道地药材建青黛组织培养技术研究

以建青黛顶芽为外植体,MS为基本培养基,研究不同激素组合的培养基对顶芽诱导、增殖及生根的影响。试验结果表明:最佳顶芽诱导培养基为MS+6-BA 1.0 mg/L+NAA 0.1 mg/L,最佳增殖培养基为MS+6-BA 1.0 mg/L+IBA 0.1 mg/L,最佳生根培养基为MS+6-BA0.2 mg/L+NAA 0.05 mg/L+IBA 0.05 mg/L。     

平邑甜茶与M_7离体叶片不定芽再生的研究

以苹果砧木平邑甜茶(Malus hupehensisRehd)和M7(Malus pumila Var.ParadisiacaSchneid)的组培苗叶片为材料,研究了暗培养、接种方式和植物生长调节剂对叶片不定芽再生的影响。结果表明,适合二者叶片不定芽再生的最佳暗培养时间是14d。平邑甜茶叶片以远轴面向下接触培养基再生效果好,叶片接种方式对M7叶片不定芽再生无显著影响。适合平邑甜茶叶片不定芽再生的最佳培养基是MS+6-BA2.0mg/L+IBA0.1mg/L,再生率达93.3%。适合M7叶片不定芽再生的最佳培养基是MS+6-BA4.0mg/L+IBA0.3mg/L,再生率达96.7%。适合平邑甜茶新梢伸长的最佳培养基是MS+6-BA0.3mg/L+IBA0.03mg/L+GA30.5mg/L,适合M7新梢伸长的最佳培养基是MS+6-BA0.5 mg/L+IBA0.05mg/L+GA31.0mg/L。适合平邑甜茶生根的最佳培养基为1/2MS+IBA0.1mg/L,生根率为86.7%。适合M7生根的最佳培养基是1/2MS+IBA1.0mg/L,生根率为93.3%。     

箭杆杨组织培养再生体系的建立

【目的】探讨常温下适宜箭杆杨试管苗腋芽增殖、生根的最佳培养条件。【方法】以MS培养为基本培养基,附加不同浓度的吲哚丁酸(IBA)、萘乙酸(NAA)以及6-氨苄基腺嘌呤(6-BA)组成试验培养基,对箭杆杨组织进行培养,观察其生根情况和愈伤组织诱导情况。【结果】箭杆杨脱分化最佳培养基为:MS+1.0 mg/L 6-BA+0.1mg/L IBA,该条件下的愈伤组织诱导率为90%;不定芽分化诱导培养基为:1/2MS+0.1 mg/L IBA+0.5 mg/L6-BA,该条件下的诱导分化率为67.1%;芽增殖培养基为:MS+1.0 mg/L 6-BA+0.1mg/L IBA,该条件下的增殖数为5.8;最佳生根培养基为:1/2MS+1.0 mg/L IBA,该条件下的生根率为81.3%。【结论】建立了箭杆杨组织培养再生体系,为其种质资源的试管保存奠定了基础。     

黄梁木组培快繁技术研究

对黄梁木组培快繁及规模化育苗技术进行了研究,结果表明:最适诱导培养基为MS+6-BA 1.0 mg/L+IBA0.1 mg/L+GA3 2.0 mg/L;最佳增殖培养基为MS+6-BA 1.0 mg/L+IBA 0.05 mg/L,增殖系数达3.4以上;适宜的生根培养基为MS+NAA 0.1 mg/L,15 d内生根率100%以上,平均根数为7.8条,平均根长为1.42 cm.     

