抗小鹅瘟高免血清的研制与应用

抗小鹅瘟高免血清的研制与应用张道华（湖南生物药厂，长沙４１０００７）唐启松（武冈县种鹅场）小鹅瘟是由小鹅瘟病毒引起雏鹅的一种急性或亚急性传染病。主要侵害３～２０日龄的雏鹅，发病率和死亡率都很高。目前防治小鹅瘟中使用最广泛的是小鹅瘟弱毒疫苗和抗小鹅瘟高...     

小鹅瘟高免血清的制备和临床应用

根据山羊体对小鹅瘟病毒(GPV)的应答反应,采用多次免疫,间隔采血的方法,制造山羊抗小鹅瘟高免血清.颈部皮下或肌肉注射,预防雏鹅24 800只,预防成功率达100%,对15日龄内的病雏鹅按1.0 mL/只进行注射治疗,治疗病雏鹅2 640只,治愈2 586只,治愈率为97.95%.     

猪源抗兔瘟高免血清的研制与应用

采用兔瘟脏器苗免疫接种肥育猪备猪源抗兔瘟高免血清，其血凝抑制抗体效价达１：３２０以上，临床治愈率达８０％以上。     

水牛抗小鹅瘟高兔血清的研制和应用

用小鹅病毒浓缩乳化抗原，皮内多点注射分３次免疫水牛，可获得琼扩抗体为１：６－１：６４的抗小鹅瘟高免血清，此血清具有良好的预防效果和较高疗效，在疫区注射１－５日龄雏鹅预防小鹅瘟，可提高雏鹅成活率３６．４％；治疗发病雏鹅，治愈率达８８．７％。乳化抗原以首免后血清琼扩抗体效价高低而定，抗体高加倍剂量大，低则加倍剂量小。同时测得水牛三免后１３－１６天血清琼扩抗体开始达高峰。血清达高峰后，至少可以持续１６天     

山羊抗小鹅瘟血清制造及应用

我们从1988年开始进行了鹅源和山羊抗小鹅瘟高免血清的试制。通过雏鹅血清保护率对比试验及临床应用,取得了理想的防治效果。现报告如下。一、血清的制造(一) 材料1.健康山羊6只(♀)。2.小鹅瘟种毒(GPV-CD-D)由南京农业     

山羊抗小鹅瘟血清制备和应用

我们从生产实际考虑,86年开始对用山羊制造抗小鹅瘟血清的工艺流程和免疫方法作了一系列探索和研究,即采用多次免疫、间隔采血的方法制造抗小鹅瘟血清,通过对     

小鹅瘟马源高免血清的制备及应用

采用JLDA株小鹅瘟抗原,高免马匹后经采血精制可获得滴度为1∶64～1∶128的抗小鹅瘟高免血浆。通过胃蛋白酶消化-硫酸铵盐析的工艺,得到小鹅瘟马源高免血清。按0.5 mL/羽剂量共预防雏鹅52.48万羽,按1 mL/羽～3 mL/羽剂量共治疗感染雏鹅5.66万羽,证实该抗血清效价高,对雏鹅的预防保护率为95.58%,对感染雏鹅的治愈率为92.87%,表明对小鹅瘟防治安全高效。马采血量大,成本低,同时有效地避免了同源动物间其他疫病的感染和强毒的散播,较之用鹅作为血清来源动物经济和社会效益显著。     

鸡抗小鹅瘟高免蛋黄抗体的研制和应用

现将鸡抗小鹅瘟高免蛋黄抗体的制备方法和应用效果观察报道如下: 1抗原制备 1.1小鹅瘟弱毒疫苗弱毒株由佛山兽专惠赠,由本室增殖,供免疫蛋鸡用.     

小鹅瘟的诊断和防治

１发病情况１９９６年１２月３日,某养鹅专业户饲养的５日龄“荣昌”雏鹅８００只,发生了以精神萎顿、曲头缩颈、鼻孔有稀薄分泌物、拉黄白色稀粪为特征的疾病。至１２月１０日,计有１６５只雏鹅发病,死亡１４５只,发病率为２１％,病死率８７．８％,病程在３～５天...     

犬细小病毒病免疫预防研究进展

犬细小病毒病是由犬细小病毒（Canine parvovirus,CPV）引起的一种高度接触性传染病,发病犬临床表现为严重的出血性肠炎和心肌炎综合征。本病全年均有发生,但相对集中在2月～6月份,2月龄～4月龄幼犬易感性最强。病毒主要随污染的饲料、饮水经消化道进入机体引起发病。有些病犬康复后,仍可长期通过粪便排毒,成为本病的重要隐性传染源。一旦发生CPV感染,除早期应用抗血清及对症疗法有效外,无其他特效疗法,中晚期病例多预后不良,因此,必须依靠免疫预防控制该病的发生。本病的预防办法主要是定期进行免疫接种,接种途径主要是肌肉注射。免疫预防要取得满意效果,平时就必须严格执行防疫措施,但免疫的程序与时机等因素都会影响免疫效果。文章就以上内容对犬细小病毒感染免疫预防研究进展做了综述。     

