双瓣茉莉离体微繁技术

以双瓣茉莉带腋芽的茎段为外植体,在附加不同浓度TDZ、6 - BA、IBA、NAA的WPM培养基、MS培养基上进行离体培养,建立起双瓣茉莉组织培养快速繁殖的技术体系.适宜的腋芽诱导培养基为WPM+6-BA 0.5mg/L+IBA 0.5 mg/L;芽的继代增殖培养基为WPM+6- BA 2.0 mg/L+ IBA 0.1 mg/L;成苗培养基为WPM +6-BA 0.1或0.2 mg/L+ IBA 0.2 mg/L;生根培养基以蛭石代替琼脂,附加1.0 mg/L的NAA.     

红果萝芙木植物组织培养及快速繁殖

以红果萝芙木茎段为外植体,研究其再生条件。结果表明:丛生芽诱导培养基为MS+1.0 mg/L 6-BA+0.05 mg/L IBA;继代增殖、壮苗培养基分别为MS+0.3~0.5 mg/L 6-BA+0.02 mg/L IBA、MS+0.1~0.2 mg/L6-BA+0.01 mg/L IBA;根分化的最适培养基为1/2MS+0.5 mg/L NAA+0.2 mg/L IBA。     

神香草组织培养与快速繁殖技术

以神香草幼嫩茎段为外植体,建立神香草的组织培养快速繁殖技术体系,结果表明:最适合神香草腋芽诱导的培养基为MS+6-BA 1.0 mg/L+NAA 0.05 mg/L,最适合分化的培养基为MS+6-BA 0.8 mg/L+IAA 1.5 mg/L+NAA 0.05 mg/L,最适合生根的培养基为1/2MS+IBA 0.2 mg/L+NAA 0.01 mg/L。     

南京椴组织培养快繁体系的建立

以南京椴带腋芽幼嫩茎段为外植体,研究南京椴组织培养中外植体选择、芽的诱导、继代增殖和生根诱导技术.结果表明,南京椴的最适外植体来自一年生种子苗.运用正交试验筛选出南京椴腋芽诱导的培养基为MS+6-BA 0.2 mg/L+KT 0.05 mg/L+IBA 0.02 mg/L+GA3 0.1 mg/L;继代培养基为:MS+6-BA 0.3 mg/L+IBA 0.02 mg/L+GA3 0.3 mg/L;生根培养基为MS+6-BA 0.05 mg/L+IBA 1.0 mg/L.     

澳洲坚果不定芽诱导及生根培养研究

以澳洲坚果品种‘H2’幼苗的幼嫩茎段为外植体材料,分别采用WPM、MS、1/2MS培养基,分析添加不同植物生长调节剂及其配比对腋芽启动、增殖及生根的影响。结果表明:适合茎段腋芽启动的培养基为WPM+6-BA 2.0 mg/L+IBA 1.0 mg/L+AC 200 mg/L,诱导系数为3.51,腋芽萌发后生长健壮;最佳增殖培养基为MS+6-BA 2.0 mg/L+KT 0.5 mg/L,增殖系数达3.49;组培苗诱导生根培养基为1/2MS+6-BA 0.2 mg/L+IBA 0.5 mg/L+ABA 0.5 mg/L+AC 200 mg/L,生根率为42.2%。     

金叶大叶黄杨离体培养技术研究

为了建立稳定的新品种金叶大叶黄杨离体培养再生体系,选用金叶大叶黄杨带腋芽茎段作为外植体进行了离体培养试验.结果表明:适宜的启动培养基为MS+NAA 0.1 mg/L+6-BA 0.5 mg/L+IBA 0.05 mg/L,继代增殖培养基为MS+NAA 0.1 mg/L+6-BA 0.5 mg/L,生根培养以1/2MS+NAA 0.5 mg/L+IBA 1.0 mg/L最好,在泥炭土∶珍珠岩=1∶3基质中移栽成活率为92％.     

