香叶天竺葵组培快繁体系的研究

以香叶天竺葵无菌苗叶片为外植体,MS为基本培养基进行组培快繁研究,结果表明:愈伤组织诱导最佳培养基为MS+6-BA 0.2 mg/L+2,4-D 0.1 mg/L;不定芽诱导最佳培养基为MS+6-BA 0.2 mg/L+NAA 0.5 mg/L;不定芽增殖最佳培养基为MS+6-BA 1.0 mg/L+NAA 0.5 mg/L;最佳生根培养基为MS+NAA 0.1 mg/L,生根率达100%,且根系长势良好.     

江南越桔组织培养和快繁技术研究

利用江南越桔的茎段为外植体,进行其组培快繁技术体系研究。结果表明,WPS+6-BA 3.0 mg/L+NAA 0.2 mg/L+蔗糖20 g/L为诱导丛生芽较佳的启动培养基;WPS+ZT 1.0 mg/L+6-BA 0.2 mg/L+NAA 0.5 mg/L+蔗糖30 g/L为组培苗叶片诱导不定芽增殖较佳的培养基;1/2MS+IBA 0.2 mg/L+NAA 0.5 mg/L+活性炭3.5 mg/L为丛生芽生根较佳的培养基。     

应用正交试验筛选新台糖22号组培配方

利用正交试验研究不同配方对新台糖22号甘蔗组培苗增殖和促根的影响,以筛选提高甘蔗组培苗生根率及假植成活率较佳的配方。结果表明,较佳的腋芽诱导培养基配方为MS+6-BA 1mg/L+KT 0.5 mg/L+IBA 0.2 mg/L;丛芽分化、增殖培养基配方为MS+6-BA 0.8 mg/L+IBA 0.03 mg/L;促根培养基配方为1/2MS+IBA 0.2 mg/L+NAA 0.1 mg/L。     

辣木组织培养和快繁技术研究

采用正交实验设计L9(34),以MS培养基,分别加入不同质量浓度的6-BA、NAA、ZT和蔗糖进行辣木丛生芽增殖诱导;采用正交实验设计L9(34),以不同基本培养基,不同质量浓度的IBA、NAA进行辣木组培苗不定根诱导。结果表明,MS+蔗糖30 g/L+6-BA 1 mg/L+NAA 0.2 mg/L+琼脂7 g/L为辣木诱导丛生芽较佳的启动培养基,丛生芽诱导率可达100%;MS+蔗糖30g/L+ZT 0.5 mg/L+6-BA 0.5 mg/L+NAA 0.1 mg/L+琼脂7 g/L,为辣木丛生芽增殖较佳的培养基,增殖系数为6.17;1/2MS+IBA 0.2 mg/L+NAA0.1 mg/L,为辣木丛生芽生根较佳的培养基,不定根诱导率可达100%。     

红千层组织培养快繁技术研究

该研究以优选红千层新萌发的嫩芽茎段为外植体进行组培快繁。结果表明:红千层的启动培养基以MS+6-BA1.0mg/L+NAA0.2~0.3mg/L最为合适;增殖培养基以改良MS+6-BA0.6mg/L+KT0.2mg/L+NAA0.2mg/L较好;生根培养基以改良1/3MS+NAA0.2mg/L+IBA0.25mg/L+Ac0.15g/L为最佳,生根率可达95%以上。     

不同品种长寿花试管苗再生体系的建立

以5个品种长寿花的叶片和茎段为试验材料,开展长寿花试管苗繁育研究,探讨光照强度及不同植物激素组合对愈伤诱导率、丛芽诱导率、增殖系数等方面的影响。结果发现,不同品种之间存在差异,月桂、节日、霍恩愈伤诱导最佳培养基为MS+1.0 mg/L 6-BA+0.1 mg/L NAA;西伦的为MS+2.0 mg/L 6-BA+0.2 mg/L NAA;紫缤的为MS+1.5 mg/L 6-BA+0.2 mg/L NAA。月桂、西伦丛芽诱导最佳培养基为MS+2.0mg/L 6-BA+0.2 mg/L NAA,节日的为MS+1.0 mg/L 6-BA+0.2 mg/L NAA,紫缤、霍恩的为MS+1.0 mg/L 6-BA+0.1 mg/L NAA。月桂增殖最佳培养基为MS+0.2 mg/L 6-BA+0.2 mg/L ZT+0.3 mg/L NAA,节日为MS+0.4 mg/L ZT+0.3 mg/L NAA,西伦、霍恩的为MS+0.4 mg/L 6-BA+0.4 mg/L ZT+0.2 mg/L NAA,紫缤的为MS+0.4 mg/L 6-BA+0.3 mg/L NAA。花泥作为载体进行瓶外生根,生根率达90%以上,最佳光照度为2 500 lx。     

