无花果茎尖的试管培养

把带有无花果花叶病病状的一些无花果栽培品种(Cultivars of Ficus caricaL.)的茎尖,置于添加萘乙酸(NAA)0.18毫克/升、苄基腺嘌呤(BA)0.1毫克/升和赤霉酸(GA)0.3毫克/升的 MS 培养基中培养。出苗后转移到含 NAA0.5毫克/升和吲哚丁酸(IBA)0.5毫克/升的 MS 培养基上诱导生根,然后移到土中。用上述方法培养出来的植株,在温室下培养长达15个月,甚至没有出现花叶病状。     

番茄花药离体培养获得植株

我们自1975年开始番茄(Lycopeisicvm esculenetum Mill)花药离体培养的研究。大量的工作证明番茄花药离体培养的最适合时期为单核期。供试验的品种均可诱导产生愈伤组织。诱导产生愈伤组织的培养基为MS 激动素1-2毫克/升 萘乙酸0.5-1毫克/升 3％蔗糖。当培养基内加入10％的椰乳时能明显地提高诱导频率。诱导愈伤组织分化的培养基为MS 6-苄基腺嘌呤2毫克/升 吲哚乙酸0.2毫克/升 2％蔗糖。已从大叶早粉、满丝、北京早红×402番茄品种的愈伤组织中诱导产生出大量花粉植株。诱导生根的培养基为H 吲哚丁酸0.5毫克/升 2％蔗糖或MS 吲哚乙酸0.2毫克/升 2％蔗糖。培养适宜的温度条件为25-27℃。 通过花药压片的显微观察,已看到2-4个细胞的花粉粒和多细胞团。诱导出的植株经根尖压片检查,染色体n=12,证明是来源于花粉的单倍体植株。     

结球甘蓝叶肉原生质体培养再生植株

用酶法从结球甘蓝(Brassica oleracea L.var.capitata)F_1代杂种‘报春’的第一真叶分离原生质体,培养在修改的DPD液体培养基(CaCl_(2)·2H_(2)O800毫克/升,补加2,4-D0.5毫克/升、激动素KT1毫克/升、甘露醇0.3M、蔗糖20克/升)中,获得了持续的细胞分裂和体细胞胚胎发生。细胞团转至修改的MS固体培养基上诱导出愈伤组织。愈伤组织转至MS加KT 3毫克/升、赤霉酸GA_(3)0.1毫克/升的分化培养基上后,分化出了大量丛生芽。分化的芽在MS加吲哚乙酸(IAA)、KT、 GA_(3)各0.1毫克/升、并补加N.Z.amine 500毫克/升的培养基上,形成了植株。     

秋子梨叶片高效再生体系的构建

以秋子梨(Pyrus ussuriensis M.)叶片为外植体,NN69为基本培养基,研究了秋子梨组织培养高效再生体系。结果表明:噻隆(TDZ)对秋子梨叶片不定芽的诱导效果显著高于6-苄基腺嘌呤(6-BA)和激动素(KT),吲哚丁酸(IBA)和吲哚乙酸(IAA)的诱导效果显著高于萘乙酸(NAA)和2,4-二氯苯氧乙酸(2,4-D)。其中,适合秋子梨叶片不定芽再生的最佳培养基为NN69+TDZ 3.0mg/L+IBA 0.3mg/L,再生率和再生芽数分别为100.0%和8.47个;适合秋子梨不定根诱导的最佳培养基为1/2MS+IBA 0.5mg/L,生根率为45.5%,生根条数为2.24条。     

不同外植体对香石竹试管培养中芽形成的影响

用组织培养的方法,对香石竹茎尖、茎段、叶片进行培养,结果表明:茎尖、茎段、叶片在离体培养中,外植体大小、部位、取材时间直接影响香石竹组织培养中芽的分化.茎段培养中,以中上部茎段芽分化效果最佳.在MS培养基中添加BA0.05 mg/L～0.5 mg/L(毫克/升),KT0.1 mg/L～1 mg/L(毫克/升)可显著提高芽的诱导率,BA1 mg/L(毫克/升)与NAA0.1 mg/L(毫克/升)配合使用芽分化率最高,可达100%.茎尖诱导中培养基中添加BA0.01 mg/L～0.5 mg/L(毫克/升)可增加芽分化率,以BA0.5 mg(毫克)和KT1 mg/L(毫克/升)最优,芽分化率分别为80%、76%,而叶片培养中芽诱导率较低.     