运用组织培养建立藤茶快速繁殖体系的研究

以带芽的藤茶(Ampelopsis grossedentata)茎段为试验材料,研究藤茶组织培养过程中各个阶段的培养基和激素配比以及炼苗的基质配比。结果表明,藤茶组培苗的快速繁殖体系中,最佳初代培养基为MS+1.5 mg/L 6-BA+0.2 mg/L NAA+2 g/L PVP;初代茎段培养愈伤组织的最佳基质配比为MS+4.0 mg/L 6-BA+2.0 mg/L ZT+1.0 mg/L NAA;藤茶芽的最佳增殖培养基为MS+2.0 mg/L 6-BA+1.0 mg/L NAA+2.0 mg/L ZT;最佳壮苗培养基为MS+1.0 mg/L 6-BA+1.0 mg/L NAA;最佳生根培养基为NAA(0.1 mg/L)+IBA(0.5mg/L),生根率可达到86.7%;炼苗阶段最佳移栽基质为泥炭+珍珠岩(2∶1),并浇以改良霍格兰营养液,炼苗和移栽成活率可达73%。     

香茅草组织培养快速繁殖技术

以香茅草茎尖为外植体进行培养,结果表明,在MS+6-BA4.0mg/L+NAA0.1mg/L的培养基上培养1周后,诱导出腋芽;MS+6-BA3.0mg/L+NAA0.1mg/L培养基对丛生芽的增殖效果最好;生根培养基选用1/2MS+IBA1.0mg/L+NAA1.0mg/L附加活性炭0.05%为最佳,生根率达100%。     

三苞唇柱苣苔离体培养体系的建立

以三苞唇柱苣苔(Chirita tribracteata W.T.Wang)的幼嫩叶片为外植体,开展外植体消毒灭菌、叶片愈伤组织的诱导及分化、继代增殖培养、生根培养以及植株玻璃化的研究。结果表明:叶片的灭菌方法可采用乙醇浸泡10 s结合升汞浸泡12~16 s;叶片的最佳愈伤组织诱导、分化培养基为MS+6-BA 2.0 mg/L+NAA 0.1 mg/L;继代增殖培养基为MS+6-BA 1.0 mg/L+IBA 0.1~0.5 mg/L或者MS+6-BA 1.0 mg/L+NAA 0.1~0.5 mg/L;最佳生根培养基为1/2 MS+IBA 0.1~0.3 mg/L,生根率为100.00%;培养基中不添加6-BA或添加低浓度的6-BA或者添加适量活性炭均可减轻植株的玻璃化。     

添加IBA和6-BA对山桃试管苗增殖及生根的影响

研究了IBA和6-BA组合对山桃试管苗增殖及生根的影响。结果表明,在改良QL培养基中添加IBA 0.1 mg/L+6-BA 0.6 mg/L最适宜山桃试管苗的增殖生长,增殖倍数可达到3.56倍。IBA浓度为1.0 mg/L时,生根率达95.83%。     

小叶丁香的再生体系建立

以小叶丁香的带花芽的茎段为外植体进行诱导培养,结果表明,茎段作为小叶丁香组织培养的外植体是适宜的.初代最佳培养基为MS+1.0mg/L 6-BA+0.1mg/L IBA,继代培养的最佳培养基为MS+1.0mg/L 6-BA+0.1mg/L IBA,生根培养最佳培养基为1/2MS+0.1mg/L NAA.培养条件为培养基中加入3%蔗糖、8g/L琼脂,pH=6.1.培养温度为24～26℃,光照时间为12～14h/d,光照强度为2200～2500lx.     

紫椴组培快繁技术研究

为探索建立紫椴组织培养快速繁育体系,以紫椴种子为材料,探讨基本培养基、植物生长调节剂浓度及配比对紫椴组培快繁效果的影响。结果表明,增殖培养基以1/2MS培养基最适宜,添加0.05 mg/L 6-BA和0.03 mg/L IBA后,增殖系数可达13.5;MS培养基最适宜做壮苗培养基和生根培养基,最佳壮苗培养基为MS+0.1 mg/L6-BA+0.1 mg/L IBA+0.03 mg/LGA₃,平均苗高达5.15 cm;最佳生根培养基为MS+1.0 mg/L6-BA+0.05 mg/L NAA,生根率达93.3%,生根数达5.7根。     