香樟涌金的组织培养和植株再生

[目的]探讨香樟涌金茎段组培快速繁殖方法,为工厂化生产香樟涌金组培苗提供技术支持.[方法]以香樟涌金带腋芽茎段(长1.0～1.5 cm)为外植体,进行腋芽诱导、丛生芽增殖及植株再生研究.[结果]香樟涌金腋芽在诱导培养基MS+6-BA l.0 mg/L+IBA 0.02 mg/L中萌发率达100.0％,并能正常伸长展叶;在MS+6-BA 3.0 mg/L+IAA 0.05mg/L培养基中腋芽能正常生长并增殖,平均有效芽数6.5个;在1/2MS+IBA 0.05 mg/L+NAA 0.03 mg/L生根培养基中培养30 d后,有87.6％的丛生芽生根,移栽成活率达90.0％.[结论]MS+6-BA l.0 mg/L+IBA 0.02 mg/L、MS+6-BA 3.0mg/L+IAA 0.05 mg/L、1/2MS+IBA 0.05 mg/L+NAA 0.03 mg/L可分别作为香樟涌金茎段腋芽最佳的诱导培养基、适宜的继代与增殖培养基和相对适合的生根培养基.     

黄芩茎段腋芽诱导与植株再生试验

以黄芩茎段为外植体,在附加不同植物激素组合的培养基中对腋芽的诱导和再生植株进行试验研究。结果表明：MS＋6-BA1.5mg/L＋IBA 0.2mg/L培养基有利于促进腋芽萌发和生长;最有效的增殖培养基为MS＋6-BA 1.0mg/L＋IBA 0.5mg/L,幼芽的增殖系数高达11.9;最有效的生根培养基为1/2 MS＋IBA 0.5mg/L,生根率可达90%。     

观赏凤梨再生体系的建立及优化*

 以5个品种（系）观赏凤梨的腋芽为外植体,研究了不同基因型、激素配比和苗龄对芽分化的影响。采用L9(34)正交试验分别针对TDZ,6-BA,NAA,IBA,蔗糖、大量元素及椰乳（CW）等因素进行优化,筛选出最佳的增殖培养基和生根培养基。结果表明：芽分化的最佳培养基为MS+TDZ 1.5mg/L +6-BA 0.5mg/L。在此分化培养基上,紫星和红星的芽分化频率较高,达76.8%,70.6%。黄星、火炬和红剑芽分化频率较低,分别为44.2%,27.4%和 24.9%。7d苗龄的腋芽外植体最适于再分化。最佳增殖培养基为MS + TDZ 0.5mg/L + 6-BA 1.0mg/L +NAA 0.2mg/L+蔗糖40g/L,其增殖系数达7.31。最佳的生根培养基为1/2MS + NAA 0.5 mg/L + IBA 1.0mg/L +CW 20mL/L,生根率达60%以上     

金雀花的茎段培养及繁殖试验初报

以金雀花带腋芽的嫩茎段为外植体进行试管培养,结果表明,外植体在改良诱导培养基MS 6-BA 2.0 mg/L NAA 0.2 mg/L中经35～40天腋芽伸长形成嫩枝条,嫩茎段切下转至改良MS 6-BA 0.5 mg/L NAA 0.02 mg/L中25天腋芽伸长,以4～5倍速度增殖,将3.0 cm高的茎段切下带2～3个节在改良生根培养基1/2MS IBA 0.3 mg/L NAA0.5 mg/L中35天生根率达90%.     

加工番茄遗传转化再生体系的建立

加工番茄种子出芽后7~8 d,子叶剪成约0.2~0.4 cm,0.3~0.5 cm的小块,以MS B5为基本培养基,附加IAA0.2 mg/L分别与0.5,1.0,1.5,2.0,2.5 mg/L的6-BA/ZT/TDZ组合;6-BA2.0 mg/L分别与0.0,0.05,0.1,0.2,0.5,1.0 mg/L的IAA/IBA/NAA组合。经诱芽比较,在不同浓度6-BA/ZT/TDZ与0.2mg/LIAA组合中,出芽率最高的培养基为MS ZT1.0 mg/L IAA0.2 mg/L和MS TDZ2.0 mg/L IAA0.2 mg/L。在不同浓度的IAA/IBA/NAA与6-BA2.0 mg/L组合中,IAA明显优于NAA和IBA,筛选出MS 2.0 mg/L6-BA 1.0 mg/LIAA为最佳生芽培养基。以1/2MS添加NAA//BA0.0,0.1,0.2,0.5,1.0 mg/L进行生根比较,再生芽在MS 0.5 mg/L IBA生根培养基上生根最好,并发育成完整的小植株。     