甜椒花药培养的初步研究

花药培养实验共用十九个甜椒品种,在十六个品种中曾获得胚状体,但由于多数胚状体不能正常发育,仅有“四方头”和“旅大”两个品种的花药在附加0.25毫克/升萘乙酸(NAA),1毫克/升激动素,50毫克/升单核苷酸的NT_H培养基(蔗糖3％)上产生了比较正常的花粉胚状体。将其转移到含有0.1毫克/升吲哚乙酸(或0.001毫克/升NAA),2─4毫克/升激动素,4毫克/升6—苄基嘌呤(或10％椰子乳)的NT_H培养基上,花粉胚状体进一步发育为单培体植株(n=12)。花粉胚状体的诱导率因品种而异。低浓度的萘乙酸有利于胚状体的形成,但是不同品种在形成花粉胚时所需要的萘乙酸浓度不同,将获得的花粉植株用0.2％的秋水仙碱液进行处理24小时,其中染色体获得加倍的植株,能开花结果。     

神圣草莓离体组织快繁技术的研究

以神圣草莓茎尖为试材,进行离体组培快繁技术的研究.结果表明:最佳诱导产生不定芽的培养基为MS 6-BA1.0 mg/L(毫克/升) NAA0.3 mg/L(毫克/升),增殖培养基为MS 6-BA2～2.5 mg/L(毫克/升) NAA0.1mg/L(毫克/升),生根培养基为MS IAA0.3 mg/L(毫克/升) 活性炭0.2%.试管苗经适宜条件练苗驯化移植大田,成活率可达97%以上,而且生长良好.     

神圣草莓离体组培快繁技术的研究

以神圣草莓茎尖为试材 ,进行离体组培快繁技术的研究。结果表明 :最佳诱导产生不定芽的培养基为MS 6 -BA1.0mg/L(毫克 /升 ) NAA0 .3mg/L(毫克 /升 ) ,增殖培养基为MS 6 -BA2～ 2 .5mg/L (毫克 /升 ) NAA0 .1mg/L(毫克 /升 ) ,生根培养基为MS IAA0 .3mg/L(毫克 /升 ) 活性炭 0 .2 %。试管苗经适宜条件练苗驯化移植大田 ,成活率可达 97%以上 ,而且生长良好。     

大花万寿菊的组织培养及快速繁殖

1 材料 大花万寿菊的顶芽、带侧芽的茎段。 2 培养条件 MS为基本培养基。 (1)丛生芽诱导培养基:MS 6-BA(细胞分裂素)1毫克/升 NAA(α—萘乙酸)0.005毫克/升; (2)继代培养基:MS 6-BA(细胞分裂素)1毫克/升 NAA(萘乙酸)0.01毫克/升; (3)生根培养基:MS基本培养基(不加任何激素),培养基中蔗糖为3％,琼脂为0.6％,pH为5.8～6,温度为23～26℃,每天光照10～12小时,光照强度约1000LX(勒     

彩色马蹄莲组培快繁技术的研究

以黄花马蹄莲 (Z .elliotiana)和红花马蹄莲 (Z .rehmannii)为试材 ,取不同部位进行培养 ,试验结果表明 ,MS为基本培养基 ,用沙和蛭石预培养有利于减少初代培养中的污染率 ,1%的HgCl2 中常规灭菌以10min(分钟 )为宜。培养基中加入 6BA2 .0mg/L(毫克 /升 ) NAA0 .5mg/L(毫克 /升 )时 ,有利于茎芽发生丛生芽和愈伤组织。培养基中加入IBA -Na0 .2mg/L(毫克 /升 )有利于无菌苗生根。移栽基质以蛭石生根效果最好。     

彩色马蹄莲组织快繁技术的研究

以黄花马蹄莲(Z.elliotiana)和红花马蹄莲(Z.rehmannii)为试材,取不同部位进行培养,试验结果表明,MS为基本培养基,用沙和蛭石预培养有利于减少初代培养中的污染率,1%的HgCl2中常规灭菌以10 min(分钟)为宜.培养基中加入6BA2.0 mg/L(毫克/升) NAA0.5 mg/L(毫克/升)时,有利于茎芽发生丛生芽和愈伤组织.培养基中加入:IDA-Na0.2 mg/L(毫克/升)有利于无茵苗生根.移栽基质以蛭石生根效果最好.     

