春石斛嫩茎段离体培养

嫩茎段外植体发生培养将开过花的春石斛花枝自基部剪去,不久可从基部萌发出新芽。萌发的新芽以肥水促进生长,待长至10cm左右时,将新芽自基部剪下,并剪去顶端幼嫩部分及剥去叶片与叶鞘,用洗洁精冲洗两遍后,置自来水龙头下冲洗5小时,从而获得嫩茎段外植体。在超净台上将嫩茎段进行彻底消毒,先用75%酒精溶液消毒一分钟,再用1:50浓度洁尔敏溶液消毒15分钟,最后用0.1%氯化汞溶液消毒15分钟,无菌水冲洗     

灵芝瓶景的培植

我利用500毫升医用吊瓶,将灵芝培养基装于瓶底部,高约5厘米左右,压实,在中心扎孔。将瓶口用棉塞或双层牛皮纸扎紧,然后进行高压灭菌。灭菌后待其冷却到室温,将灵芝菌种在无菌条件下接种到培养基的中心孔里。在环境温度为26～28℃的条件下进行培养,经7～10天后,培养面上全部长满菌丝体,12～15天菌丝体长满全部培养基。此时可将瓶口棉塞摘去,环境湿度要保持在90～95％。这样子实体原基发生并随之而开始分化,由白色→淡黄色→深黄色,同时长出菌柄。菌柄分支,稀奇古怪,可供观赏。经50～60天后,即可认定成熟。但因瓶内没有空气自然流动的条件,菌柄并不开伞。注入60度的粮食白酒,菌柄即停止生长,菌柄因酒浸泡变成深褐色,增加观赏价值。浸泡15～20天后,酒液呈深褐色,即可饮用,有灵芝药酒的同等作用。因笔者缺乏摄影条件,未能拍下照片。现已培养出20多瓶,菌柄形态各异。     

花叶秋海棠组培成功

花叶海棠通常则多采用叶插繁殖,叶片自扦插约需100天左右,每一个叶片一般仅可得苗1—6株,因而繁殖数不高。 1983年我们采用叶片离体组织培养。取植株上一年生左右的叶片,剪下后用自来水冲洗干净,用75％酒精进行灭菌,再在无菌条件下用无菌水冲洗5—6次,然后将叶片切成长0.5—1厘米的方形小块,放在培养瓶中进行培养。基本培养基为改良MS1附加BA(6-苄基嘌呤)1AA(吲哚乙酸)。培养基的PH在灭菌前用1NN20H调至6,把培养基分装在三角瓶中,在15磅/平方时压下灭菌20分钟,培养温度为24—26℃,每天照光10—12小时,光照强     

安祖花品种特伦萨外植体消毒技术研究

本研究以安祖花品种特伦萨为研究对象,分别对外植体取材部位、消毒剂种类及消毒时间等影响安祖花外植体接种效果的主要因素进行初步研究,以筛选出安祖花外植体的有效消毒方式。试验结果表明,选取安祖花中叶(展开2～3周的叶片)为外植体,用0.1%氯化汞消毒5～10 min,外植体存活率最高可达71.1%～72.2%,接种效果最佳。     

露薇花‘爱丽丝’系列外植体诱导及增殖试验分析

以露薇花种子无菌播种苗和穴盘播种苗为试验材料,比较两种条件下种子发芽情况,并将两种幼苗作为外植体,移入初代培养基内进行诱导培养和继代增殖。运用主成分分析法和相关性分析法,并通过建立拟合生长曲线,量化评价不同播种方式幼苗离体培养下生长情况。结果表明,穴盘播种发芽率较无菌播种发芽率高,幼苗根系发达,但苗离体培养污染率较高;离体无菌培养更有利于露薇花植株生长发育的进行,可将穴盘发芽幼苗灭菌后移植进培养基培养;继代培养穴盘播种和无菌播种苗之间无差异;继代培养3次,单瓶接种两株植株,植株长势最好,萌芽数,萌芽均高,增殖倍数高。通过本次实验,为露薇花高效生产繁殖提供理论依据,从而为西北地区新优特异花卉的引进,提供可行的途径方法。     

非洲菊的组培快繁和移栽

一、组培快繁1、材料花托、茎尖。2、培养条件诱导芽培养基:(1)MS 6-BA2.0 NAA 0.2;(2)1/2MS 6-BA0.1;诱导根培养基:(3)MS IBA2.0。培养温度25～27℃,每天光照10小时,光照强度约为2000Lx。3、生长与分化初级培养将外植体用自来水和蒸馏水冲洗干净,剪成1.0厘米长的小段,在超净工作台上用0.1%HgCl2水溶液对外植体表面消毒6～8分钟,再用无菌水冲洗3～4次,接种在培养基(1)上。继代培养培养6～7周后,愈伤组织上陆续有小芽分化,此时将带小芽的愈伤组织切成2～4个小块,分别移到新鲜培养基(1)上。培养一段时间后,又有小芽陆续分化。培     