道地药材建青黛组织培养技术研究

以建青黛顶芽为外植体,MS为基本培养基,研究不同激素组合的培养基对顶芽诱导、增殖及生根的影响。试验结果表明:最佳顶芽诱导培养基为MS+6-BA 1.0 mg/L+NAA 0.1 mg/L,最佳增殖培养基为MS+6-BA 1.0 mg/L+IBA 0.1 mg/L,最佳生根培养基为MS+6-BA0.2 mg/L+NAA 0.05 mg/L+IBA 0.05 mg/L。     

杂交马褂木组培快繁研究

以杂交马褂木嫩枝作为外植体,接种到培养基MS+6-BA0.2mg/L+NAA0.1mg/L,可诱导大量丛生芽。增殖阶段,培养基MS+6-BA0.1mg/L+NAA0.2mg/L有利于苗的快速繁殖,提高繁殖系数。最佳生根培养基配方为MS+NAA0.2mg/L。     

“六月红”早熟芋快速繁殖技术研究

采用六月红早熟芋的茎尖为外植体进行组织培养。结果表明:最佳分化培养基为MS+6-BA1.0mg/L+NAA0.5mg/L,丛芽分化率为70.8%;最佳增殖培养基为MS+NAA 0.2mg/L+6-BA 0.5mg/L,增殖系数达7.6;生根培养基为MS+6-BA 0.1mg/L+NAA 0.5 mg/L+蔗糖20g/L,生根率100%,生根培养采用液体培养基,可以降低生产成本。5%的蔗糖有利微型芋的形成。     

刺李组培快繁技术研究

以刺李的当年生嫩枝茎段为外植体进行组织快繁试验.结果表明:刺李的最佳诱导培养基为MS+NAA 0.3 mg/L+6-BA 0.7 mg/L,增殖培养基为MS+6-BA 1.0 mg/L+NAA 0.2 mg/L,生根培养基为1/2MS+IBA 1.5 mg/L+NAA 0.2 mg/L,生根率达到96%.     

葡萄水仙离体快繁技术研究

采用不同诱导、增殖和生根培养基进行葡萄水仙鳞片离体快繁技术研究,结果表明:鳞片不定芽诱导的最佳培养基为MS+6-BA1.0~1.5 mg/L+NAA 0.2~0.4 mg/L;不定芽增殖培养的最佳培养基为MS+6-BA 1.0 mg/L+NAA 0.2 mg/L;最佳生根培养基为1/2MS+NAA 0.3 mg/L;蛭石是葡萄水仙试管苗最佳的驯化移栽基质,在该基质中生根苗移栽成活率达90%。     

马尼拉草茎尖组织培养优化组合筛选

以马尼拉草茎尖作为外植体,在MS基本培养基中添加不同浓度的6-BA和NAA,通过调节两者浓度配比,筛选出了对马尼拉草进行离体培养的优化组合培养基,分别是诱导培养基:MS+6-BA2.0 mg/L+NAA 1.0 mg/L;生芽培养基:MS+6-BA 2.0 mg/L+NAA 0.2 mg/L;生根培养基:MS+6-BA2.0 mg/L+NAA 5.0 mg/L。     

