靶向S基因外源性microRNA抑制TGEV增殖效果的研究

应用生物信息学软件对猪传染性胃肠炎病毒(TGEV)S基因进行分析,筛选出可能与S基因有相互作用的外源miRNA:amiRNA-S-28035,amiRNA-S-28038,amiRNA-S-28165。之后,利用脂质体将构建好的相应的表达载体瞬时转染至PK-15细胞;通过Q-PCR和间接免疫荧光方法检测其对S基因的抑制作用;CPE分析和TCID50测定检测其对TGEV增殖的抑制效果。结果发现,3个外源性miRNA均降低了S基因mRNA的转录和蛋白的表达,其中amiRNA-S-28038对TGEV mRNA的平均抑制率可达64.6%,最高可达69.9%,表明外源性microRNA可以通过靶向TGEV基因组来抑制TGEV的复制。研究结果为猪传染性胃肠炎的预防和治疗提供了新的思路。     

TGEV S基因重组乳酸菌小鼠免疫研究*

将含有猪传染性胃肠炎病毒S基因的重组乳酸菌PNZ8149/NZ3900口服（灌胃）免疫BALB/C小鼠,第3次加强免疫后10 d捕杀小鼠,采集血液、脾脏、粪便,处理后采用T淋巴细胞增殖试验及间接ELISA方法,检查免疫小鼠对外源基因表达产物的应答情况。结果表明,含有S基因的重组乳酸菌经口服免疫小鼠后,血清中的IgG、粪便中的sIgA与对照组有明显的差异（P〈0.05）。结果说明,含有猪传染性胃肠炎病毒S基因的重组乳酸菌,可以诱导小鼠产生良好的针对猪传染性胃肠炎病毒的全身体液和黏膜免疫应答。     

TGEV双基因嵌合表达质粒pVAX—S—N的构建及体外表达

采用RT-PCR扩增猪传染性肠胃炎病毒(TGEV)SC-H株S基因5′端主要抗原位点片段和N基因,插入pMD19-T载体,经酶切与测序鉴定后,构建重组质粒19T-N与19T-S.从T载体上将S、N基因切下,以亚克隆方法插入真核表达载体pVAX1,构建嵌合表达S、N基因的重组质粒pVAX-S-N.对重组质粒PCR与酶切鉴定后,以脂质体转染法转染COS7细胞,间接免疫荧光检测转染后细胞外源基因的表达情况.结果表明,重组质粒构建正确且在COS7细胞中得到表达,转染的细胞呈现特异性荧光.真核表达质粒pVAX-S-N的成功构建为进一步研究TGEV核酸疫苗奠定了物质基础.     

猪传染性胃肠炎病毒感染相关猪源miRNA的筛选及表达差异分析

经生物信息学预测发现猪传染性胃肠炎病毒(TGEV)3′UTR可能是ssc-miR-182的潜在作用位点,本研究以猪传染性胃肠炎病毒为研究对象,构建TGEV 3′UTR双荧光素酶报告基因载体,并将其与合成的ssc-miR-182模拟体瞬时共转染至猪小肠上皮细胞,通过荧光监测仪测定荧光素酶活性;同时通过荧光定量PCR方法检测TGEV感染猪小肠上皮细胞后在不同时间段ssc-miR-182的表达变化情况。研究结果显示,ssc-miR-182对TGEV 3′UTR有一定的抑制作用,并且TGEV在感染小肠上皮细胞以后ssc-miR-182的表达明显上调。结果表明,宿主ssc-miR-182与TGEV的感染和复制增殖相关。     

猪传染性胃肠炎病毒(TGEV)S蛋白的原核表达与纯化

为制备高致病性的TGEV毒株重组S蛋白,试验将重组质粒pET28a-TGEV-S2、pET28a-TGEV-S3,转化至E. coli BL21(DE3)表达菌株,设置不同的诱导温度、IPTG浓度和诱导时长对其进行表达条件的优化,并使用纯化试剂盒将其纯化,采用SDS-PAGE和Western blot进行蛋白鉴定。结果表明,重组TGEV毒株S蛋白的分子量分别约为28 kDa、30 kDa,在不同诱导条件下均以包涵体形式存在,在28℃条件下以终浓度为1 mmoL·L^-1 IPTG诱导4 h表达量达到最高。结果表明:试验成功制备了TGEV重组S蛋白,为TGEV抗体检测试剂盒和基因工程疫苗、检测试剂的研究奠定了基础。     