不同基质对日香桂插条生根的影响

外植体的处理春季,剪盆栽微型月季刚抽生的顶芽及上部1～2节的带芽茎段,剪去叶片,用洗洁精稀释液漂洗数次,在自来水下冲洗2小时,在超净工作台上用70%的酒精溶液浸泡10秒,无菌水冲洗2次,再用0.1%的升汞消毒处理3～6分钟,无菌水冲洗5次,用无菌滤纸吸干水分备用。诱导分化将处理好的外植体剪去受伤面,剪成1～2厘米的单芽茎段,接入芽诱导培养基 Ms BA0.1mg/L IAA0.1mg/L 中。2周后外植体芽子开始萌发,4周新芽可长至2～3厘米。取单芽转接到芽增殖培养基 Ms BA0.3mg/L IAA0.1mg/L,3周可形成芽丛,     

大岩桐的组培育苗

大岩桐,叶片浓绿厚实,花朵大,花期长,是优秀的温室盆栽花卉之一。通过组织培养,大岩桐可以实现工厂化生产。组培快繁要点1.外植体的处理:剪取新生叶片,用洗衣粉漂洗数次,在自来水下冲洗1～2小时,置超净工作台下用70%的酒精溶液浸10秒,再用无菌水冲洗数次,并用0.1%的升汞消毒处理6～8分钟,无菌水冲洗3～5次,最后用消毒滤纸吸干水分。2.诱导分化:将叶片切成1平方厘米的小块,接入培养基 MS BA2.0 NAA0.2中,2周后外植体膨大转绿,4周后诱导分化出白色不定芽,白色不定芽逐渐成长变绿。待不定芽长至1厘米时,切取转接培养基 MS BA0.5中,1～2周时基部腋芽萌动,形成芽丛,4周可继代增殖一次,繁殖系数可达6～8。切分1.5～2厘米高的无根苗转接人培养基1/2MS 中,3～4周基部形成小球茎,并长出4～5条须根。     

组培石斛兰

生长与分化情况1、无菌材料的获得选择生长健壮的3～6厘米长的新芽作外植体,用消毒的手术刀将芽从母体上切下,剥去最外层叶鞘,用洗涤灵擦洗一次,用水冲洗干净,约30分钟,晾干或用滤纸吸干;再用75%的酒精擦洗一次,用自来水冲洗干净,约30分钟,晾干或用滤纸吸干,放入超净工作台。     

藤本矮牵牛的组培快繁

藤本矮牵牛是近年引进的矮牵牛新品种。喜阳光,不耐寒,生长适温为14～25℃,枝蔓下垂或平铺生长。花冠直径达8～10厘米,有红、紫、白、粉或间色。生长季节可开花不断。要大量繁殖这样的新品种,最好的方法就是组培。我们在这方面进行了一些尝试,获得了一定的成功。接种材料是从荷兰引起的5个藤本矮牵牛优良品种,取带腋芽的茎段和花蕾作外植体。在无菌操作台上,先用75％的酒精消毒30秒,再用含有几滴吐温的     

草珊瑚的无菌播种和丛生芽诱导研究

以去除果肉的草珊瑚种子为试验材料,采用无菌播种方式培育出种子苗,并以此为组织培养的外植体来源,诱导出丛生芽,为离体再生体系的建立奠定基础.结果表明:种子的最佳消毒方法为先用75％酒精消毒30 s,无菌水冲洗3～4次,再用0.1％升汞消毒3 min,无菌水冲洗3～4次;最佳播种培养基为1/4 MS+NAA 0.05 mg/L,温度25℃,每天光照12 h,种子发芽率可达68.89％;切取种子苗的顶芽接种于MS+6-BA 4.0 mg/L培养基上可诱导出丛生芽,且丛生芽易于增殖和生根.     

甜面酱制作方法

1.制面糕曲将面粉加入占面粉重量28%～30%的水中充分拌和,做成细条状,放在蒸笼蒸熟,出锅冷却到40℃左右,接入0.3%原料重量的曲种,拌匀,装入竹匾或曲盘培养。接种后4～5小时内保持30～32℃,此后随着菌丝的生长繁殖,面糕曲温度可升至35℃。一般培养22～26小时即可。好面糕曲的标准是菌丝发育旺盛,但孢子不太多。     

富贵菜离体快繁及再生体系的建立

本研究以富贵菜种苗为实验材料,以富贵菜叶片为外植体,利用植物组织培养技术建立了富贵菜离体快繁体系,对富贵菜再生作了初步研究。结果表明:用4%Na Cl O处理外植体3 min可取得最佳消毒效果,降低外植体的污染率,提高植株成活率和生根率;富贵菜无菌苗在MS培养基上有利于茎叶的生长,在1/2MS培养基上有利于根部的生长;NAA诱导富贵菜生根的最适浓度应在0.05 mg/L左右;富贵菜无菌苗经移栽后,成活率可达到90%左右。富贵菜的叶片接种在MS基本培养基+2.0 mg/L 6-BA+0.5 mg/L NAA中获得愈伤组织后,再接种在MS基本培养基+2.0 mg/L 6-BA+0.2 mg/L NAA+0.4 mg/L KT中获得再生芽。     