芦荟快繁体系建立的研究

[目的]为大规模快速生产芦荟组培苗提供理论和实践依据。[方法]以3个芦荟品种的茎尖分生组织为外植体,用含不同浓度6-BA和NAA的增殖培养基和含不同浓度NAA的生根培养基进行组织培养,研究不同培养基对芦荟组织发育的影响。[结果]在诱导芦荟侧芽分化的过程中,增殖培养基成分为MS+6-BA 3.0 mg/L+NAA 0.2 mg/L时,诱导效果比较理想,平均诱导出3.6个芽;在诱导生根的过程中,生根培养基成分为MS+NAA 0.2~0.3 mg/L时,生根率较高,平均生根数为7.8~8.2条,根较长且都为正常根。[结论]芦荟组织培养和快繁的培养基最佳配方为:增殖培养基MS+6-BA 3.0 mg/L+NAA 0.2 mg/L、生根培养基MS+NAA 0.2~0.3 mg/L。     

耧斗菜的组织培养

以耧斗菜幼嫩叶片及叶柄为外植体,研究了不同生长调节物质对外植体愈伤组织诱导、不定芽分化和生根的影响。结果表明,在培养基MS+2,4-D 1.0 mg/L+6-BA 0.5 mg/L上诱导叶柄产生愈伤效果最好,诱导率为80.5%;在培养基MS+NAA 0.5 mg/L+6-BA 1.0 mg/L上叶片愈伤诱导效果最好,诱导率为92.7%。继代培养基为MS+2,4-D 0.5 mg/L+6-BA 0.5 mg/L和MS+NAA 0.5 mg/L+6-BA 2.0 mg/L。在培养基MS+NAA 0.5 mg/L+6-BA 0.5 mg/L中分化芽;分化的芽在MS+NAA 0.1 mg/L+6-BA 0.5 mg/L中增殖。生根培养基为1/2 MS+NAA0.1 mg/L或1/2 MS+IBA 0.2 mg/L。     

蝴蝶兰离体再生条件的优化

以蝴蝶兰花梗为试验材料,研究不同浓度的6-BA和NAA组合对腋芽诱导的影响,并应用正交试验设计,研究了基本培养基、6-BA、NAA和椰乳浓度对萌发腋芽增殖的影响,并进行了生根培养。结果表明,蝴蝶兰花梗腋芽诱导的适宜培养基为MS+6-BA5.0mg/L+NAA0.2mg/L+椰乳150mL/L,诱导率可达90.7%;萌发腋芽增殖的适宜培养基为MS+6-BA8.0mg/L+NAA0.2mg/L+椰乳150mL/L,增殖倍数达6.8;适宜的生根培养基为1/2MS+NAA0.4mg/L+活性炭1mg/L,生根率达93.3%。     

兰州百合快速繁殖研究

优化兰州百合组织培养体系,提高其植株再生率,建立高频植株再生体系.采用正交试验设计,以鳞片为外植体,以MS和1/2MS培养基为基本培养基,附加不同浓度NAA(0.2~1.0 mg/L)、6-BA(0.5~2.0 mg/L)、KT(0.1~1.0 mg/L)、IBA(0.2~1.0 mg/L)、IAA(0.2~1.0 mg/L),对兰州百合进行鳞茎诱导、增殖和生根培养,筛选最佳激素配比.6-BA浓度过低或过高均不利于小鳞茎形成,当1.0 mg/L 6-BA与0.2~1.0 mg/L NAA配比时,鳞茎诱导率和平均生成鳞茎数较高;随着NAA浓度增加,平均生成鳞茎数不断增加,其中以1.0 mg/L 6-BA+1.0 mg/L NAA组合平均小鳞茎最多,为5.9个.与0.5~1.0 mg/L KT+0.2 NAA mg/I组合相比,添加0.5~1.5 mg/L6-BA+0.5~1.0 mg/L KT或0.2NAA mg/L组合培养基更利于芽增殖,但其丛芽长势较弱,其中以添加0.5 mg/L 6-BA+0.2 mg/L NAA培养基从芽长势和小鳞茎长势较好,平均分化鳞茎较多.在以MS、1/2MS为基本培养基、分别添加0.2~1.0 mg/LIAA或IBA培养基中,随着IAA或IBA浓度升高,鳞茎生根率不断降低,根质量不断下降,而平均根数和根长表现有所不同.从根质量来看,MS培养基根质量不如1/2MS培养基;而在1/2MS培养基中,1/2MS与IBA组合优于与IAA组合.鳞茎诱导最佳培养基为MS+1.0 mg/L 6-BA+NAA 0.5~1.0 mg/L,不定芽增殖最适培养基为MS+0.5 mg/L 6-BA+0.2mg/L NAA,最佳生根培养基为1/2MS+0.2 mg/L IBA,生根效最好,生根率为100.0%,根中等长度、粗壮,质量最好.     