菊花2个品种高效再生体系的建立

以地被菊花2个品种‘铺地金’和‘北林红’的叶片为外植体,以MS为基本培养基,以不同浓度配比的6-BA,NAA为生长调节物质进行离体培养,直接分化出不定芽获得再生植株.试验表明:‘铺地金’叶片外植体再生的最适培养基为MS 6-BA 2.0 mg/L NAA 1.0 mg/L,再生率高达96%,其叶柄在此培养基上的再生率为90%;‘北林红’再生的最适宜培养基为MS 6-BA 1 mg/L NAA 0.5 mg/L,再生率为96%,但其茎段和叶柄在此培养基上不能高效再生.‘铺地金’腋芽增殖的最佳培养基为MS 6-BA 0.5 mg/L NAA 0.01 mg/L,每腋芽外植体平均增殖不定芽数达到5.5个.‘北林红’腋芽增殖的最佳培养基为MS 6-BA 0.5 mg/L NAA 0.05mg/L和MS 6-BA 0.5mg/L NAA 0.01mg/L,腋芽外植体平均增殖不定芽数达到6.3个和5.6个,二者之间的差异不显著.     

红花白千层茎段离体培养研究

【目的】对红花白千层进行离体培养,为红花白千层的工厂化育苗提供技术支持。【方法】以红花白千层茎段为外植体,探讨不同激素组合对不定芽诱导、丛生芽增殖、生根诱导的影响。【结果】带茎段的萌发腋芽进行增殖培养,可直接诱导形成不定芽,并可形成丛生芽。在MS培养基中添加6．BA0．1～2．0mg／L＋NAA0．01mg／L和6．BA0．1-1．0mg／L＋IBA0．01mg／L组合,芽增殖系数均呈先升高后降低的趋势;培养基MS＋6．BA0．5mg／L＋IBA0．01mg／L最适宜芽增殖,增殖系数达2．2倍。在1／2MS培养基中添加0．1-0．5mg／L的NAA或IBA后,芽苗生根率明显提高,分别为100．0％和56．0％-90．0％,平均生根数为12．6～14．8和3．1-4．8条,以NAA的生根效果明显优于IBA。适宜的生根培养基为1／2MS＋NAA0．1～0.3mg／L。在培养基中添加300mg／L活性炭均不利于芽增殖和生根诱导。以泥炭为栽培基质,采用常规管理的试管苗移植成活率可达99．0％。【结论】茎段离体培养是红花白千层快速繁殖的有效途径。     

山新杨组织培养快繁技术研究

山新杨冬季枝条经FC处理，选择萌发新枝的茎段和叶片为接种外植体；诱导茎段产生腋芽的培养基为1/2MS+6-BA0.2~0.5mg/L+NAA0~0.5mg/L，诱导叶片产生不定芽的培养基为1/2MS或MS+6-BA0.5mg/L+NAA0.5mg/L；丛生芽快繁培养基MS+6-BA0.3mg/L+NAA0.3mg/L，每20天继代一次，繁殖倍数20左右；生根培养基为1/2MS或MS，附加0.1~0.5mg/L的多效唑，对生根有促进作用。     

频繁开花高产小桐子组织培养的初步研究

为了奠定频繁开花型高产小桐子的快繁及转基因基础,通过对小桐子茎段腋芽培养、叶片和叶柄愈伤诱导及不定芽分化的不同激素组合培养进行研究。结果表明：适合该高产品种的茎段培养的最佳培养基为MS＋6-BA0．5mg／L＋IBA0．1mg／L．叶片愈伤诱导及不定芽分化培养基为Ms＋6-BA2．5mg／L＋IBA0．5mg／L．叶柄愈伤诱导及不定芽分化培养基为MS＋6-BA1．0mg／L＋IBA0．2mg／L．生根培养以1／2MS＋IBA0．5mg／L＋AC0．1％较为适宜。引起小桐子组培苗玻璃化现象的主要原因之一是BA浓度过高：在不定芽的分化培养中．愈伤过多会严重影响不定芽的数量及质量。     

