猪的传染性胃肠炎病毒

传染性胃肠炎(TCE)是一种高度传染的病毒性的猪肠道疾病,2周龄前的小猪感染后死亡率十分高。在美国中西部猪繁殖密集的地区,传染性胃肠炎是幼年小猪腹泻和死亡的主要原因之一。虽然这种病毒通过实验接种后可以从狗、狐和八哥鸟中分离出来,并在狗体中可测得传染性胃肠炎的抗体,但除猪之外尚未发现其他动物发病。在美国,该病主要发生在冬季。这可能是由于(1)病毒在冷天比暖热天气活得较     

猪传染性胃肠炎病毒qRT-PCR检测方法的建立

猪传染性胃肠炎(TGE)是由猪传染性胃肠炎病毒(TGEV)感染引起猪以腹泻、呕吐、脱水为主要特征的一种高度接触性肠道传染病,可造成极高的仔猪死亡率,且临床剖检很难与其他病毒性腹泻区别。本试验参考TGEV JS2012株N基因保守序列设计引物,构建阳性标准品,建立qRT-PCR检测方法。将阳性标准品10倍倍比稀释构建标准曲线,结果显示,在6.06×10~2～6.06×10~8拷贝/μL扩增具有良好的线性关系。同时对临床生产中常见的腹泻病毒:轮状病毒、猪德尔塔冠状病毒、猪流行性腹泻病毒核酸进行扩增,结果均为阴性,无交叉反应,表明该方法具有良好的特异性。通过与传统PCR检测方法对比,本试验建立的检测方法具有更高的灵敏性,为临床检测TGEV的早期感染和预防提供技术支持。     

猪传染性胃肠炎病毒RT-PCR检测方法的建立

根据GenBank上发表的猪传染性胃肠炎病毒(TGEV)基因序列,针对TGEV N基因全序列设计合成了一对引物,以TGEV疫苗株为模板,建立了检测TGEV的RT-PCR方法.应用该方法对TGEV疫苗株RNA进行扩增,获得与预期大小相符,长度为1 168 bp的特异性目的片段;测序结果与已报道的TGEV不同毒株序列的同源性为95%～97%;敏感性测定结果为可扩增到18 pg的TGEV N基因cDNA.结果表明,建立的RT-PCR方法对TGEV的检测敏感性高、特异性强,可用于TGEV感染的诊断和流行病学调查.     

猪传染性胃肠炎病毒NASBA检测方法的建立

为建立猪传染性胃肠炎病毒(TGEV)NASBA的检测方法,本研究利用BioEdit和BlastN,根据GenBank中猪TGEV的S基因保守序列设计引物,建立了扩增TGEV的NASBA检测技术。利用该方法建立的反应体系在41℃反应2h即可得到有效扩增。实验结果表明:该方法对TGEV进行扩增获得约200bp特异性目的条带,而对CSFV、PRRSV、PCV-2、PPV、PEDV和ST细胞扩增结果均为阴性。NASBA的灵敏度高于普通RT-PCR,与病毒分离方法相当,可检测到5pg的核酸。该方法为TGEV的早期诊断提供了新途径。     

RT-PCR检测猪传染性胃肠炎病毒方法的建立

猪传染性胃肠炎 ( TGE)是一种以严重腹泻、呕吐和脱水为临床特征的高度接触性传染病 ,属于国际兽疫局 ( OIE)法典中 B类疫病必检的猪传染病。TGEV是一种有囊膜的正链 RNA冠状病毒。目前检测 TGEV的方法主要有中和试验、免疫荧光抗体试验、酶联免疫吸附试验和电镜技术 ,这些方法对于检测 TGEV和防制 TGE起到了重要作用 ,但也存在特异性不强、灵敏性差、耗时长等缺点。c DNA探针、RT- PCR近年来已成为国际上用于检测病原微生物的主要方法。由于 c DNA探针与临床样品中非相关核酸有一定的非特异性结合 ,尤其是检测粪便、尿液等…     