靶向IRES序列的siRNA对口蹄疫病毒体外增殖抑制效果

为探讨靶向核糖体进入位点(IRES)区域的siRNA在真核细胞中对FMDV复制的抑制作用,对FMDV WFL株的IRES序列进行了保守性分析和二级结构预测,选择了靶向IRES保守的功能核心区的病毒复制原点附近的2个干扰靶位,设计并构建了shRNA真核表达质粒,转染到IBRS-2细胞后感染FMDV,通过双抗夹心ELISA和real-timeRT-PCR检测FMDV复制情况,结果表明,针对IRES区域的RNAi能够在一定程度上抑制FMDV的复制。     

靶向传染性法氏囊病病毒VP1基因siRNA对病毒复制的抑制

根据传染性法氏囊病病毒（IBDV）VP1基因保守区序列,选择设计了3个靶向VP1的小干扰RNA序列（siR-NA）：VP1-siRNA668、VP1-siRNA1034和VP1-siRNA2250,化学合成DNA序列,体外转录合成siRNA,转染鸡胚成纤维细胞（CEF）后接种IBDV,分析siRNA对病毒复制的影响。结果显示,病毒接种后72h,3个VP1-siRNA转染组未出现明显的细胞病变（CPE）,病毒滴度分别为102.75,102.00,101.75 TCID50/0.1mL,而siRNACON转染和单纯IBDV接种对照组均出现明显CPE,病毒滴度均为106 TCID50/0.1mL;用荧光定量RT-PCR分析VP1基因水平,3个VP1-siRNA转染组比对照组分别降低了73.10%,81.79%,90.28%。结果表明,本试验选择设计的3个siRNA具有明显抑制IBDV复制功能,其中2 250位点的siRNA抑制效果最明显,推测该区域是VP1基因的重要功能区,是新型抗IBDV药物与疫苗设计的重要靶标。     

TGEV细胞培养物超速离心与RT-PCR扩增的研究

研究猪传染性胃肠炎病毒(TGEV)细胞培养物的超速离心及鉴定方法.将TGEV的细胞培养物用饱和硫酸氨法浓缩后,用200 g/kg～500 g/kg蔗糖密度梯度离心分装,测定蛋白浓度并取峰值管进行RT-PCR,并设立15、25、35三个不同循环参数测定PCR产物volume值.结果表明,在35个循环条件下第14号样品PCR产物的volume值最大,表明该样品病毒核酸的含量最大,由此推算病毒粒子主要集中在360 g/kg～380 g/kg蔗糖区带处,这与理论值相符,证明猪传染性胃肠炎病毒经密度区带离心后,利用PCR产物量确定目的病毒区带效果显著.     

基因枪法转移猪传染性胃肠炎病毒纤突蛋白基因玉米植株

以玉米自交系"丹598"、"H99"和"丹988"的胚性愈伤组织为材料,利用基因枪法将猪传染性胃肠炎病毒(TGEV)S基因的植物表达载体pBI121-S导入玉米自交系中,并对基因枪法转化的条件进行了研究,对转化的愈伤组织进行分化诱导出苗后进行PCR和RT-PCR检测。PCR结果表明,外源目的基因已转入到玉米基因组中;RT-PCR试验证明,目的基因能在转基因玉米植株中获得转录。     

猪传染性胃肠炎病毒TH-98株S基因核酸疫苗的构建及其免疫效力

利用DNA重组技术，将编码猪传染性胃肠炎病毒（TGEV）TH-98株的全长S基因和主要抗原位点的Sa片段分别插入真核表达载体pCI的多克隆位点中。应用酶切、PCR方法鉴定阳性重组子pCI—Sa和pCI—S。将昆明鼠随机分成A、B、C3组（A组为pCI—Sa免疫组、B组为pCI-S免疫组、C组为pCI栽体对照组），每组35只，每只鼠肌肉注射100μg，免疫3次，每次间隔2周。于初次免疫后第0、14、21、28、35、42d采血，用ELISA检测血清抗体动态变化，流式细胞仪检测外周血CD4^＋和CD8^＋T细胞数量变化。结果表明，重组真核表达栽体均能诱导免疫鼠产生特异性的体液免疫及细胞免疫应答，而且pCI—Sa的免疫效果优于pCI-S。     

