‘青州仙子’兰离体快繁技术研究

以‘青州仙子’兰的春生侧芽为外植体,研究其完整的组织培养过程。试验结果表明,适宜侧芽直接诱导原球茎的培养基为MS+6-BA 2.0 mg/L+NAA 0.2 mg/L+椰汁10%,适宜原球茎增殖及分化成苗的培养基为MS+6-BA 1.0 mg/L+NAA0.1 mg/L+AC 0.2 g/L,适宜壮苗的培养基为1/2MS+AC 0.5 mg/L+香蕉泥50 g/L,最佳生根培养基为1/2MS+NAA 0.5 mg/L+AC 1.0 g/L+香蕉泥50 g/L,生根率95%。     

大哥大红掌实用化生产的组织培养研究

以叶片、叶柄或叶茎为外植体,在培养基MS+6-BA 1～2mg/L+NAA 0.1mg/L+2,4-D 0.1～0.2mg/L上均可诱导愈伤组织的产生,其中以MS+6-BA1.0 mg/L+NAA0.1mg/L+2,4-D 0.1mg/L效果最好,诱导率可达87%以上;其最佳的分化培养基MS+6-BA 1.5mg/L+NAA 0.2mg/L上,分化率可以达到90%以上,大哥大红掌最佳的增殖培养MS+6-BA 2mg/L+NAA0.2mg/L,培养30d芽的增殖系数达到3.45,降低6-BA浓度或提高NAA浓度有利于培养壮苗;1/2MS+NAA 0.1mg/L+1g/L活性炭的培养基诱导植株生根效果最好,生根率86%,平均每株苗生根3条;生根试管苗移栽于泥炭土:珍珠岩=5∶1的基质,成活率约86%。     

蝴蝶兰的组织培养技术研究

以蝴蝶兰花梗为外植体,进行组织培养技术研究。结果表明:不同浓度激素组合配比对蝴蝶兰的分化、生根有显著影响。最佳分化培养基为MS+6-BA5.0mg/L+NAA0.5mg/L,琼脂6g/L,蔗糖含量为20g/L,水解酪蛋白0.1g/L,柠檬酸0.03g/L,椰汁0.1g/L,分化系数为3;最佳生根培养基为1/2MS+NAA0.3mg/L,琼脂6g/L,蔗糖含量为20g/L,水解酪蛋白0.1g/L,柠檬酸0.03g/L,椰汁0.1g/L。     

木鳖子茎蔓无菌培养及植株再生研究

以木鳖子幼嫩茎蔓为外植体进行组织培养研究,结果表明,最适宜的诱导培养基为MS+6-BA 0.8 mg/L+NAA0.1 mg/L+蔗糖30 g/L,诱导率为66.7%;继代增殖培养基为MS+6-BA 0.6 mg/L+NAA 0.2 mg/L+马铃薯泥2%+活性炭1 g/L+蔗糖30 g/L,增殖倍数为5.6倍;生根培养基为MS+NAA 0.4 mg/L+香蕉泥5%+活性炭2 g/L+蔗糖20 g/L,生根率100%,平均生根数4.8条,平均根长3.9 cm。炼苗10 d后移栽腐殖土∶火烧土∶腐熟艾蒿(体积比5∶3∶2)混合基质的成活率最高达93.3%。     

蝴蝶兰“大辣椒”花梗组织快繁技术研究

以蝴蝶兰"大辣椒"(Phalaenopsis amabilis Big Chilli)花梗为外植体,研究不同培养基、生长调节物质对蝴蝶兰组培各个阶段产生的影响,建立蝴蝶兰"大辣椒"的离体快繁技术体系。结果表明0.1%的升汞消毒10min效果最佳,污染率最低可达到27.69%,成活率80.75%;腋芽萌发最佳培养基为MS+6-BA 2.0mg/L+NAA 0.05mg/L+蔗糖30g/L+活性炭1g/L+琼脂6g/L,pH值5.6,萌发率82.99%;增殖最佳培养为MS+6-BA 5.0mg/L+NAA 0.1mg/L+蔗糖30g/L+活性炭1g/L+琼脂6g/L pH值5.6,增殖系数2.75,暗培养7d有利于增殖;添加了IBA 2.0mg/L的1/2 MS培养基上,生根最好。     