樱桃砧木吉塞拉6号组培快繁技术研究

以樱桃砧木吉塞拉6号为试材,取一年生新梢进行组培快繁。结果表明:最佳初代培养基为MS+0.2 mg/L IBA+0.5 mg/L 6-BA;最佳增殖培养基为MS+0.1 mg/L IBA+0.3 mg/L 6-BA+0.05 mg/L TDZ,增殖系数达6.8;最佳生根培养基为1/2MS+0.5 mg/L IBA+0.5 mg/L NAA+0.5 g/L Ac(活性炭),生根率达74%。选取有5片以上有效叶的健壮试管苗移栽到1/2蛭石+1/2珍珠岩基质中,成活率达90%以上。     

细叶百合鳞片诱导与遗传转化组培体系的建立

为扩大细叶百合(Lilium pumilun)在生物技术领域的应用,本研究以细叶百合鳞片为外植体,MS培养基为基础培养基,附加不同种类和浓度的植物生长调节物质(6-BA,NAA,IAA,IBA)诱导丛生芽及再生植株,对体系中外植体消毒时间及各阶段培养基的激素配比进行了研究.结果表明:0.1％氯化汞溶液最佳灭菌时间为8 min;最佳诱导培养基为MS+ 6-BA 0.5 mg/L+ NAA 0.1 mg/L;最佳继代培养基为MS+ 6-BA 1.0 mg/L+ NAA 0.1 mg/L;最佳增殖培养基为MS +6-BA 0.1 mg/L+ NAA 0.5 mg/L;最佳生根培养基为1/2 MS+ IAA0.1 mg/L+ IBA 0.1 mg/L.     

桃砧木GF677叶片愈伤组织诱导和保存

[目的]研究桃砧木GF677(Prunus amygdalus×Prunus persica)叶片愈伤组织的诱导和保存技术。[方法]以桃砧木GF677试管苗为材料,研究激素含量、基本培养基、AgNO3、暗培养时间、碳源等因素对其叶片愈伤组织诱导和保存的影响。[结果]选取继代时间为28 d左右的试管苗幼嫩叶片,暗培养21 d后转移至光培养进行愈伤组织诱导,较佳的培养基配方为LP基本培养基+TDZ 1.0 mg/L+6-BA 0.6 mg/L+2,4-D 0.2 mg/L+AgNO30.5 mg/L,添加山梨醇20.0 g/L,琼脂6.0 g/L;选取继代时间为21 d左右的愈伤组织暗培养保存,保存较佳的培养基配方为LP基本培养基+6-BA 0.5 mg/L+2,4-D 0.5 mg/L+CH 0.2 g/L,添加蔗糖30.0 g/L,琼脂6.0 g/L。[结论]为桃砧木GF677的遗传转化和无性系变异筛选等工作奠定了基础。     

樱桃砧木吉塞拉7号茎尖快繁技术

本试验研究不同浓度激素配比对吉塞拉7号茎尖培养的影响。取春季一年生的新梢做外植体,剥取幼嫩茎尖,接种到不同配方的诱导培养基上,生长30 d左右,转移到增殖培养基上。结果表明,茎尖成活率最高的培养基是MS+6-BA 1.0 mg·L~(-1)+IBA 0.1 mg·L~(-1),成活率达90.0%;最佳增殖培养基为MS+6-BA1.0 mg·L~(-1)+IBA 0.1 mg·L~(-1)+GA_3 0.1 mg·L~(-1),增殖系数达3.9;生根率最高的培养基为1/2MS+IBA0.5 mg·L~(-1)+NAA 0.5 mg·L~(-1)+Ac 0.5 mg·L~(-1),培养30 d左右,生根率达89%,平均每株生根4.3条;最佳移栽基质是蛭石,成活率达95.7%。     