猪传染性胃肠炎病毒可视化RT-LAMP检测方法的建立

通过对比猪传染性胃肠炎病毒(transmissible gastroenteritis virus,TGEV)主要流行毒株的M基因序列,选择其高度保守的区域设计LAMP引物,以羟基萘酚蓝(HNB)为指示剂,建立了1种快速检测TGEV的可视化环介导等温扩增方法。结果显示,采用建立的方法在恒温水浴锅中约1 h即可完成检测;用该方法检测猪流行性腹泻病毒,猪轮状病毒,猪繁殖与呼吸综合征病毒,猪细小病毒,猪圆环病毒,均不发生交叉反应;以pET-21b-M质粒为模板评价所建立方法的敏感性,最低检测限为3.7×10~3个拷贝,比普通PCR方法高2个数量级;在反应前向反应体系中加入HNB,反应结束后阳性反应管颜色从紫罗兰色变为天蓝色,阴性反应管颜色无变化,且阴阳性管颜色差异明显。用建立的方法对收集的42份临床腹泻样品进行检测,共检测到21份样品阳性。为快速检测TGEV提供方法。     

抗猪传染性胃肠炎病毒单克隆抗体杂交瘤细胞株的建立

用猪传染性胃肠炎(TGEV)华毒株弱毒H-155代感染iBRS_2传代细胞,通过冻融、PEG3000沉淀、蔗糖密度梯度离心提纯制备的TGEV抗原,免疫BALB/c小鼠,取血清抗体阳性的免疫鼠的脾细胞,在50％PEG4000作用下,与SP2/0小鼠骨髓瘤细胞进行融合,产生杂交瘤。用ELISA间接法对杂交瘤细胞生长孔上清液进行检测,筛选阳性杂交瘤细胞株。通过有限稀释法进行3次克隆,获得了2株分泌抗TGEV的单克隆抗体杂交瘤细胞株。并对其所分泌的单克隆抗体免疫球蛋白亚类、特异性、中和反应性等特性作了初步鉴定。     

猪传染性胃肠炎病毒分子生物学研究进展

猪传染性胃肠炎病毒(TGEV)基因组为不分段的单股正链RNA,其编码4种结构蛋白和3种非结构蛋白。TGEV S蛋白是基因工程研究的重点,近年来,S蛋白在大肠埃希菌、沙门菌、腺病毒等中得到了高效表达。将传染性胃肠炎病毒的基因组人工改造成为感染性cDNA的表达载体,此载体可在ORF3处插入外源基因,异源基因绿荧光蛋白可稳定、高效地表达。TGEV基因1和其他冠状病毒相比保守性很强,所以对TGEV聚合酶的研究,特别是其中保守酶的研究,对于抗TGEV及其他冠状病毒药物的研究有着重要的意义。     

猪传染性胃肠炎病毒分子生物学研究进展

猪传染性胃肠炎病毒(TGEV)可引起猪传染性胃肠炎,给养猪业造成极大危害。本文介绍TGEV基因组结构、S基因及结构蛋白与功能,通过对TGEV的分子生物学特性的深入研究,对目前开发研制的新型疫苗具有重要意义。     

抗猪传染性胃肠炎病毒单克隆抗体杂交瘤细胞株的建立

用猪传染性胃肠炎（TGEV）华毒株弱毒H－155代感染iBRS2传代细胞，通过冻融、PEG6000沉淀、蔗糖密度梯度离心提纯制备的TGEV抗原，免疫BALB／C小鼠，取血清抗体阳性的免疫鼠的脾细胞，在50％PEG4000作用下，与SP2／0小鼠骨髓瘤细胞进行融合，产生杂交瘤，用ELISA间接法对杂交瘤细胞生长孔上清液进行检测，筛选阳性杂交瘤细胞株。通过有限稀释法进行3次克隆，获得了2株分泌抗TGEV的单克隆抗体杂交瘤细胞株，并对其所分泌的单克隆抗体免疫球蛋白亚类、特异性、中和反应性等特性作了初步鉴定。     

