神圣草莓离体组织快繁技术的研究

以神圣草莓茎尖为试材,进行离体组培快繁技术的研究.结果表明:最佳诱导产生不定芽的培养基为MS 6-BA1.0 mg/L(毫克/升) NAA0.3 mg/L(毫克/升),增殖培养基为MS 6-BA2～2.5 mg/L(毫克/升) NAA0.1mg/L(毫克/升),生根培养基为MS IAA0.3 mg/L(毫克/升) 活性炭0.2%.试管苗经适宜条件练苗驯化移植大田,成活率可达97%以上,而且生长良好.     

仙客来组织培养的研究

本实验对仙客来“国旗红”组织培养进行了研究 ,结果表明 :2 ,4 -D和NAA两种生长素类激素均可诱导仙客来叶片、叶柄产生愈伤。应用 2 ,4 -D的适宜培养基组成为MS 2 ,4 -D2mg/L(毫克 /升 ) 6 -BA0 .2mg/L(毫克 /升 ) ;应用NAA的适宜培养基 :叶片MS NAA2 .5mg/L(毫克 /升 ) 6 -BA0 .2mg/L(毫克 /升 ) ,叶柄MS NAA 3mg/L(毫克/升 ) 6 -BA0 .2mg/L(毫克 /升 ) ;分化培养基为MS 2 ,4 -D(0 .5 ) 6 -BA(2 ) KT(0 .2 ) ;生根培养为 1/ 2MS IBA(0 .2 ) 6 -BA(0 .0 5 )。     

神圣草莓离体组培快繁技术的研究

以神圣草莓茎尖为试材 ,进行离体组培快繁技术的研究。结果表明 :最佳诱导产生不定芽的培养基为MS 6 -BA1.0mg/L(毫克 /升 ) NAA0 .3mg/L(毫克 /升 ) ,增殖培养基为MS 6 -BA2～ 2 .5mg/L (毫克 /升 ) NAA0 .1mg/L(毫克 /升 ) ,生根培养基为MS IAA0 .3mg/L(毫克 /升 ) 活性炭 0 .2 %。试管苗经适宜条件练苗驯化移植大田 ,成活率可达 97%以上 ,而且生长良好。     

菊花的快速繁殖

以带顶芽的菊花茎段为外植体,接种在诱导侧芽生长培养基中(MS NAA0.2mg/L 6-BA2.0mg/L),25d左右诱导成芽,再将芽接种于愈伤组织诱导培养基中(MS NAA0.1mg/L 6-BA3.0mg/L)进行继代培养,最后接种于生根培养基中(1/2MS NAA0.1mg/L),15d即可生根,30～35 d平均生根率达100%.将生根试管苗开盖练苗,移栽,成活率达95%以上.     

甜樱桃矮化砧木ZY-1组培快繁技术研究

利用ZY-1一年生的休眠芽为外植体进行组织培养,研究得出最佳芽的诱导培养基为MS 6-BA1.0 mg/L(毫克/升) GA1.0 mg/L(毫克/升);最佳增殖培养基为MS 6-BA1.5 mg/L(毫克/升) IAA1.0 mg/L(毫克/升) GA0.5 mg/L(毫克/升);生根培养基最佳配方为1/2MS 0.8NAA mg/L(毫克/升),蔗糖1.5%,琼脂0.5%.将高度大于1 cm(厘米)的试管苗以MS mIAA1.2 mg/L(毫克/升),蔗糖3%,琼脂0.6%进行壮苗培养,再直接移栽,用15 mg/L(毫克/升)IAA诱导生根,成活率可达90%.移栽介质以泥炭 腐叶土(体积比1:1)为佳,成活率高,且须根发达.     

黄瓜子叶外植体组培成株研究

采用正交试验设计,研究了不同激素浓度组合对黄瓜子叶离傣再生的影响.结果表明:愈伤组织诱导培养基为MS 1.0 mg/L 6-BA (1.0～1.5)mg/L KT 0.3 mg/L NAA 0.1mg/L2,4-D;不定芽诱导培养基为MS 6-BA1.5 mg/L NAA0.3 mg/L,再生芽移入生根培养基(MS 0.1 mg/L NAA)生根培养,40～60 d可得到完整再生植株.另外,在所有组合中,6-BA浓度1.5 mg/L时,愈伤组织诱导率低,并且出现了愈伤化现象,引起器官直接分化.     

小叶绿萝的组织培养技术研究

本实验采用了愈伤组织和增强腋芽生枝能力两种途径对小叶绿萝进行组织培养.基本培养基为1/2MS.愈伤组织途径:最佳外植体为茎段;诱导愈伤培养基最佳PGR浓度配比为:6-BA(3.0 mg/L) NAA(0.4 mg/L) 2,4-D(0.8 mg/L(毫克/升));胚状体的分化培养基中不加入生长调节物质效果最好.增强腋芽生枝能力途径:外植体为带节的茎段;诱导丛生芽培养基中PGR最佳浓度配比为6-BA(3.0 mg/L) NAA(0.2 mg/L(毫克/升)).生根培养基中加入NAA(0.05 mg/L(毫克/升)).待根长到3 cm～5 cm(厘米)即可炼苗、移栽.     

胶东卫矛再生体系的建立

通过对胶东卫矛不同外植体来源、不同激素种类以及激素配比的比较,初步建立了胶东卫矛组织培养及再生体系:胶东卫矛茎段愈伤组织诱导培养基为MS 6-BA0.5mg/L(毫克/升) IBA0.05mg/L(毫克/升),分化培养基为MS 6-BA0.5mg/L(毫克/升) IBA0.05mg/L(毫克/升),生根培养基为MS NAA0.4mg/L(毫克/升) IBA0.1mg/L(毫克/升);在此基础上进一步进行了抗生素敏感性实验,确定了胶东卫矛茎段转化的卡那霉素筛选浓度为50mg/L(毫克/升),羧苄青霉素浓度为200mg/L(毫克/升),为胶东卫矛的遗传转化奠定了基础.     

抗寒月季茎段快速繁殖的研究

以MS为基本培养基,附加不同种类、浓度的生长调节物质,对抗寒月季茎段快速繁殖进行研究.结果表明:诱导培养阶段,较低浓度细胞分裂素对侧芽萌发具有较好的促进作用,适宜的诱导培养基为MS BA0.5mg/L(毫克/升);继代增殖阶段,以培养基MS BA 1.0mg/L NAA0.1mg/L GA32.0mg/L(毫克/升)效果较好;生根阶段,最适宜的培养基为1/2MS NAA 0.5mg/L(毫克/升).     

蝴蝶兰组织培养快繁技术研究

本试验对蝴蝶兰组织培养不同阶段的适用培养基和激素配比水平进行了筛选,结果表明:在蝴蝶兰花梗腋芽诱导中,选用花宝(N-P-K:6.5-6-19)2.5 g/L(克/升)为基础培养基,添加BA3.0 mg/L(毫克/升)有利于对花梗腋芽诱导;原球茎增殖培养以较低的无机盐浓度为好,采用1.0g/L(克/升)花宝为基础培养基,添加2.0 mg/L(毫克/升)的6-BA和0.5 mg/L(毫克/升)的NAA,原球茎的增殖系数2个月内能达5倍以上,是最佳的原球茎增殖组合;以2.7 g/L(克/升)的花多多1号(N-P-K:20-20-20)为基础培养基,添加0.1 mg/L 6-BA 0.5 mg/L(毫克/升)NAA,植株生根率高,根数多,生根长,是较为理想的生根培养基.