黄精根茎高效离体再生体系的建立

以黄精(Polygonatum sibiricum Delar.ex Redoute)根茎为试材,研究不同培养基组合对黄精根茎离体再生的影响。结果表明,黄精根茎最佳诱导培养基为MS+4.0 mg/L 6-BA+0.2 mg/L NAA,最佳增殖培养基为MS+2.0 mg/L 6-BA+1.0 mg/L TDZ+0.1 mg/L IBA,最佳生根培养基为1/2 MS+0.5 mg/L NAA+0.5 mg/L IBA+50 mg/L AC。     

红莓组织培养及快速繁殖技术

剪取4~5月份生长健壮且腋芽丰富的红树莓枝条,以腋芽为外植体,建立高效快速的组织培养体系,以获得大量优质的组培苗。筛选出红莓最佳诱导培养基MS+6-BA(1.0 mg/L)+NAA(0.02 mg/L)+GA3(4 mg/L),最佳快繁培养基MS+6-BA(0.5 mg/L)+NAA(0.05 mg/L)+GA3(6 mg/L),最佳生根培养基MS+6-BA(0.5 mg/L)+NAA(0.1 mg/L)。     

扁桃砧木Nemaguard和Lovell的组培快繁

试验对扁桃砧木 Nemaguard 和 Lovell 进 行 组培快繁 ,结果表明: Nemaguard 以 MS+6-BA0.5 mg/L+GA30.2 mg/L 为最佳诱导培养基,Lovell 则以 MS+6-BA2.0 mg/L+GA0.2 mg/L 为最佳诱导培养基,其诱导成活率分别为 73.3 %和 80.0 %。Nemaguard 适宜的增殖培养基为 MS+6-BA1.0mg/L+GA30.1 mg/L+LH100 mg/L,而Lovell 则为 MS+6-BA1.0 mg/L+IAA0.1 mg/L+LH 100 mg/L。经过一月的培养,其增殖倍数为 3.05 和 5.23,茎长大于1 cm的新梢率为57.0 %和55.9 %。生根诱导则以1/2 MS+IBA 0.5 mg/L配合10 d暗培养效果最好,Nemaguard 和 Lovell的生根率可达 80 %和 66.7 %。移栽成活率能达到 70 %以上。     

金边碧玉组培快繁技术研究

以金边碧玉的叶片为外植体,对其组织培养与快繁技术进行了初步研究.试验结果表明,适宜叶片直接诱导丛生芽的培养基为MS+6-BA 1.0 mg/L+NAA 0.1 mg/L,诱导出的丛生芽粗壮嫩绿,继代培养基为MS+6-BA 1.0 mg/L+NAA 0.1 mg/L和MS+6-BA 1.0 mg/L+NAA 0.2 mg/L,叶片愈伤组织诱导培养基为MS+6-BA3.0mg/L+NAA 0.5 mg/L,最佳生根培养基为1/2MS+IBA 0.8 mg/L和1/2MS+IBA 1.0 mg/L.     

漳州水仙组培快繁技术研究

以漳州水仙的鳞茎营养器官作为外植体进行组织培养,结果表明:诱导芽的最佳培养基为MS+6-BA 5.0 mg/L+NAA 0.1 mg/L,最佳继代培养基为MS+6-BA 3.0 mg/L+NAA 0.5 mg/L,最佳生根培养基为1/2 MS+NAA 0.1 mg/L+IBA 0.1 mg/L,生根率达90%以上。     

红掌组织培养再生体系建立的研究

以红掌"骄阳"幼嫩叶片为材料,筛选出红掌愈伤组织诱导、不定芽分化、生根的最佳培养基及激素配比。结果表明:红掌愈伤组织诱导的最佳培养基为改良MS+6-BA 1.0 mg/L+2.4-D0.5 mg/L,不定芽分化培养基为改良MS+6-BA 1.0 mg/L+NAA 0.2 mg/L,生根培养基为改良MS+IBA 0.6 mg/L+IBA 0.3 mg/L,生根率达到100%。