小叶绿萝的组织培养技术研究

本实验采用了愈伤组织和增强腋芽生枝能力两种途径对小叶绿萝进行组织培养.基本培养基为1/2MS.愈伤组织途径:最佳外植体为茎段;诱导愈伤培养基最佳PGR浓度配比为:6-BA(3.0 mg/L) NAA(0.4 mg/L) 2,4-D(0.8 mg/L(毫克/升));胚状体的分化培养基中不加入生长调节物质效果最好.增强腋芽生枝能力途径:外植体为带节的茎段;诱导丛生芽培养基中PGR最佳浓度配比为6-BA(3.0 mg/L) NAA(0.2 mg/L(毫克/升)).生根培养基中加入NAA(0.05 mg/L(毫克/升)).待根长到3 cm～5 cm(厘米)即可炼苗、移栽.     

利用茎尖分生组织繁殖苹果植株

概要苹果(Malus domesfica Bor—kh)植株可由植入培养基中的茎尖分生组织再生,经移植而繁殖。茎尖分生组织外植体初期的生长和发育,仅仅要求培养基含有 BA(苄基腺嘌呤),最适浓度为5×10~(-6)M。移植后,可高频率地生产再生枝条。使用 NAA 浓度为10~(-5)M 的培养基     

“格兰尼、史密斯”苹果的微型繁殖:影响离体成根的因素

用“格兰尼、史密斯”(Granny Smith)苹果的腋芽离体培养产生了茎芽。这种茎芽采用标准的繁殖方法,难以从离体培养中诱导不定根的形成。在静置的液体培养下没有形成根,而在琼脂为基础的培养基或带有滤纸桥的培养基上生根也不多(约4％)。当生长在连续振动液体培养基上(1/2MS培养基)以及在连续光照和恒温(26℃±2℃)下,茎条生根率可高达80％。外源生长素对生根是不可少的。吲哚乙酸(IBA)10μM或萘氧乙酸(NOA)10μM都促进了根的形成,但是2.4-D则抑制根的形成。蔗糖的最适浓度为1％(W/V)。根的创伤增进了根的发生。不定根的起源是随施用的生长素而不同:用萘氧乙酸是从切面生根,用吲哚丁酸,根是从表皮层和从切面都可长出。     

不同激素处理对观赏南瓜不定芽诱导的影响

为了研究观赏南瓜离体快繁技术,以观赏‘金童’南瓜无菌苗为试验材料,茎尖与子叶为外植体,观察其在含有不同种类和浓度生长调节剂的培养基中的再生频率。试验结果表明,茎尖与子叶通过人工诱导培养均可以诱导出不定芽,在再生过程中,茎尖的芽诱导率比子叶高,子叶产生的愈伤组织明显高于茎尖;最佳芽诱导培养基组合为MS+6-BA 0.4 g·L(-1)+IBA 0.05 mg·L(-1)+30 g·L(-1)蔗糖+7 g·L(-1)琼脂。     

苹果新品种'鲁丽'离体叶片高效不定芽再生体系的建立

以早熟苹果优良新品种'鲁丽'无菌苗的离体叶片的外植体为试材,采用离体组织培养方法,研究了植物生长调节物质及碳源对叶片高效不定芽再生的影响,以期获得诱导'鲁丽'叶片高效不定芽再生的适宜培养基组成.结果 表明:不依赖于植物生长调节物质的组成,碳源D-山梨醇相比蔗糖明显提高不定芽再生率和平均单位叶片不定芽数.在相同碳源条件下,不定芽再生率和单位叶片不定芽数均表现为塞苯隆(TDZ)高于6-苄基氨基嘌呤(BA),但TDZ和BA之间没有达到差异显著水平;TDZ及BA不同浓度间差异不显著.诱导不定梢绿苗生根,除了较高浓度1.0 mg·L-1 IBA处理外,基本培养基1/4MS比1/2MS显著提高不定梢生根率;在基本培养基1/4MS上,生长素物质吲哚乙酸(IAA)比吲哚丁酸(IBA)显著提高生根率和单株生根数.在基本培养基1/2MS上,IAA和IBA的生根率和单株生根数均差异不显著.IAA比IBA诱导生根速度快,IAA诱导的不定根从绿苗茎横切面直接产生,没有愈伤产生,最高生根率为80.8％,平均单株生根数为4.2条.     