杉木优良无性系组培技术体系的建立

[目的]建立杉木(Cunninghamia lanceolata)优良无性系组培快繁技术体系,为杉木规模化育苗提供技术支持.[方法]以桂林市全州县15年生优良杉木单株基部或根部萌芽条的茎尖为外植体,筛选最佳HgCl2浸泡灭菌时间;以1/2MS为基本培养基添加不同激素组合进行芽的诱导和增殖,以1/4MS为基本培养基添加不同生长素或生长素组合进行生根培养,筛选适宜杉木组织培养和快繁的培养基.[结果]在改良培养基1/2MS+0.8 mg/L 6-苄氨基嘌呤(6-BA)+0.3 mg/L吲哚丁酸(IBA)中,杉木茎尖芽的诱导率达74.3%,平均芽长达2.3 cm;在改良培养基1/2MS+0.6 mg/L 6-BA+0.3 mg/L IBA中,杉木茎尖诱导芽的继代培养增殖倍数适中,增殖芽生长较快,有效苗数较多;在改良培养基1/4MS+0.5 mg/L IBA+1.0 mg/L ABT 6号生根粉中,杉木继代苗的生根率达90.7%.[结论]6-BA质量浓度是影响杉木外植体诱导率的主要因素,同时影响新芽的萌发数量;IBA则主要影响新芽的生长速度.适宜质量浓度的生长素可促进杉木组培苗生根,但质量浓度过高会抑制苗木生根.在实际生产中,以1/2MS+0.8 mg/L 6-BA+0.3 mg/L IBA为杉木茎尖芽诱导和生长的培养基、1/2MS+0.6 mg/L 6-BA+0.3 mg/L IBA为杉木茎尖诱导芽的继代增殖培养基、1/4MS+0.5 mg/L IBA+1.0 mg/L ABT 6号生根粉为杉木组培苗的生根培养基,可实现杉木优良无性系规模化育苗.     

星花果子蔓凤梨组织培养技术初步研究

分别以"平头红"凤梨的腋芽、顶芽和叶片为接种外植体,对其组织培养技术进行了初步研究,结果表明:诱导愈伤组织培养基以MS+TDZ3.0mg/L+2,4-D0.2mg/L为最好;MS+TDZ1.0mg/L+NAA0.05mg/L对不定芽分化效果良好。试管苗生根的适宜培养基为1/2MS+IBA0.5mg/L。不同部位的外植体在组织培养过程中的培养效果不同,对于工厂化育苗来讲,以腋芽作为外植体进行组织培养为最佳。     

TDZ和6-BA对枣树继代培养的影响

以狗头枣和骏枣试管苗为材料,研究了TDZ和6-BA在枣树试管苗继代培养中的效应并筛选了适宜组合。结果表明,在枣试管苗继代培养中,TDZ与6-BA分别与IBA配合使用时,附加6-BA 1.2~1.6 mg/L比较适合;TDZ的活性高于6-BA,其诱导的不定芽比6-BA的多但芽苗质量显著降低。二者结合使用则可显著促进不定芽的增殖并提高成苗质量,在CY TDZ 0.005~0.01 mg/L 6-BA 1.0 mg/L IBA 0.2 mg/L的组合培养基上可获得最佳繁殖效果。TDZ与IBA配合使用时能抑制试管枣苗生根,但可促使茎段愈伤组织的诱导。说明TDZ具有强烈地刺激细胞分裂的作用,并且在枣试管苗继代培养中与6-BA具有很好的协同促进作用。     

中原牡丹组织培养及植株再生研究

以中原牡丹品种鳞芽为外植体,以改良MS培养基为基本培养基,探讨了不同激素配比对中原牡丹诱导、继代及生根的影响。结果表明:适宜于中原牡丹初代培养的最佳培养基为MS+6-BA 0.5～1.0 mg/L+KT 0.5 mg/L+IAA 0～0.5 mg/L+GA30.2～0.5 mg/L;最佳继代培养基为MS+6-BA 0.5～1.0 mg/L+KT 0.3 mg/L+GA30.2 mg/L;最佳生根培养基为1/2 MS+IBA 4.0 mg/L+IAA 1.0 mg/L。