钝叶瓦松带芽叶片的组织培养和快速繁殖

以钝叶瓦松（Orostachys malacophyllus）带芽叶片为外植体,MS为基本培养基添加不同质量浓度的6 BA、NAA和2,4 D,探讨了不同植物生长调节剂对钝叶瓦松带芽叶片启动的影响,以期筛选出最佳培养基配方,建立钝叶瓦松组织培养再生体系。结果表明,叶片腋芽最佳启动培养基为MS+6 BA 3 mg·L-1+NAA 0.1 mg·L-1,腋芽增殖的最佳培养基为MS+6 BA 1.5 mg·L-1+2,4 D 0.2 mg·L-1,腋芽的增殖倍数为5.35。最佳生根培养基为1/2MS+NAA 0.3 mg·L-1,生根率为96.67%,移栽后成活率为76.67%。     

地被菊‘雪公主’的组织培养和快速繁殖

以地被菊‘雪公主’（Chrysanthemum grandiflorum cv.White Snow）带腋芽的茎段为外植体,通过消毒得到无菌材料。以MS为基本培养基,通过增加不同浓度的激素进行组织培养快速繁殖技术的研究。结果表明,诱导叶片不定芽的最适培养基为MS+1.0 mg·L-16 BA+0.7 mg·L-1NAA,诱导率达100％,分化率达63.3％;茎段增殖的最适培养基为MS+0.3 mg·L-16 BA+0.2 mg·L-1NAA,平均增殖系数为6.73;继代培养为MS培养基;生根培养基为1/2MS+0.5 mg·L-1NAA培养基,生根率达100％,平均生根系数为15.80;移栽后生长良好,成活率达100％。     

五节芒茎芽繁殖技术的研究

五节芒是禾本科、芒属植物。是优良的饲用植物和水土保持植物；茎秆是造纸原料。种子繁殖困难，传统的是用分蔸繁殖法，此法繁殖系数低，运输量大。为五节芒的推广，我们研究了茎芽繁殖法。     

甘草组织培养快速繁殖技术研究

比较了三种甘草组织培养快速繁殖途径,研制了不含激素的快速生根培养基,提出了用塑料盒培养甘草带2叶茎段直接生根成苗快速繁殖技术及育苗措施,使甘草组织培养快速繁殖技术实用化、工厂化。     

甘草组织培养快速繁殖技术研究

比较了三种甘草组织培养快速繁殖途径,研制了不含激素的快速生根培养基,提出了用塑料盒培养甘草带2叶茎段直接生根成苗快速繁殖技术及育苗措施,使甘草组织培养快速繁殖技术实用化、工厂化.     

绶草的组织培养与快速繁殖研究

以野生花卉植物绶草的肉质根、幼叶、花序轴为外植体,建立组织培养快繁体系.试验结果显示:绶草组织培养较理想的外植体材料为花序轴,诱导率达到83%:最适诱导培养基为MS+3.0%蔗糖+0.75%琼脂+6-BA 1.0 mg/L+NAA0.1 mg/L;最适增殖培养基为MS+3.0%蔗糖+0.75%琼脂+6-BA 2.0 mg/L+NAA 0.2 mg/L+椰汁100g/L;最适生根培养基为1/2 MS+2.0%蔗糖+0.5%琼脂+IBA 0.5 mg/L+NAA 0.5 mg/L+活性炭0.5 g/L.     

芡欧鼠尾草的组织培养和快速繁殖

以芡欧鼠尾草(Salvia hispanica)成熟种子为外植体,1/2MS为基本培养基,研究不同浓度的外源激素对愈伤组织的诱导、增殖和生根的影响,从而初步建立了芡欧鼠尾草组织培养的快速繁殖体系。结果表明,诱导种子愈伤组织的最适宜培养基为1/2MS+10.0mg·L~(-1) 6-BA+1.0mg·L~(-1) NAA+0.4mg·L~(-1) ZT,诱导率为66.5%;不定芽增殖的最适培养基为1/2MS+3.0mg·L~(-1) 6-BA+0.5mg·L~(-1) NAA,增殖倍数为7.69;生根的最适培养基为1/2MS+0.5mg·L~(-1) NAA,生根率达100%,平均生根数为5.68;移栽后植株生长良好,成活率较高,达97%。     

蝴蝶兰幼嫩花梗组织培养和快速繁殖

以蝴蝶兰(Phalaenopsis amabilis)幼嫩花梗获得的无菌苗的茎尖为外植体,通过在MS和1/2 MS培养基中加入不同质量浓度的6-BA、NAA、TDZ和2,4-D来筛选最佳培养基配方,从而初步建立蝴蝶兰的组织培养再生体系.结果表明,花梗用0.1%升汞消毒15 min效果最好.花梗腋芽启动培养基为1/2 M...     