齿瓣石斛组织培养技术研究

以齿瓣石斛蒴果为外植体进行胚培养的试验表明,初始萌发培养基为1/2MS;原球茎萌发培养基为3/4MS+10%马铃薯汁+5%香蕉汁+6-BA0.2mg·L-1+NAA0.05mg·L-1+0.05%AC;继代增殖培养基为MS+10%马铃薯汁+10%香蕉汁+6-BA0.5mg.L-1+NAA0.2mg.L-1+0.1%AC;壮苗生根培养基为1/2MS+10%香蕉汁+5%马铃薯汁+6-BA0.2mg·L-1+NAA1.0mg·L-1+0.1%AC,生根诱导率达100%,成活率达90%以上。     

尾叶桉优良无性系组培快繁研究

文章以尾叶桉(Eucalypt urophylla)优良新无性系的无菌组培苗为材料,MS培养基为基本培养基,研究6-BA、NAA不同质量浓度配比对尾叶桉无菌幼苗丛芽增殖率,以及生根粉种类、质量浓度、不同IBA和NAA配比对不同尾叶桉无性系生根率的影响.试验结果表明,当6-BA质量浓度为0.01 mg/L,丛芽增殖率在NAA质量浓度为0.01、0.1 mg/L时递增;而NAA质量浓度为1、5 mg/L时,则有利于生根;筛选出适宜尾叶桉优良无性系ZQUA10的增殖培养基为MS+0.01 mg/L 6-BA+0.01 mg/L NAA+30 g/L蔗糖+6 g/L卡拉胶,增殖系数达到4.7;筛选出适宜尾叶桉优良无性系ZQUA13的生根培养基为1/2MS+0.5 mg/L ABT1+30 g/L蔗糖+6 g/L卡拉胶,生根率达到57.5%;筛选出适宜尾叶桉优良无性系ZQUB58的生根培养基为1/2MS+1 mg/L IBA+0.5 mg/L NAA+30 g/L蔗糖+6 g/L卡拉胶,生根率达到100%.     

月光银桦组织培养技术

对月光银桦组织培养技术进行了研究,筛选出了适合的诱导培养基为1/2 MS+6-BA 1.0 mg/L+NAA0.1 mg/L+GA31.0 mg/L,诱导率达71%;较适合的增殖培养基为1/2 MS+6-BA 0.1 mg/L+NAA 0.01 mg/L,增殖系数达3.25;较适合的生根培养基为1/2MS+IBA 0.5 mg/L+NAA 0.5mg/L,生根率达92.3%。移栽基质为泥炭土+珍珠岩(V泥炭土:V珍珠岩=3∶1),移栽成活率可达85%以上。     

大叶石蝴蝶植株再生体系的建立

以野生大叶石蝴蝶叶片为外植体,对影响大叶石蝴蝶植株再生的激素组合、接种方式、叶片大小、叶片切割方式等进行试验研究。结果表明,采用0.1%的升汞消毒12 min后,接种在MS+0.5 mg/L 6-BA+0.1 mg/L NAA+30 g/L蔗糖+5.0 g/L琼脂培养基上,培养120 d后可获得分化的无菌苗;无菌苗叶片转接在MS+1.0 mg/L 6-BA+0.1 mg/L NAA+30 g/L蔗糖+5.0 g/L琼脂上,50 d后的分化率为100%,平均每个叶片有效的不定芽数量为6个;其中以较大的叶片横切后,近轴面朝上接种在培养基上最有利于叶片分化;适宜生根的培养基为1/2MS+0.9 mg/L NAA+0.2 g/L AC+15 g/L蔗糖+6.0 g/L琼脂,生根率为100%。生根后移栽在腐殖土∶珍珠岩=5∶1基质上,注意控温控湿即可成活。     