检测猪传染性胃肠炎病毒RT-PCR的建立及应用

根据GenBank上猪传染性胃肠炎病毒S基因的保守序列,设计1对引物,建立了检测猪群中的猪传染性胃肠炎病毒的RT-PCR方法.试验结果表明,该RT-PCR方法敏感、特异,适于临床样品检测,为猪传染性胃肠炎病毒的临床诊断和流行病学调查奠定了基础.     

猪传染性胃肠炎病毒间接ELISA检测方法的建立

猪传染性胃肠炎（TGE）是由冠状病毒科、冠状病毒属的TGEV引起猪的一种以呕吐、严重水样腹泻和脱水为特征的急性、高度接触性传染病。TGE常与其他腹泻性疾病发生混合感染,并且在临床不易与其他腹泻病相区别。因此,对TGE进行准确的诊断与鉴别诊断对防制该病具有重要意义。EUSA检测方法具有敏感性高、特异性强、操作简便和样本检测量大等特点,可广泛用于病原和血清抗体检测。     

猪传染性胃肠炎病毒与大肠杆菌混合感染的诊治

2007年12月,四川某规模化猪场发生以新生仔猪呕吐、剧烈腹泻、严重脱水及高死亡率为主要特征的疫情,仔猪死亡率高达90%以上,给猪场造成了严重的经济损失.     

猪传染性胃肠炎病毒分子生物学研究进展

本文对猪传染性胃肠炎病毒有关分子生物学方面的最新研究资料进行了概述。ＴＧＥＶ基因组约２９大小,其５‘端是基因１,余下３’端约８．３ｋｂ有６人基因,共有７个亚基因组ｍＲＮＡ,其转录,翻译过程受到病毒的自身的严格调控。基因１编码病毒的主要功能蛋白－聚合酶类有木瓜蛋白酶,类３Ｃ蛋白酶,类生长因子／受体区,聚合酶,金属离子结合区和解旋酶等功能活性区,它们对该酶活性进行调控。     

猪传染性胃肠炎病毒基因工程研究进展

猪传染性胃肠炎病毒(TGEV)是猪的一种重要的传染病病毒，给养猪业造成巨大经济损失。近几年来，随着分子生物学技术的广泛应用．在TGEV的各个方面的研究都取得了长足进展．积累了丰富的资料。本文就来对TGEV的基因工程研究进展作一介绍。     

猪传染性胃肠炎病毒分子生物学研究进展

猪传染性胃肠炎是一种高度接触性的传染病,以呕吐、严重腹泻、脱水和致两周龄内仔猪高死亡率为主要特征,该病的预防和控制对养猪业具有重要意义。本文对TGEV的病原分子结构、基因组结构以及主要毒力蛋白及功能进行了较为深入的阐述,以期为TGEV的预防与控制研究提供借鉴。     

猪流行性腹泻病毒和猪传染性胃肠炎病毒双重RT-PCR鉴别方法的建立

根据GenBank发表的猪流行性腹泻病毒(PEDV)CV777株和猪传染性胃肠炎病毒(TGEV)Purdue P115株的基因序列,针对其基因保守区,设计1条共用的下游引物和2条各自病毒的上游引物,可特异扩增出大小分别为213 bp和546 bp目的条带。经过对TaqDNA聚合酶和Mg2+浓度、退火温度(Tm)等PCR反应条件的优化,最终确定该双重RT-PCR的最佳条件为TaqDNA聚合酶浓度为0.03 U/μL,Mg2+浓度为0.05 mmol/L,dNTP浓度为200μmol/L,Tm为51℃。特异性和敏感性检测结果显示,所建立的检测方法具有很好的特异性以及较高的敏感性。