皇帝蕉(Musa AA)组织培养与快速繁殖技术研究

摘要：对皇帝蕉芽的消毒方法、外植体的诱导、幼芽的增殖培养、生根培养等进行了研究。结果表明：采用75%酒精60s--0.1%升汞12min（第一次8min 第二次4 min）的消毒方法,比较适宜于皇帝蕉外植体的消毒,易获得理想的无菌体系;在芽的诱导初期阶段,6-BA浓度采用5.0 mg/L,最适合皇帝蕉外植体的诱导;在幼芽的中高代增殖培养阶段,适宜采用MS 4.0mg/L6-BA 0.1mg/LNAA配方;在幼芽的高代增殖培养阶段,适宜采用MS 3.0mg/L6-BA 0.1mg/LNAA配方;在幼芽的生根阶段,适宜采用MS 2.5mg/LIBA 0.2mg/LNAA配方,幼苗生根快、根系壮实、发达,成活率高。     

百合属‘普瑞头’的组织培养和快速繁殖

以亚洲百合‘普瑞头’（Lilium asitic hybrids cv. Prato）鳞片为外植体,以MS为基本培养基,通过增加不同激素种类和浓度进行了组织培养快速繁殖技术的研究。结果表明,诱导不定芽的最适培养基为MS+0.5 mg·L-1 6 BA+0.1 mg·L-1 NAA,诱导率最高达85.0%,平均每块分化的芽数最多（3.6个）;再生小鳞茎鳞片诱导不定芽的最适培养基为MS+1.0 mg·L-1 6 BA;生根的最适宜培养基为1/2 MS+0.5 mg·L-1 IBA,生根率为86.7%;移栽后生长良好,成活率达到85.0%。     

紫叶李组织培养及快繁体系的建立

试验以紫叶李春季萌生苗嫩枝为外植体,在腋芽诱导的基础上,建立“以芽尖诱导丛生芽”的组培快繁体系。腋芽诱导培养基为MS+6BA0.5mg/L+NAA0.1mg/L与MS+6BA1.0mg/L+NAA0.1mg/L;丛生芽增殖培养基为MS+BA1.0mg/L+IBA0.3mg/L;壮苗培养基为MS+6BA0.4mg/L+IBA0.1mg/L+GA30.2mg/L。最佳生根培养基为1/2MS+IBA1.0mg/L+蔗糖20g/L。     

玉蝉花种胚的丛生芽诱导和植株再生技术

以玉蝉花(Iris ensata)种胚为外植体来研究其丛生芽诱导和植株再生。玉蝉花种胚的丛生芽诱导最佳培养基配方为MS+6-BA 1.0 mg·L-1+NAA 0.6 mg·L-1+KT 2.0 mg·L-1,60 d时的增殖系数最大,达到9.61;最佳生根培养基为MS+NAA 0.5 mg·L-1,生根率达到100%。本研究结果可促进玉蝉花种质资源的有效开发和利用,为种质保存、育种及其他无性繁殖技术等研究的开展提供无菌植物材料。     

百香果组培苗快繁体系建立研究

为了减少百香果在繁殖过程中的病毒积累,提高种苗繁殖效率,满足百香果规模化生产的种苗需求。本研究以百香果茎段为材料,探索其组织培养的基本条件,建立以百香果茎段为外植体的组培快繁体系。研究结果表明：百香果组培过程中,以RMS基础培养基诱导出苗效果较好;继代培养时采用促进腋芽生枝和单芽茎段微扦插接种方式,增殖倍数相比较传统接种显著提高;在生根培养基中加入1mg/L的IBA能显著促进根系生长;采用进口草碳：粗砂=4:1的基质配比,对百香果组培苗移栽成活率的提高有显著的效果,其成活率达84%。本研究建立了百香果组培苗快繁体系,筛选出最佳的培养基、接种方式以及添加物促进百香果诱导、继代、生根,同时探索了移栽条件对成活率的影响。     

甜叶菊种子丛生芽诱导和植株再生

以甜叶菊种子为外植体,成功建立了快繁再生体系。基本培养基为MS,在添加了6-BA1.0mg/L和NAA0.5 mg/L的培养基上最适于丛生芽诱导,诱导率为98.6%;最佳壮苗培养基为MS+6-BA0.5 mg/L+KT0.5 mg/L+GA0.2 mg/L+NAA0.1 mg/L;试管苗最佳生根培养基为MS+NAA0.2 mg/L,生根率达到99.5%;生根的试管苗移栽到装有田园土的土盆中,其存活率达到82.4%。本试验为甜叶菊快速繁殖工作奠定了良好的实验基础。     

红皮红肉火龙果组培快繁技术的研究

为建立火龙果的组培快繁体系,以红皮红肉火龙果(Hylocereu polyrhizus) 的幼嫩茎段为外植体进行组培快繁研究,结果表明,最适的外植体消毒的方法为75% 酒精消毒20 s,2%次氯酸钠5min, 0.1% 升汞10 min,污染率为11.11% ,成活率达73.33%。MS+6-BA 3.0 mg/L + NAA 0.2mg/L为诱导不定芽效果最好的培养基,诱导率83.33%。添加6-BA6.0 mg/L 和NAA0.1 mg/L有利于芽的增殖和分化,增殖系数可达5.9。研究发现最佳的壮苗培养基为MS+6-BA2.0 mg/L +NAA0.1 mg/,虽然繁殖系数不高,但其不定芽生长粗壮。最适宜的生根培养基为：MS+IBA 0.6 mg/L+NAA0.2 mg/L。,生根率达到 100% ,平均生根数6.83条每株。     

旱柳Q106组织培养及快繁体系的建立

以旱柳(Salixmatsudana)Q106春季萌生嫩枝为外植体,建立了“以芽繁芽”的组织培养快繁体系。丛生芽培养基为MS+BA0.4mg/L+NAA0.2mg/L。继代培养基为MS+BA0.4mg/L+NAA0.2mg/L和BA0.4mg/L+NAA0.4mg/L;MS+BA0.4mg/L+NAA0.2mg/L和BA0.4mg/L+IBA0.2mg/L交替使用。最佳生根培养基为MS+GA30.2mg/L+NAA0.5mg/L。