紫菀石斛组培快繁技术研究

以紫菀石斛野生蒴果为外植体进行组培快繁和假植育苗试验,结果表明:种子萌发及原球茎诱导最适宜培养基为1/2 MS+蔗糖25 g/L+琼脂5.0 g/L+马铃薯泥5 g/L,萌发率达95%;增殖分化培养基为MS+蔗糖30 g/L+琼脂5.0 g/L+马铃薯泥50 g/L+香蕉泥20 g/L+6-BA 0.2 mg/L,增殖倍数达10.2倍;壮苗生根培养基3/4MS+蔗糖20 g/L+琼脂5.0 g/L+马铃薯泥30 g/L+香蕉泥70 g/L+NAA 0.5 mg/L,生根率达100%;移栽炼苗基质以树皮屑/刨花=1体积比组合最好,移栽成活率在96%以上。     

沙枣组织培养与快速繁殖

以沙枣的顶芽和腋芽为外植体,经过不同时间的灭菌处理,在MS基本培养基中添加不同配比的植物生长调节剂进行离体培养。结果表明:沙枣外植体采用10%Ca(ClO)2上清液处理的最佳灭菌时间为11 min。芽诱导适宜的培养基为MS+6-BA2.0 mg.L-1+NAA2.0 mg.L-1+蔗糖30.0 g.L-1+琼脂4.5 g.L-1,适宜的增殖培养基为MS+6-BA1.5 mg.L-1+NAA1.0 mg.L-1+蔗糖30.0 g.L-1+琼脂4.5 g.L-1和MS+6-BA1.0 mg.L-1+NAA0.5 mg.L-1+蔗糖30.0 g.L-1+琼脂4.5 g.L-1,适宜的生根培养基为1/2MS+NAA0.5 mg.L-1+蔗糖20.0 g.L-1+琼脂4.5 g.L-1。以腐叶土:炉灰=2:1的营养土做移栽基质效果最好,移栽成活率达85%。     

小叶丁香的组织培养

以小叶丁香的茎段和叶片为外植体进行植物组织培养。分别以0.1%的升汞和65%的次氯酸钠对外植体进行灭菌,将灭菌的小叶丁香叶片接于不同的培养基中进行脱分化培养;将灭菌的小叶丁香茎段接于不同培养基中,观察腋芽的促生情况;将促生出的小叶丁香的腋芽进行生根培养。结果表明：在0.1%的升汞中,小叶丁香的茎段和叶片最佳灭菌时间均为30s;在65%的次氯酸钠中小叶丁香的茎段和叶片最佳灭菌时间分别为2min和1min;最佳脱分化培养基为：MS＋NAA2mg/L＋6-BA2mg/L;最佳腋芽促生的培养基为：MS＋6-BA2mg/L;最佳生根最适培养基为：MS＋NAA0.5mg/L。     

大花蕙兰无菌播种技术试验

对大花蕙兰进行无菌播种技术试验,结果表明,其种子萌发的适宜培养基为1/2MS+6-BA0,1 mg·L-1+ NAA0．2 nag·L-1+10％椰乳+Ac 1g·L-1;椰乳可明显提高种子发芽率并促进原球茎生长,激素浓度的高低对原球茎和小苗的生长有一定影响;果龄6-9个月的蒴果播种萌发率较为理想,萌发后原球茎移植到1/2MS+6-BA1 mg·L-1+10％椰乳+Ac 0．5g ·L-1培养基中月增殖率可达3．89倍,原球茎在MS培养基中更易分化成苗,且小苗生长势更佳。6-BA、NAA有利于原球茎增殖倍数的提高,继代周期以4-6周为宜。     

彩色马蹄莲“柠檬”组织培养研究

以彩色马蹄莲品种“柠檬”的块茎为外植体,研究不同的消毒方法和激素水平对彩色马蹄莲离体繁殖的影响,并筛选适合彩色马蹄莲试管苗生长的培养基。结果表明,在初代试验中对彩色马蹄莲的块茎消毒以0.2%升汞处理15 min为宜;MS＋1.0-2.0 mg/L6-BA＋0.1-0.2 mg/L NAA为适宜的愈伤组织诱导培养基;在继代培养基MS＋0.5 mg/L6-BA＋0.1 mg/L NAA上,愈伤组织能够分化出状态良好的丛生芽并继续增殖;在培养基MS＋0.1mg/L IBA上,生根率达100%,试管苗生长健壮,根系良好。     