甘蓝型黄籽油菜子叶离体培养初报

以甘蓝型油菜黄籽双单倍体品系04K91为供试材料,以无菌苗子叶为离体培养外植体,考察了苗龄（7d、10d、13d）与外植体部位及大小（带柄子叶、1/4子叶片、1/8子叶片和子叶柄切段）对芽再生频率的影响。方差分析结果表明,苗龄对芽再生频率有显著影响,外植体对芽再生频率有极显著影响,而苗龄×外植体对芽再生频率影响不显著。多重比较结果表明,以7d苗龄无菌苗的带柄子叶或1/4子叶片为外植体较好,出芽率较高,达90%以上。     

黄花马铃苣苔不定芽高频再生研究

以无菌植株叶片作为外植体,从接入方式、培养基pH值、MS无机盐浓度、糖浓度、植物激素种类及配比等方面研究了黄花马铃苣苔叶片不定芽再生的影响因素.结果表明,黄花马铃苣苔叶片再生芽的最佳诱导培养基为MS+ 6-BA 0.5mg/L+NAA 0.1 mg/L+蔗糖30 g/L,灭菌前pH值为6.5,在此培养基上,叶面朝上接种的叶片经过50 d的培养,可获得100％的再生率和平均32.33个不定芽,     

石斛茎段在简易培养基上快速繁殖

石斛兰用分株、扦插的常规繁殖方法,繁殖系数低,不能满足大规模生产用苗。而采用组织培养则可以提高其繁殖系数,缩短培养时间,短期内获得大量种苗。国内外已有关于石斛兰组培育苗报道,但再生过程总的来说比较复杂,在培养基的应用上,都是选用营养成分齐全的培养基,且要经过固体和液体培养,先通过叶尖或茎尖诱导出原球体,再从原球体上诱导成苗。整个过程时间长,且因为外植体特别小,接种不易成功。本试验以茎段为外植体,以简易培养基培养,在适宜的条件下,诱导出腋芽,再进行增繁、生根培养,不仅缩短了时间,也能保持品种的优良性状。     

凉都红香椿外植体快繁体系的研究

以贵州凉都红香椿成熟叶片和无菌苗叶片为材料,筛选可用于诱导叶片再生形成植株的愈伤组织诱导和分化的培养基分别为:MS+0.15 mg/L TDZ+0.3 mg/L NAA+1.0mg/L KT+3%蔗糖+7g/L琼脂和MS+0.1mg/L 6-BA+0.5mg/L KT+0.1mg/L NAA+3%蔗糖+7g/L琼脂;同时筛选到以成熟香椿枝条为材料诱导腋芽生长的最适培养基为:MS+0.2mg/L GA3+0.02mg/L+3%蔗糖+7g/L琼脂。另外,研究还确定了香椿成熟叶片和枝条外植体的最佳消毒条件为:75%酒精处理45s,0.1%升汞灭菌6～8min后,用无菌水冲洗4～6次可降低外植体的污染率。     

茶树腋芽初代培养过程中外植体褐化的控制措施研究

有效控制外植体褐变是茶树组织培养的关键技术。本文研究了外植体取材季节、切取方法、培养温度和不同抗氧化剂对外植体褐变率的影响。结果表明:春季材料的外植体污染率、褐变率比秋季的低,腋芽萌发率比秋季的高;外植体留部分叶柄、接种前用2.0 g?L-1 PVP溶液浸泡30 min、接种后在8℃避光培养16h可以有效降低外植体褐化率。春季材料、合适的外植体类型、培养温度及抗氧化剂的良好组合,有助于提高茶树腋芽初代培养的成功率。     

轮叶党参不同外植体愈伤诱导比较

分别以轮叶党参叶片、叶柄、茎段和种子为外植体诱导愈伤组织。结果表明,不同外植体均可诱导出愈伤组织,但其在出愈率和愈伤生长方面差异较大。其中叶片诱导愈伤组织效果最好:愈伤诱导率达到100%,愈伤生长最快,平均每天可增加24.5mg,且诱导的愈伤质地紧密,不易破碎。不同外植体所产生的愈伤组织均可分化再生,其中以种子和叶片为外植体产生的愈伤再分化率较好,分别为100%和87.5%。综合各方面得出,叶片是诱导愈伤组织的最佳外植体。     

花生褐斑病病菌的分离培养及致病性研究

试验采用组织分离法分离花生褐斑病病菌,研究了病菌的培养特性,采用离体叶片接种和整株接种鉴定法对分离病菌的致病性进行了检测,并对感病植株的叶片进行病菌再分离鉴定。结果表明:菌丝生长和产孢适宜温度为15￣30℃,最适为25℃,低于5℃或高于40℃病菌停止生长和产孢;近紫外照射能显著提高病菌的产孢量。两种接种方法均能使叶片和植株感病,由接种感病叶片再分离的病菌符合花生褐斑病的病原特点。因此,本研究获得了致病力强的花生褐斑病致病菌。