紫阳花组培繁殖技术研究

以紫阳花的茎段、茎尖、叶片为外植体,在MS培养基中加入不同质量分数的6-苄基腺嘌呤(6-BA)和吲哚丁酸(IBA)进行增殖培养.结果表明:外植体表面灭菌是一个重要环节,适宜紫阳花外植体表面灭菌方法是:利用0.1％氯化汞(HgCl2)灭菌7min.不同类型的紫阳花外植体在初代培养时增殖效果不同,茎尖在培养过程中,首先伸长生长,然后陆续长出侧芽,表明紫阳花的茎尖是比较适合用来进行增殖培养的外植体.继代培养时以MS+6-BA 1.0 mg/L+IBA0.1 mg/L为紫阳花较适宜的增殖培养基.紫阳花侧芽在1/2MS+IBA 0.2 mg/L培养基中生根率和单苗根数量均较高,说明1/2MS+IBA 0.2 mg/L为较好的不定根诱导培养基.     

非洲菊叶片离体诱导成株的激素调控

以Sangria品种为试验材料,叶片为外植体,进行离体快繁激素调控技术的研究,结果表明:35个激素组合配比中,都能形成愈伤组织,愈伤组织的诱导率为100%;不定芽诱导的最佳培养基为MS+4.0 mg/L(毫克/升)BA+0.2 mg/L(毫克/升)IAA,不定芽的诱导率可达100%;从增殖系数、试管苗的质量综合评判得出的最佳增殖培养基也为MS+4.0 mg/L(毫克/升)BA+0.2 mg/L(毫克/升)IAA,繁殖系数可达14;MS附加IAA0.2 mg/L(毫克/升)～0.5 mg/L(毫克/升)的培养基的生根率可达80%以上,且随着培养时间延长,生根率会不断提高.培养30 d(天)时,生根率可达90%以上.     

枇杷茎尖培养与增殖的研究

本文报道了不同来源的枇杷茎尖离体培养成功的方法与条件。取自实生幼树的茎尖在MS+6-BA0.5+NAA0.1+GA_3 0.1～0.2(毫克/升)培养基上顺利展叶,而后转接到MS+6-BA0.25+IAA0.05(毫克/升)中抽枝,在无激素的1/2MS培养基中长根。而取自嫁接结果树的茎尖则需要更高的外源激素。部分品种可在上述培养基中展叶,但必须在MS+6-BA1.0+NAA0.25(毫克/升)的培养基中才能抽枝,它需要用100毫克/升的IBA处理12小时才能长根。谷胱甘肽在枇杷茎尖离体培养中作用不大,而初期的全黑暗培养可提高成功率。不同生长状态的芽培养成功率各不相同。 本文还探讨了影响枇杷茎尖苗增殖速度的条件,认为6-BA可以抑制顶端优势,促进腋芽萌发,根据新枝增殖率和正常率与6-BA浓度之间的数量关系,认为最适繁殖的6BA浓度为1.5毫克/升。     

胶东卫矛再生体系的建立

通过对胶东卫矛不同外植体来源、不同激素种类以及激素配比的比较,初步建立了胶东卫矛组织培养及再生体系:胶东卫矛茎段愈伤组织诱导培养基为MS 6-BA0.5mg/L(毫克/升) IBA0.05mg/L(毫克/升),分化培养基为MS 6-BA0.5mg/L(毫克/升) IBA0.05mg/L(毫克/升),生根培养基为MS NAA0.4mg/L(毫克/升) IBA0.1mg/L(毫克/升);在此基础上进一步进行了抗生素敏感性实验,确定了胶东卫矛茎段转化的卡那霉素筛选浓度为50mg/L(毫克/升),羧苄青霉素浓度为200mg/L(毫克/升),为胶东卫矛的遗传转化奠定了基础.