鹅细小病毒VP3亚单位疫苗的制备及其免疫效果

为了研究鹅细小病毒(GPV) VP3亚单位疫苗的免疫效果,从ZJ-04分离株基因组DNA扩增VP1和VP3基因并克隆到pMD18-T载体,测定其核苷酸序列;将VP3基因亚克隆至质粒载体pET-32a(+),重组质粒pET-VP3用于转化E.coli BL-21(DE3)感受态细胞获得重组菌BL-VP3;以VP3重组蛋白和BL-VP3重组菌制备油乳剂疫苗免疫接种种鹅,用琼脂扩散试验检测血清GPV抗体,观察母源抗体对雏鹅GPV感染的免疫保护效果.结果表明,ZJ-04株VP1基因大小为2 199 bp,编码732个氨基酸,与Gen-Bank收录的GPV毒株的核苷酸序列同源性为95.3％～99.2％,氨基酸序列同源性为97.7％～99.3％;SDS-PAGE、Western blot检测结果表明,重组VP3分子质量约80 ku,能与GPV抗体发生特异性反应;VP3包涵体和BL-VP3重组菌均能诱导种鹅产生GPV抗体,新生雏鹅可获得良好的免疫保护.     

鹅细小病毒研究进展

小鹅瘟是由鹅细小病毒引起的一种急性、亚急性烈性传染病,是目前危害养鹅业的重要传染病之一。近年来关于鹅细小病毒的研究又有了新的发展和新的观点,作者从鹅细小病毒分子生物学、检测方法、致病机理和抗原位点的定位等方面进行了阐述。     

免疫酶斑点法快速诊断小鹅瘟

小鹅瘟的实验诊断方法较多,但都存在各自的优缺点。黄牛精子能被ＧＰＶ所凝集,但该凝集属于非特异性的,难以说明问题。琼脂扩散试验,灵敏度不高且需要高效价抗血清及多倍浓缩尿囊液。免疫荧光诊断法虽快速、敏感、特异,但需要有荧光显微镜,现阶段难于常规应用。因此...     

鹅细小病毒PCR-DHPLC检测方法的建立

为建立一种敏感、自动化,高通量的检测病料中鹅细小病毒（GPV）的PCR-DHPLC检测方法,本研究首先根据GenBank上GPV标准毒株VP3基因序列设计一对引物,建立检测GPV的PCR方法,然后将PCR检测方法与DHPLC法进行有机结合,建立了GPV PCR-DHPLC检测方法。以GPV、鹅副粘病毒、鸭瘟病毒及正常番鸭胚尿囊液进行特异性试验,结果无交叉反应,表明该检测方法具有较高的特异性。对GPV阳性样品检测结果表明该方法的敏感性较高,是常规PCR电泳法的100倍,且具有较好的重复性。对临床上采集的100份疑似病料,分别应用PCR电泳法和本试验建立的PCR-DHPLC方法进行检测,结果阳性符合率为100%。表明该方法具有特异、敏感、快速、重复性好、可高通量检测等优点,可用于临床样品的大批量检测。     

通过自制PCR试剂盒确诊雏鹅细小病毒感染

通过 PCR条件选择 ,组装了可用于确诊鹅细小病毒 (goose parvovirus,GPV)感染的试剂盒。首先根据 Gen Bank中已发表的鹅细小病毒不同株的核苷酸序列 ,设计并合成了 GPV特异性简并引物 ,利用该引物确定 PCR扩增条件 ,并鉴定了扩增产物的特异性。根据上述扩增条件 ,组装 GPV诊断试剂盒。试剂盒共有 3个反应管 ,贮于 - 2 0℃ ,应用时取 1号管 ,加入煮沸的肝脏悬液上清 ,2、3号管分别为阴性和阳性对照。按固定条件扩增 ,结果显示 ,待检病料的检出率在 96 %以上。该试剂盒操作简单 ,效果稳定 ,可用于 GPV感染的确诊     

种鹅免疫小鹅瘟疫苗抗体消长规律的研究

通过应用小鹅瘟油乳剂疫苗和成鹅弱毒疫苗联合免疫种鹅(设为试验A组)并采用成鹅弱毒疫苗进行二次免疫种鹅的方法(设为试验B组)建立了种鹅小鹅瘟抗体消长规律的监测试验。试验结果表明:B组的免疫抗体效价整体高于A组免疫抗体效价,并且通过对后代雏鹅的攻毒试验表明B组保护力强于A组。     

小鹅瘟病毒的分离与鉴定

<正>小鹅瘟是由小鹅瘟病毒引起的雏鹅急性或亚急性的败血性传染病。主要侵害出壳后4～20日龄的雏鹅,特别是10日龄以内的雏鹅。主要病变特征是严重的肠炎,小肠粘膜脱落、坏死,并和渗出的纤维素性物混合在膨大的中后段肠管形成“腊