微型月季组培快繁关键技术研究

以微型月季带腋芽的幼嫩茎段为试材,对微型月季组培快繁中外植体消毒、愈伤组织诱导、丛芽增殖培养以及植株生根等关键技术进行研究。结果表明,用75%酒精消毒2 min后,再用HgCl_2消毒10~15 min时,外植体存活率最高;培养基MS+2 mg/L 6-BA+0.1 mg/L NAA的愈伤组织诱导率可达95%;愈伤组织增殖最适培养基为MS+1 mg/L 6-BA+0.5 mg/L KT+0.2 mg/L NAA;丛芽分化增殖最适培养基为MS+3 mg/L 6-BA+0.2 mg/L KT+0.2 mg/L NAA;生根最适培养基为1/2 MS+0.1 mg/L NAA。     

黄杨叶栒子组织培养与快速繁殖技术研究

采用组织培养技术,以幼嫩茎段为接种外植体,对黄杨叶栒子进行快速繁殖研究。结果表明,1/2 MS+6-BA 1.0 mg/L+IBA 0.1 mg/L为黄杨叶栒子较佳的启动培养基,MS+6-BA 1.5 mg/L+IBA 0.1 mg/L为较佳的增殖培养基,在生根阶段,以1/2MS+IBA 2.0 mg/L+NAA 0.5 mg/L为较佳培养基,一定量的IBA和NAA互作时,黄杨叶栒子的生根率最高,生根时间最短。     

‘Siberia’百合再生体系的建立

以东方百合‘Siberia’离体鳞片为外植体,研究不同激素质量浓度对芽的诱导、增殖、小鳞茎形成、叶片和叶柄再生及生根的影响。结果显示:最适不定芽诱导培养基为MS+6-BA 2.0mg/L+NAA 0.5mg/L,分化率85%;最适增殖培养基为MS+6-BA 0.7mg/L+NAA 0.2mg/L,芽增值系数为3.83;不定芽形成鳞茎的适宜培养基为:MS+6-BA 0.2mg/L+NAA 0.5mg/L+7%蔗糖,增值系数2.47。鳞片叶片的最适再生培养基为MS+6-BA 0.5mg/L+2,4-D 1.0mg/L,分化率为92.5%;叶柄的最佳再生培养基为MS+6-BA 1.0mg/L+NAA 0.5mg/L,分化率为83.3%;暗培养对鳞片叶片及叶柄的再生无显著性的差异,分化率均在80%以上;最适生根培养基为1/2MS+NAA 0.2mg/L,生根率100%。     

贵州非洲菊主栽品种工厂化育苗技术研究

为生产提供优质的非洲菊种苗,以非洲菊桔红品种大零88和红色品种热带草原的幼蕾为外植体,选用MS为基本培养基,附加激素6-BA、KT和NAA,研究了不同激素浓度组合对外植体不定芽分化、增殖培养和生根培养的影响.结果表明:诱导芽分化时,大零88以MS+6-BA 6mg/L+KT 4mg/L+NAA 0.1 mg/L的效果最佳;热带草原以MS+6-BA 9 mg/L+KT 4 mg/L+NAA 0.1 mg/L的效果最佳.增殖培养中,大零88以MS+6-BA 0.3～0.5mg/L+KT 0.2～0.4mg/L+NAA 0.01～0.05mg/L为佳;热带草原以MS+6-BA 0.2～0.4mg/L+NAA 0.01mg/L为佳.生根培养大零88以MS+NAA 0.4mg/L+IAA 0.1 mg/L的生根率达100%,热带草原以MS+NAA 0.3～0.4 mg/L+IAA 0.1～0.2 mg/L的生根培养基最好.