,本研究从4个不同规模猪场发生仔猪“顽固性腹泻”疾病的病料中扩增到4株PEDV的ORF3和M基因,并进行了序列分析.结果表明:4株PEDV ORF3基因均含有675个碱基,编码224个氨基酸,与GenBank中登录的代表性PEDV核苷酸的同源性为89.7％～100.0％,氨基酸的同源性为94.7％～99.6％,其中FJPT毒株核苷酸的同源性与CV777 truncated毒株最低,仅为89.7％,FJNP毒株核苷酸的同源性与中国北方流行的CH ZKFG 11毒株最高,达100.0％.M基因含有681个碱基,编码226个氨基酸,与GenBank中登录的代表性PEDV核苷酸的同源性为94.8％～100.0％,氨基酸的同源性为94.8％～99.6％,其中FJPT毒株核苷酸的同源性与日本D89752毒株最低,仅为94.8％,FJNP毒株核苷酸的同源性与韩国CPF193、泰国毒株最高,达100.0％.4株PEDV毒株均与国内外流行强毒株的亲缘关系较近,与attenuate DR13弱毒株的亲缘关系较远.     

猪传染性胃肠炎与猪流行性腹泻二联弱毒疫苗的研究

用TGE及PED克隆化弱毒株以1：1配比制成TGE、PED二联弱毒疫苗,毒价为107.0-7.5TCID50／0.3ml,主动免疫与被动免疫的保护率为97.7％及98％。弱毒株毒力稳定,符合制苗标准。免疫期7个月,疫苗保存期一年,疫苗接种猪对同圈饲养的非免疫猪有低效价（16～32倍）的水平感染。6个猪场的田间试验保护率为95％-98％,对紧急预防接种的防制效果更为明显。     

检测猪流行性腹泻病毒的R-PCR方法的建立

根据猪流行性腹泻病毒 (PEDV)的N基因自行设计和合成了一对可扩增长度为 641bp目的片段的引物 ,成功地建立了检测的猪流行性腹泻病毒的RT PCR方法。对猪轮状病毒 (PRV)、猪传染性胃肠炎病毒 (TGEV)的RT PCR检测结果均呈阴性。对PEDV JS株的RT PCR产物的序列分析表明 ,与CV777株的同源性为 97 3 %。     

Impact of porcine group A rotavirus co-infection on porcine epidemic diarrhea virus pathogenicity in piglets

Porcine epidemic diarrhea virus (PEDV) and porcine group A rotavirus (PGAR) are the main causative agents of acute diarrhea in piglets. In South Korea, PGAR is prevalent in piglets naturally infected with PEDV. Piglets naturally co-infected with PEDV and PGAR appeared to have severe and prolonged diarrhea that was distinct from that commonly observed. The aim of this study was to determine the impact of PGAR co-infection on PEDV pathogenicity in piglets. Thirty-six colostrum-deprived, one-day old, Large White-Duroc crossbred pigs were randomly divided into four equal groups: PEDV, PEDV/PGAR, PGAR, and control groups. The piglets were euthanized at 1, 2, or 3 days post-inoculation (DPI) to measure the villous height:crypt depth (VH:CD) ratio and to collect fecal samples for RT-PCR and virus isolation. No significant differences in mean VH:CD ratio and clinical symptoms (diarrhea, vomiting, dehydration, and anorexia) were observed between the PEDV/PGAR-infected and PEDV-infected groups of piglets at 1, 2 and 3 DPI; however, at 2 and 3 DPI, PGAR was detected in all fecal samples by RT-PCR and virus isolation. These findings failed to detect any interaction between PEDV and porcine rotavirus in the small intestines of piglets, suggesting that concurrent infection of PGAR may not synergistically enhance intestinal villous atrophy of piglets with PEDV disease. We propose that the severe diarrhea exhibited in PEDV and PGAR co-infected piglets may be more associated with the immunity level of the host rather than to any synergistic effect of PGAR on PEDV enteritis.     

Establishment and Application of a Multiplex RT-PCR Assay for Detection of PEDV,TGEV and PRoV

In this study,a multiplex RT-PCR assay was established to differentially detect porcine epidemic diarrhea virus (PEDV),porcine transmissible gastroenteritis virus (TGEV) and porcine rotavirus (PRoV) after optimization of the reaction conditions.Three pairs of primers PEDV-N,TGEV-M and PRoV-VP6 were designed for specifically amplifying PEDV N gene,TGEV M gene and PRoV VP6 gene,respectively.The assay could specifically amplify PEDV,TGEV and PRoV,but not classical swine fever virus (CSFV),porcine foot and mouth disease virus (FMDV),pseudorabies virus (PRV),porcine parvovirus (PPV) and porcine circovirus type 2 (PCV2).The detection limits of PEDV,TGEV and PRoV standard recombinant plasmids were 1.41×10³,1.41×10² and 1.41×10³ copies/μL,respectively.The repeated reaction under the same conditions obtained uniform results.The assay was used to detect a total number of 190 clinical samples,of which 42 (22.11%) samples were positive for PEDV,58 (30.53%) samples for TGEV and 34 (17.89%) samples for PRoV,and there were mixed infection among these viruses.The results indicated that this multiplex RT-PCR assay had the advantages of sensitivity,specificity and repeatability and provided a useful tool for differential detection and epidemiological investigation of PEDV,TGEV and PRoV.     

PEDV、TGEV和PRoV多重RT-PCR检测方法的建立及应用

为建立猪流行性腹泻病毒（PEDV）、猪传染性胃肠炎病毒（TGEV）及猪轮状病毒（PRoV）的快速鉴别检测方法,本试验针对PEDV、TGEV、PRoV的基因组序列设计3对特异性引物PEDV-N、TGEV-M和PRoV-VP6,分别扩增PEDV N基因、TGEV M基因和PRoV VP6基因。经优化反应条件,成功建立了能同时检测并区分PEDV、TGEV、PRoV的多重RT-PCR方法。该方法可特异扩增PEDV、TGEV、PRoV相应的基因片段,而与猪瘟病毒（CSFV）、猪口蹄疫病毒（FMDV）、猪伪狂犬病病毒（PRV）、猪细小病毒（PPV）、猪圆环病毒2型（PCV2）均无交叉反应;对PEDV、TGEV、PRoV基因重组质粒标准品的检出限分别为1.41×10³、1.41×10²和1.41×10³拷贝/μL;在相同条件下重复试验可获得一致的结果。应用该方法对临床采集的190份腹泻病料进行检测,结果PEDV阳性42份,阳性率22.11%;TGEV阳性58份,阳性率30.53%;PRoV阳性34份,阳性率17.89%,且存在不同病毒混合感染的现象。结果表明,所建立的多重RT-PCR方法具有特异性强、敏感性高、重复性好的优点,可用于PEDV、TGEV和PRoV的临床检测和流行病学调查。