铁皮石斛组培育苗与组培苗培植技术研究

对铁皮石斛组织培养育苗和组培苗培植技术进行研究,结果表明:在MS培养基中添加6-BA 1.0mg/L+NAA 0.1 mg/L+IAA 0.5 mg/L+50 g/L椰子汁有利于芽苗的增殖;在1/2MS培养基中添加6-BA0.1 mg/L+IBA 1.0 mg/L+NAA 0.2 mg/L+50 g/L椰子汁有利于小苗生根和植株生长。搭建大棚移植铁皮石斛组培苗,采用高架苗床,选用松树皮和花生壳(v/v=4∶1)为基质,移栽成活率可达95%以上。     

杉木无性系规模化组培繁育技术研究

为了建立高效的杉木规模化组培快繁体系,以杉木未木质化的春梢茎段为外植体,MS为基本培养基,研究不同生长调节剂及其浓度组合对茎段萌发和丛生芽增殖的影响.结果表明：采用未木质化的春梢茎段,剖开后匍匐放置于培养基上,腋芽容易萌发,最佳初代培方式为MS＋6-BA1.0mg/L＋ NAA0.5 mg/L培养基上培养10天后,转到MS＋ 6-BA0.8 mg/L＋NAA0.3 mg/L继续培养,最佳增殖培养基为MS＋ 6-BA0.8 mg/L＋ NAA0.3 mg/L,无根无菌植株采用常规扦插方法生根,可成功培育杉木优良无性系苗木.     

四数九里香种子自然萌发和离体萌发条件筛选

为提高四数九里香种子萌发率,研究了最佳浓硫酸处理种子的时间及不同激素处理对四数九里香种子自然萌发的影响,以完整种子和带胚子叶作为外植体,研究不同质量浓度的6-BA、NAA、IBA、GA3对外植体生长的影响,及不同质量浓度活性炭对外植体褐化的影响。结果表明,浓硫酸最佳处理时间为1 min;用200×10-6的IBA处理过的种子发芽率最高,达50%;其次是50×10~(-6)和150×10~(-6)的NAA,其萌发率均为45%;外植体在添加2.5 mg/L 6-BA、0.2 mg/L IBA、0.1 mg/L GA3或0.2 mg/L NAA的培养基上诱导率较高,活性炭为1.5 g/L时外植体褐化程度最低;四数九里香胚培养的最佳培养基为添加2.5 mg/L 6-BA、0.1 mg/L GA3、0.2mg/L NAA和1.5 g/L活性炭的MS培养基。     

金边连翘工厂化组培育苗技术研究

以金边连翘的幼嫩茎段为外植体,研究了其工厂化组培育苗技术。结果表明:初代培养最佳培养基配方为MS+6-BA 0.2 mg/L+NAA 0.01 mg/L;MS+6-BA 2 mg/L+NAA 0.2 mg/L作为增殖培养基效果最好。生根阶段的最佳培养基为1/2MS+NAA 0.1mg/L+IBA 0.1 mg/L生根效果最好,用蛭石和珍珠岩1∶1的比例移栽苗时成活率可达95%以上。     

杂交榛不同外植体的培养

对佳木斯大学抗寒鉴定圃的杂交榛进行离体培养,分别以其茎段、叶片、子叶和胚为外植体进行初代培养,结果表明：（1）茎段初代培养适宜的培养基为MS＋6-BA3．0mg／L＋NAA0．1mg／L;（2）叶片初代培养适宜的培养基为Ms＋6-BA3．0mg／L＋NAA1．0mg／L;（3）适宜诱导子叶愈伤组织的培养基为MS＋6-BA3．0mg／L＋NAA0．1mg／L＋2,4-D0．1mg／L;（4）利于胚分化成苗的培养基为MS＋KT3．0mg／L＋NAA0．1mg／L＋2,4-D0．1mg／L。     

洋丁香组织培养的研究

以植物园洋丁香茎段为试验材料,利用组织培养技术,筛选出诱导分化、继代增殖和生根的最佳培养基。结果表明:芽继代增殖培养基为:1/3MS+2,4D0.05(mg/L)+IBA2.0(mg/L)+NAA0.2(mg/L),最佳壮苗培养基为1/3MS+6-BA0.2(mg/L)+IBA1.0(mg/L)。最适合的生根培养基为MS+NAA0.2(mg/L)+IBA2.0(mg/L)+GA0.5(mg/L)。