猪传染性胃肠炎S基因A D抗原位点在昆虫杆状病毒系统中的表达

猪传染性胃肠炎（Transmissible gastroenteritis，TGE）是猪传染性胃肠炎病毒（TGEV）引起猪的一种以严重腹泻、呕吐和脱水为主要临床症状的高度接触性传染病。该病对2周龄以内的仔猪具有高度致病性，致死率高达100％，是威胁养猪业发展的重要传染病。     

抗猪传染性胃肠炎病毒重组S蛋白单克隆抗体的制备与鉴定

以纯化的猪传染性胃肠炎病毒(TGEV)重组S蛋白免疫BALB/c小鼠,通过细胞融合技术,间接ELISA方法进行筛选和有限稀释法3次克隆,获得2株稳定分泌抗TGEV重组S蛋白单克隆抗体的杂交瘤细胞株,分别为C7C882和B5G8G7,其染色体平均计数均为88±10对,制备腹水抗体效价分别为1:2×105和1:104,分泌抗体亚类均为IgM型.2株杂交瘤细胞上清与猪流行性腹泻病毒(PEDV)、猪轮状病毒(PRV)、猪伪狂犬病病毒(PrV)均无交叉反应,与TGEV感染细胞经间接免疫荧光检测均呈黄绿色荧光.     

猪传染性胃肠炎病毒河北分离株核衣壳N蛋白基因的克隆与序列分析

采用RT-PCR技术扩增了TGEV河北分离株的N基因,长度约为1 149 bp. 将该基因片段进行亚克隆重组到pMD18-T质粒载体上,连接转化,鉴定后得到阳性重组质粒pTN.对重组质粒插入的目的基因片段进行序列分析和比较,结果表明TGEV河北分离株N基因与国外的Purdue-115、FS772/70、TO14、96-1933株有≥95%的同源性;推导的氨基酸序列同源性≥95%.TGEV N基因的克隆及序列分析,为其蛋白质的表达分析提供了重要依据,也为进一步讨论该病毒的分子生物学特性奠定了理论基础.     

猪传染性胃肠炎病毒感染机理的研究进展

猪传染性胃肠炎(Swine transmissble gas-troenteritis,TGE)是由猪传染性胃肠炎病毒(Swine transmissble gastroenteritis virus,TGEV)引起的一种主要以2周龄内仔猪发生呕吐、严重腹泻和脱水为特征的高度接触性传染病.     

microRNA(miRNA)对细胞凋亡的调控作用

microRNA(miRNA)Lin-4于1993年在线虫中被首次发现^[1],并且miRNA let-7的功能也在随后得到证实^[2],因此miRNA开始引起研究人员的注意,成为生物学研究的一个热点和重点领域。miRNAs是一类17~24个核苷酸的单链RNA分子,其在动植物细胞中广泛表达^[3]。miRNA的生物起源始于细胞核,涉及大量的细胞蛋白复合物。     

Antigenic variation among transmissible gastroenteritis virus (TGEV) and porcine respiratory coronavirus strains detected with monoclonal antibodies to the S protein of TGEV.

Five nonneutralizing monoclonal antibodies (MAb) generated to the virulent Miller strain of transmissible gastroenteritis virus (TGEV) and specific for the S protein were characterized. Competition assays between purified and biotinylated MAb indicated that MAb 75B10 and 8G11 mapped near a new subsite, designated V and 2 MAb, 44C11 and 45A8, mapped to a previously designated subsite D. A fifth MAb mapped between subsites V and E. These MAb were tested with 3 previously characterized MAb to subsites A, E, and F in fixed-cell ELISA and cell culture immunofluorescent assays against 5 reference and 9 field strains of TGEV and 2 US strains (ISU-1 and ISU-3) of porcine respiratory coronavirus (PRCV). Subsites A, E, and F were conserved on all TGEV and PRCV strains examined. The 2 MAb to subsite V, 8G11 and 75B10, reacted only with the Miller TGEV strains (M5C, M6, and M60), except that 75B10 also recognized field strain U328. The MAb 11H8 did not react with 4 field strains or the Purdue strains of TGEV. The 2 MAb to subsite D reacted with all TGEV strains examined, but not with 2 US PRCV strains, 2 European PRCV strains, 1 feline infectious peritonitis virus strain, and 1 canine coronavirus strain. Because of this specificity for TGEV, but not PRCV, these latter 2 subsite D MAb may be useful for the development of competition ELISA to differentiate serologically between TGEV and PRCV infections in swine, similar to the currently used European subsite D MAb.