影响苹果离体叶片再生的因素分析

综述了影响苹果离体叶片再生的因素，内因主要包括基因型，外植体类型和外植体的发育状态；外因主要是添加的激素种类，浓度和配比，以胶培养条件。同时阐明了愈伤组织和不定芽诱导，产生的途径。     

苹果离体叶片植株再生研究进展

对影响苹果离体叶片植株再生的主要因子,包括基因型、叶片来源和接种方式、培养基及其添加物、黑暗培养等研究进展进行了综述,并提出了存在问题及今后发展方向。     

番茄子叶离体培养的植株再生

番茄是我国的主要蔬菜之一,每年因病毒病危害造成的损失很大,运用转基因技术培育抗病品系是一个新途径。番茄是较早被应用于体外培养的植物,经过几十年众多研究者的研究证明:番茄外植体产生愈伤组织的数量和不定芽的分化频率受到植物本身基因型和激素配比条件等多种因素的影响。     

香玲核桃离体叶片再生体系的建立

为解决核桃种质资源的实验室保存及转基因研究等问题,研究了暗培养时间、叶片放置方式及不同浓度激素组合(BA、NAA、TDZ)对香玲核桃叶片再生的影响。试验结果表明,最适宜的暗培养时间为14d;近轴面放置效果最好;不同组合的激素配比对叶片再生不定芽能力不同,最适宜香玲核桃叶片再生的培养基为:MS+BA0.5mg·L-1+NAA0.5mg·L-1+TDZ1.0mg·L-1+sucrose30g·L-1+agar6g·L-1,在该培养基上,离体叶片不定芽再生率达60%,每叶片平均再生不定芽数超过1.1个。筛选得到了香玲核桃离体叶片的最适分化及生根培养基,对离体再生培养条件进行优化,为香玲核桃的种质资源保存及遗传转化研究奠定了基础。     

苹果离体叶片高效再生不定芽技术研究

苹果不同品种叶片再生不定芽能力不同,嘎拉再生能力最强,其次是乔纳金,富士最难再生。用继代培养３ 年以上、当代培养３０ ～５０ ｄ 的试管苗,取顶部第２ ～４ 叶位幼嫩叶片,远轴面向下接触培养基,再生效率高。诱导叶片再生不定芽适宜培养基为ＭＳ＋ ＴＤＺ１．０ ｍｇ·ｌ－ １（ 富士、乔纳金）或ＢＡ５ ．０ ｍｇ·ｌ－ １ ＋ ＮＡＡ０ ．１ ～０．２ ｍｇ·ｌ－ １ ＋ 蔗糖３５ ．０ ｇ·ｌ－ １ ＋ 琼脂６ ．２ ｇ·ｌ－ １（ 嘎拉） 。     

寒富苹果叶片离体再生及四倍体诱导

为建立寒富苹果高效的离体再生体系和多倍体诱导体系,以试管苗叶片为外植体,研究了培养基中激素对寒富叶片再生芽的影响及适宜的四倍体诱导方法。结果表明,当培养基中BA质量浓度为0.5mg/L时,再生频率最高达35.7%;当培养基中BA质量浓度为2.5mg/L时,再生频率超过90%,平均再生芽数在4以上。在培养基中附加1.0mg/LTDZ,再生频率达100%,平均再生芽数达19.47。以附加15、30、60、120mg/L秋水仙素的液体再生培养基处理叶片5d,各个质量浓度处理均诱导出四倍体植株,诱变率在5.3%～22.2%之间;寒富苹果叶片在附加50mg/L秋水仙素固体再生培养基上处理5d亦获得了四倍体植株。研究结果表明寒富苹果叶片具有极强的不定芽再生能力,叶片再生过程中进行秋水仙素处理是获得其四倍体的一个有效途径。     

苹果离体叶片再生体系两步培养法的研究

通过对苹果离体叶片两步再生法的研究,建立了乔纳金苹果试管苗的叶片再生体系。试验表明,2, 4-D能促进愈伤组织的形成和增殖,影响外植体脱分化和再分化的趋向。BA影响外植体形成愈伤组织的能力,对不定芽再生具有显著影响。IAA对愈伤组织的形成几乎无影响,但对再生不定芽的生长影响较大。诱导愈伤组织的培养基为MS+BA 1 0mg·L-1 +IAA 0 2mg·L-1 +2, 4 -D 0 8mg·L-1时诱导率可达100%;分化不定芽的培养基为MS+BA4 0mg·L-1 +IAA0 2mg·L-1时最高分化率也达 100%。暗培养 1月左右即可得到再分化的不定芽。     

影响苹果离体培养叶片分化不定芽的因素

影响苹果离体培养叶片分化不定芽的因素丁爱萍，王洪范（中国农业科学院果树研究所，辽宁兴城１２５１００）果树具有童期长和基因高度杂合两大特点，使其传统的有性杂交育种成效较低。生物技术的应用为果树育种开辟了新途径。利用转基因技术已获得近百种植物的转基因植株...     

