铁线莲“茱莉亚”的组织培养研究

以铁线莲茱莉亚的茎段和茎节为外植体,在MS基本培养基中添加2.0、3.0mg/L6-BA,0.05、0.1mg/LNAA和1.5、2.0mg/LKT,对其进行了初代诱导和继代增殖培养。结果表明:粗嫩茎的成活率远高于细嫩茎,可达到96.3%;MS+2.0mg/L6-BA+0.05mg/LNAA+1.0mg/LKT对茱莉亚茎段的诱导优于茎节,达到64.4%;MS+3.0mg/L6-BA+0.1mg/LNAA+1.5mg/LKT适合愈伤组织的增殖,茎段和茎节的愈伤增殖率均在90%以上。     

杜仲组织培养的研究

以杜仲无菌苗的幼茎为外植体接种于MS培养基上,并附加相应的植物生长调节剂进行杜仲愈伤组织的诱导和增殖的研究;另外,对不同培养基、光照条件、pH值等理化因子对杜仲愈伤组织增殖的影响进行了研究。结果表明,MS培养基(0．8％琼脂 3％蔗糖)附加2．0 mg／L NAA 0．5 mg／L6-BA有利于杜仲愈伤组织的诱导。B5培养基(0．8％琼脂 3％蔗糖)附加1．0mg／LNAA 1．5mg／L6-BA,并控制pH值为6．5,12 h／d光照有利于愈伤组织的增殖。     

东北铁线莲最佳播种期和采收期的研究

通过对东北铁线莲出苗率、株高、根长、根粗和齐墩果酸含量的研究,确定其最佳播种期和采收期.研究结果表明:本溪地区东北铁线莲最佳播种期为4月20～30日,最佳采收期为8～9月,年限为4～5 a生.     

刺五加组织培养及快速繁殖的研究

本试验以刺五加的茎尖为试验材料,将叶片接种于含有不同种类和浓度激素的培养基上,对其进行不定芽的诱导、芽的继代增殖和生根培养。经直观分析、极差和方差的分析得出结论：刺五加不定芽诱导培养基添加激素种类及其浓度的最佳水平组合为：6-BA1.5 mg/L＋NAA0.15 mg/L＋IBA0.1mg/L,其平均诱导率可达87.5...     

独花兰组织培养研究

指出了独花兰是我国濒危植物,独花兰组织培养技术的研究不但可以保护其野生资源,同时为其开发利用提供可能,以独花兰花梗腋芽为外植体,通过试验筛选出了组织培养的配方,研究表明：芽诱导培养基为MS＋6-BA3．0mg/L＋10％椰乳,增殖培养基为MS＋6-BA3．0mg/L＋ NAA0．5mg/L＋10％椰乳,生根培养基1/2MS＋ NAA1．0mg/L＋BA0．2mg/L＋10％椰乳,6-BA3．0mg/L＋ NAA0．5mg/MS＋6-BA3．0mg/L＋10％椰乳。     

铁线莲观赏类型与应用

分析了铁线莲的形态特征,对目前国际通用的铁线莲观赏类型与应用进行了综述,为我国铁线莲引种和铁线莲应用提供参考。     

东北铁线莲高效繁育技术

该文系统阐述了东北铁线莲育苗和栽植成药的技术要点,包括圃地的选择和管理技术、种苗的优育技术、采种苗管理技术、人工移栽和培植成药技术、成药材的采收及初加工技术,为东北铁线莲培育提出了一套切实可行的技术措施和培育模式,比野外资源增产3～4倍,具有可观的经济效益、生态效益和社会效益。     

铁线莲杂交与花期观赏

铁线莲花型、花色丰富多样,花朵美丽繁茂,花期长,观赏价值高。为培育优良特异种质,探索高效便捷的铁线莲人工杂交技术,从引进的20个园艺品种中选取9个作为杂交亲本,结果表明:23个杂交组合均结实,共获得304个果实,平均结实率为90.21%,最高为100%,最低仅为58.33%,杂交亲本选配对提高育种效率具有重要意义。引种的20个园艺品种花色、花型各异,分属早花大花型、晚花大花型、佛罗里达型、德克萨斯型4个类型,充分体现了铁线莲花的丰富多彩。     

文冠果组织培养技术初步研究

以文冠果腋芽茎段为外植体,MS培养基为基本培养基,采用不同激素组合对其进行离体培养试验,结果表明:6-BA1.0·mg·L-1+NAA0.5·mg·L-1的激素组合适宜诱导腋芽和分化苗增殖培养。生根培养基以1/2MS培养基添加不同浓度的IBA,经30天生根培养,分化苗基部未见生根,生根培养试验有待于进一步研究。     

夏蜡梅组织培养试验初报

以夏蜡梅茎段为外植体，进行夏蜡梅组培试验，结果表明：外植体茎段的最佳消毒方式是先用70％酒精消毒10—15s，再用0．1％HgCl溶液浸泡3—5min；继代增殖培养的最佳培养基为MS＋6-BA2．0mg／L＋NAA0．1mg／L＋蔗糖30g/L，增殖系数4．03，茎芽生长粗壮；最佳生根培养基为I／2MS＋IBA0．4mg/L。     

绿巨人组织培养育苗技术的研究

以MS作为基本培养基,离体培养绿巨人Spathiphyllum kochii的幼叶。结果表明:BA为1.0mg·L~(-1),NAA为0.5mg·L~(-1)的组合时诱导效率最高,诱导频率可达到100%。组培苗在大量元素减半并附加0.5mg·L~(-1)NAA的1/2MS培养基上诱导生根最为适宜,生根率达100%。     