辣椒的离体再生研究进展

本文对近年来人们利用辣椒不同外植体进行组织培养和植株再生及影响因素等方面的研究进展进行了综述，并对其应用前景进行了展望。     

番茄子叶不定芽分化的初探

对番茄子叶不定芽分化进行了探讨。结果表明:在番茄子叶(或子叶切段)离体培养中,以2/3子叶片处切取子叶所获得的外植体,用于子叶不定芽分化的起始材料最好;利用番茄种子的胚体直接进行组培,再从胚体上切取子叶作为外植体进一步培养可有效缩短组织培养周期。     

紫叶稠李叶片离体培养再生植株

以紫叶稠李为试材,采用组织培养方法,研究不同激素对其试管苗不定芽诱导、不定芽生根及成苗影响。结果表明:叶片切块可诱导产生大量的不定芽,MS附加0.5mg/L BA和0.01mg/L NAA的培养基不定芽诱导率为50.1%;利用植物激素0.5mg/L BA,0.5mg/LNAA,0.5mg/L KT和0.2mg/L IBA的组合,不定芽可多次继代培养增殖;不定芽在附加0.4mg/L IBA的MS培养基上生根,生根率为67%。该试验结果说明,紫叶稠李试管苗叶片可作为外植体离体培养获得再生植株,BA是主要的调控植物激素,IBA对生根有一定促进作用。     

利用枣离体叶片直接再生完整植株

以冬枣组培苗叶片为材料进行离体再生培养, 通过对再生条件的系统研究, 实现了离体叶片直接再生不定芽并获得完整植株。试验结果表明: 麦芽糖为离体叶片直接再生的适宜碳源; AgNO3可显著提高叶片不定芽再生率和出芽数, 在TDZ 1.0 mg·L - 1 +AgNO3 1.0 mg·L - 1的条件下, 不定芽直接再生率高达97.3% , 出芽数达14.4个。但麦芽糖不适宜继续作为不定芽伸长培养的碳源, 再生的不定芽需在MS+ 蔗糖40 g·L - 1 + 琼脂4 g·L - 1 +BA 1.0 mg·L - 1 + IBA 0.5 mg·L - 1的培养基上进行增殖, 增殖系数为3.2。在IBA1.0 mg·L - 1条件下, 生根率达87.3%。     

红叶石楠‘红罗宾’离体再生技术研究

以红叶石楠‘红罗宾’的茎段为外植体建立再生体系。结果表明:适宜的诱导培养基为MS+BA 1.5 mg/L+NAA 0.2 mg/L;增殖培养基为MS+6-BA 1.0 mg/L+IBA 0.1 mg/L+NAA 0.1 mg/L,增殖系数可达3.0;红叶石楠瓶外生根适宜的方案为:以草炭土为基质,插条在500 mg/L的生长素中浸泡10 s,生根率可达94.2%。     

铁皮石斛兰离体培养再生植株的研究

选用铁皮石斛兰组培苗为试验材料,以添加椰汁的MS培养基为基本培养基,研究在不同激素浓度配比条件下,对于铁皮石斛兰产生愈伤组织、诱导不定芽以及继代培养的影响,并优化铁皮石斛兰的再生条件,进而获得铁皮石斛兰离体茎尖高效扩繁再生体系。结果表明,以铁皮石斛兰的幼嫩茎尖作为试验材料,可达到高效繁殖的目的,诱导不定芽的最佳激素配比为2,4-D 0.5 mg/L和NAA 0.2 mg/L。     

桃离体培养与植株再生的优化研究

以桃杂种单株‘2-7’带腋芽茎段为试材,对桃离体培养进行优化。结果表明:MS+1.5mg/L 6-BA+0.3mg/L IBA培养基中腋芽诱导率最高达88.89%;MS+1.5mg/L 6-BA+0.5mg/L IBA培养基增殖系数最高2.37;试管内培养出的健壮新梢,接种于0.5mg/L IBA的1/2MS培养基中10d后转入无生长调节剂的1/2MS培养基中光/暗(12h/12h)周期下生根效果较好,生根率达90.6%。     

马哈利樱桃叶片再生的研究

利用马哈利樱桃的无菌苗叶片做外植体 ,进行离体叶片再生不定芽研究。结果表明 :培养基中添加的激素浓度、种类、配比均影响不定芽再生 ,BA诱导马哈利樱桃离体叶片再生的活性强于TDZ ;在WPM BA 5mg/L IBA 0 .7mg/L培养基上 ,通过 3次继代培养的不定梢的叶片 ,再生不定芽的频率达 5 2 .4%。     

辣椒离体培养研究进展

本文综述了辣椒幼苗外植体器官再生、单倍体培养、胚培养及原生质体培养等离体培养技术的研究进展,并评述了该技术的应用前景。     

不同番茄品种再生体系的比较

以"大红番茄"、"红牛奶番茄""粉冠888"3种番茄为试材,选取7 d苗龄无菌苗的子叶和胚轴为外植体,对外植体基因型、分化培养基及生根培养基进行筛选,建立番茄再生体系,以期为进一步进行人参大片段DNA转化番茄的研究奠定基础。结果表明:"粉冠888"可为遗传转化提供大量稳定的外植体来源,适宜的分化培养基为MS+6-BA 1.0~2.0 mg/L+IAA 0.2 mg/L,生根培养基为MS+IAA 0.5 mg/L。     

辣椒子叶和下胚轴的离体培养及高效再生体系的建立

采用三个辣椒品种的子叶和下胚轴,分别离体培养在附加不同激素及化合物的MB5培养基上,对苗龄、基因型、不同外植体和激素组合等对外植体不定芽诱导分化和芽伸长的影响进行研究。结果表明,苗龄对外植体不定芽分化的方式有直接影响;子叶的不定芽分化率高于下胚轴;B5维生素有利于芽的生长和芽伸长率提高。通过比较,筛选出了辣椒子叶和下胚轴离体再生的较好芽分化培养基为MB5＋6--BA5mg／L＋IAA0．5mg／L＋AgNO3 4mg／L＋蔗糖30g／L＋卡拉胶7g／L;芽伸长培养基为MB5＋6-BA3mg／L＋IAA1mg／L＋GA3 2mg／L＋蔗糖30g／L＋卡拉胶7g／L;生根培养基为1／zMS＋IAA0．2mg／L＋NAA0．1mg／L。