石蒜组培繁殖技术的研究

以石蒜的鳞茎为材料，采用不同的激素配对离体小鳞茎的分化和增殖效果进行了试验研究，结果表明，添加30g/l蔗糖。0.7%琼脂的MS BA（3mg/l) NAA(3mg/l)培养基对小鳞茎的分化效果最佳，而BA（3mg/l) NAA（1mg/l)的激素配比更有利于小鳞茎的增殖，试验中发现，蔗糖的浓度对小鳞茎的增殖与生长影响显著，以60g/l的浓度为最佳，将组织培养获得的小鳞茎切分成块后培养，可获得更多的小鳞茎，BA（0.5-1) NAA(0.5)的激素配比最有利于鳞茎切块增殖；当蔗糖浓度为40g/l时，鳞茎切块结成鳞茎的平均直径达到最大。     

溪荪组织培养技术的研究

以溪荪为试验材料,研究了消毒时间、外植体种类对溪荪组织培养的影响,筛选出了适宜的初代培养基、增殖培养基和生根培养基。试验结果表明:适宜的外植体为带芽根状茎,以1g/L的HgCl2消毒8min效果最好。适宜的初代培养基为MS+BA1.0mg/L+NAA0.2mg/L,诱导成苗率达88.57%。适宜的增殖培养基为MS+BA2.0mg/L+NAA0.2mg/L,增殖系数为4.72。适宜的生根培养基为MS+BA0.1mg/L+NAA0.5mg/L,平均每株生根数量为8.9条,平均根长为2.5cm,平均根粗为1.0mm。     

窿缘桉组织培养技术研究

以28年生窿缘桉优株萌芽条的嫩茎为外植体,对窿缘桉进行了组培试验。结果表明,MS+6-BA 0.5mg.L-1对外植体始芽诱导效果较好,诱导率为72%,且丛生芽生长健壮,无玻璃化现象;在改良MS+6-BA1.5 mg.L-1+IBA 0.5 mg.L-1上继代培养,芽增殖系数3.9;单芽在改良生根培养基1/2MS+IAA 1.5 mg.L-1+NAA 1.0 mg.L-1中的生根率最好,达86%。     

毛竹种子“以芽繁芽”组培快繁初步研究

以毛竹种子为外植体,通过“以芽繁芽”方式找到了较好的外植体消毒技术、增殖培养基、生根培养基和炼苗移栽技术等,初步建立了毛竹种胚外植体“以芽繁芽”组培快繁体系。其中最佳消毒时间为10％次氯酸钠溶液0．1％升汞各20min,消毒成功率可达37％;最佳增殖培养基为MS＋TDZ0．5mg／L＋KT2．0mg／L,增殖4-5代则衰退;生根培养基以1／2MS＋IBA1．0mg／L＋KT0．5mg／L＋AC0．1g／L效果较好;炼苗移植成活率可达69％,可应用生产。     

油樟组织培养技术研究

以当年生油樟枝条为研究对象,探索了消毒剂种类、浓度及其作用时间、MS培养基、6-BA、NAA、IBA等5种因素对油樟茎段组织培养的影响,分析筛选出了一套能够产出具有优良素质油樟种苗的组织培养技术。结果表明:油樟茎段经10%84处理15min或15%84处理10 min两种方法进行消毒均能获得污染率<15%,且成活率>70%的无菌外植体;适合不定芽诱导的培养基为:蔗糖30 g·L^-1+卡拉胶6 g·L^-1+MS+6-BA 1.0 mg·L^-1+IBA 0.1 mg·L^-1;适合不定芽增殖继代的培养基:蔗糖30 g·L^-1+卡拉胶6 g·L^-1+MS+6-BA 1.0 mg·L^-1+NAA 0.10 mg·L^-1+IBA 0.2 mg·L^-1;生根培养基:蔗糖15 g·L^-1+卡拉胶6 g·L^-1+1/2MS+IBA 1.5 mg·L^-1+NAA 1.0 mg·L^-1。     

墨兰离体快繁研究

采用墨兰的茎尖和芽为外植体,研究墨兰的组织培养要点。通过对墨兰组织培养中外植体的选择、芽的诱导、继代增殖、壮苗培养、生根诱导和移植进行研究,运用正交试验筛选出芽快速生芽的最佳培养基为:MS+6 BA4.0mg·L-1+NAA1.0mg·L-1+琼脂8g·L-1+蔗糖30g·L-1,生根的最佳培养基为:1/2MS+NAA3.0mg·L-1。分析比较出芽长为1.0cm,叶长为1.5cm,叶数为2～3条的兰花苗有利于生根。     

4个台湾青枣品种的组培技术研究

以种植于大棚内的4个台湾青枣品种2年生嫁接苗嫩梢作外植体,进行了外植体表面灭菌,在培养基中添加不同浓度6-BA、IBA、KT、NAA激素的启动、分化、生根培养的组培技术研究。结果表明:台湾青枣嫩梢外植体表灭菌,用0.1%HgC l2消毒液二次灭菌的效果为好,其组培适宜的外植体为一年生健壮枝条的茎尖和带腋芽的茎段,4月份为最佳的采集时间。台湾青枣4个品种(五千种、黄冠、高朗一号、蜜枣)最适的启动培养基均为MS 6-BA1.0 mg/L IBA0.1 mg/L。分化培养基则存在显著差异,不同品种拟选用不同的培养基;台湾青枣普遍存在组培苗生根困难的问题,其"五千种"组培的适宜生根培养基为:1/2MS IBA0.2 mg/L NAA0.4 mg/L。